高弘揚(yáng) 周良云 羅碧
摘要:乙烯是一種與脅迫響應(yīng)有關(guān)的激素,在植物生長(zhǎng)發(fā)育和對(duì)環(huán)境信號(hào)的反應(yīng)中起著關(guān)鍵作用。乙烯參與種子萌發(fā)、葉片與花的脫落、組織器官衰老、果實(shí)成熟、單性花性別決定等生理過(guò)程的調(diào)控,并且對(duì)生物和非生物脅迫的應(yīng)對(duì)有重要作用。綜述乙烯生理作用和乙烯生物合成及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的最新研究進(jìn)展,同時(shí)對(duì)乙烯在植物逆境響應(yīng)中的作用進(jìn)行探討。
關(guān)鍵詞:植物;逆境脅迫;乙烯;逆境響應(yīng);信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)
乙烯是一種小分子氣體植物激素,對(duì)植物的生長(zhǎng)發(fā)育有重要的影響[1]。在維管植物中,乙烯是通過(guò)楊氏循環(huán)合成的,直接前體為1-氨基環(huán)丙烷羧酸(1-aminocyclopropane-1-carboxylate,簡(jiǎn)稱ACC),通過(guò)ACC氧化酶(ACO)的催化被分解為乙烯、二氧化碳、氰化氫。由于乙烯是一種氣態(tài)植物激素,直接使用存在困難,因此在實(shí)際使用中往往用乙烯利(ethrel)來(lái)代替氣態(tài)乙烯。乙烯利,即2-氯乙基磷酸(2-chloroethyl phosphoric acid,簡(jiǎn)稱CEPA),是一種人工合成的植物激素,在pH值高于4的環(huán)境下會(huì)自動(dòng)分解并產(chǎn)生乙烯,且pH值越高,乙烯生成速率越快。同時(shí),乙烯利容易被植物吸收,在植物細(xì)胞中pH值一般均大于4,因此,乙烯利能在植物細(xì)胞內(nèi)自動(dòng)分解產(chǎn)生乙烯。
1 乙烯的生理作用
乙烯抑制根莖伸長(zhǎng),使下胚軸或根莖變粗,并促進(jìn)側(cè)根的形成,這一過(guò)程有助于幼苗破土而出。在陸生植物上,乙烯對(duì)莖的伸長(zhǎng)表現(xiàn)為抑制作用,促使莖增粗;而在水生或半水生植物上,乙烯表現(xiàn)為促進(jìn)莖伸長(zhǎng),被水淹沒(méi)會(huì)刺激莖稈合成ACC,從而在莖稈內(nèi)積累乙烯,直至莖稈伸長(zhǎng)出水。這說(shuō)明乙烯對(duì)根莖的作用具有兩重性。在模式植物擬南芥上,乙烯刺激的主要表現(xiàn)是三重反應(yīng):下胚軸變粗變短、莖稈變粗、頂端鉤狀芽彎曲加劇[2]。在對(duì)乙烯傳導(dǎo)通路進(jìn)行研究時(shí),三重反應(yīng)常被用于檢測(cè)突變體是否對(duì)乙烯敏感。
乙烯對(duì)于多種植物器官的成熟和衰老均有重要的調(diào)節(jié)作用。乙烯能促進(jìn)花的開(kāi)放,并增加瓜類等品種的雌花數(shù)量[3]。乙烯被視為一個(gè)多功能的植物激素,可調(diào)節(jié)生長(zhǎng)和衰老。乙烯還能促進(jìn)果實(shí)成熟,這一催熟作用早已被廣泛應(yīng)用于番茄、香蕉、芒果等農(nóng)產(chǎn)品中,通常在運(yùn)送到位后才集中用乙烯催熟,乙烯的利用為這類產(chǎn)品的運(yùn)輸和銷售提供了便利。乙烯通過(guò)提高細(xì)胞膜的通透性,加強(qiáng)果實(shí)的呼吸作用,進(jìn)而實(shí)現(xiàn)果實(shí)的催熟目的。乙烯還是調(diào)節(jié)植物器官衰老、脫落的重要激素,并被認(rèn)為是誘導(dǎo)葉片衰老脫落的重要物質(zhì),在生產(chǎn)中被用于脫去棉花等作物的老葉,進(jìn)而改善作物光照、通風(fēng)條件,提高作物產(chǎn)量。可根據(jù)其濃度、施用時(shí)機(jī)和植物種類促進(jìn)或抑制生長(zhǎng)和衰老過(guò)程。低濃度的乙烯可以增加葉片面積,而高濃度的乙烯會(huì)達(dá)到抑制效果[4]。乙烯調(diào)控著葉、花、果實(shí)的發(fā)育。它也可以促進(jìn)、抑制或誘導(dǎo)衰老,這取決于最佳或次優(yōu)乙烯濃度[5]。
乙烯合成與轉(zhuǎn)導(dǎo)過(guò)程受多種因子轉(zhuǎn)導(dǎo)和調(diào)控,同樣,乙烯也對(duì)多種植物激素具有拮抗或促進(jìn)作用。根據(jù)相關(guān)研究,乙烯與五大植物激素中的其他4種激素[生長(zhǎng)素、赤霉素、細(xì)胞分裂素、脫落酸(ABA)]均有交互作用[1]。目前已經(jīng)被報(bào)道的能夠誘導(dǎo)植物內(nèi)源乙烯合成的外界因子有外源乙烯、生長(zhǎng)素、細(xì)胞分裂素、Ca2+、機(jī)械損傷、病原體侵染、果實(shí)成熟、脅迫因子等。
根據(jù)擬南芥三重反應(yīng)的結(jié)果,研究發(fā)現(xiàn)很多根部特異乙烯不敏感突變體的生長(zhǎng)素合成、轉(zhuǎn)運(yùn)也有缺陷,生長(zhǎng)素能夠抑制植物根的伸長(zhǎng),而這與三重反應(yīng)中下胚軸變短、變粗的結(jié)果相符合,說(shuō)明乙烯可能參與了生長(zhǎng)素的調(diào)節(jié)[6]。后續(xù)又發(fā)現(xiàn)WEI2、WEI7等2個(gè)乙烯不敏感突變體,而WEI2、WEI7與生長(zhǎng)素的合成密切相關(guān),因此確認(rèn)了乙烯與生長(zhǎng)素之間的調(diào)控關(guān)系,乙烯能激活WEI2與WEI7,進(jìn)而促進(jìn)生長(zhǎng)素的合成[7]。同時(shí),生長(zhǎng)素能促進(jìn)ACC合成酶(ACS)的表達(dá)[8],如上文所述,ACS是乙烯生物合成前體ACC合成的關(guān)鍵酶。相似的,細(xì)胞分裂素能夠增強(qiáng)ACS蛋白的穩(wěn)定性[9],對(duì)乙烯合成具有促進(jìn)作用。有報(bào)道指出,赤霉素能正向調(diào)節(jié)乙烯合成酶基因FsACO1,并能促進(jìn)三重反應(yīng)中的彎曲現(xiàn)象[10]。在赤霉素信號(hào)通路中,一個(gè)重要蛋白——DELLA蛋白,根據(jù)Calvo等的研究,乙烯處理能夠提高DELLA蛋白的穩(wěn)定性,因此對(duì)赤霉素有促進(jìn)作用[10]。與其他三者不同的是,脫落酸受乙烯的負(fù)向調(diào)控,乙烯是脫落酸的負(fù)調(diào)控因子[11]。
2 乙烯的生物合成及其信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)
植物內(nèi)源乙烯合成自楊氏循環(huán),或稱蛋氨酸環(huán),乙烯合成的真正前體就是蛋氨酸。在植物體內(nèi)蛋氨酸的硫(甲硫基)被不斷重新循環(huán)成蛋氨酸,蛋氨酸消耗的氨基丁酸則由腺嘌呤核苷三磷酸(ATP)中的核糖來(lái)補(bǔ)充,雖然植物體內(nèi)蛋氨酸含量較低,但能持續(xù)循環(huán)生成乙烯,故稱蛋氨酸環(huán)。因此,構(gòu)成乙烯分子的2個(gè)碳原子來(lái)自于蛋氨酸的3、4位碳,也就是ATP核糖殘基的4、5位碳。蛋氨酸是一種非極性α-氨基酸,是乙烯的前體。蛋氨酸通過(guò)3種關(guān)鍵的酶促反應(yīng)以線性方式轉(zhuǎn)化為乙烯:(1)腺苷蛋氨酸合成酶催化蛋氨酸的轉(zhuǎn)化為S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosyl-L-methionine,簡(jiǎn)稱SAM);(2)氨基環(huán)丙烷羧酸合成酶(1-AAnnocyclopropane-1-carboxylate synthase,簡(jiǎn)稱ACS)將SAM轉(zhuǎn)化成氨基環(huán)丙烷羧酸(1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase,簡(jiǎn)稱ACC);(3)ACC氧化酶(ACO)氧化ACC并釋放出乙烯、CO2、氰化物。在植物體內(nèi)的乙烯合成中有3個(gè)重要的酶,分別是腺苷蛋氨酸(SAM)合成酶(SAMS)、ACC合成酶(ACS)、ACC氧化酶(ACO)。在三者中,ACS是植物內(nèi)源乙烯合成的限速酶,而ACO則是組成性的,不構(gòu)成乙烯生物合成的限速酶[12]。ACC轉(zhuǎn)化為乙烯是氧依賴的,因此在厭氧條件下乙烯的形成完全被抑制。而SAMS基因?qū)儆诠芗一颍霓D(zhuǎn)錄物水平與乙烯水平并不相關(guān),只有一部分SAM會(huì)被用于產(chǎn)生ACC,因此SAM在植物內(nèi)源乙烯合成中并不占中心地位。ACO基因的轉(zhuǎn)錄水平與乙烯合成不完全一致,而ACS的轉(zhuǎn)錄水平則與乙烯合成相一致[13]。胡花麗等也發(fā)現(xiàn),暴露于外源乙烯的桃果,ACC合成酶(ACS)活性增強(qiáng),ACO活性提高不如ACS明顯,最終內(nèi)源乙烯生成量增加[14]。ACS與ACO是乙烯生物合成的關(guān)鍵酶。
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)相關(guān)乙烯受體(ETR)可感知乙烯。在擬南芥中,ETR1、ETR2、ERS1、ERS2、EIN4是一個(gè)家族的5個(gè)受體[15]。ETR1可以通過(guò)單體之間的二硫鍵形成同型二聚體。它還能夠與乙烯結(jié)合,并能與負(fù)調(diào)節(jié)因子(CTR1)相互作用[16],銅離子充當(dāng)輔因子,并通過(guò)轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白R(shí)AN傳遞給受體[17]。CTR1是乙烯反應(yīng)的負(fù)調(diào)節(jié)因子,抑制下游乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)元件,如EIN2。EIN2是乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)正調(diào)節(jié)因子,激活后進(jìn)入細(xì)胞核遷移可能調(diào)控下游的EIN3/EILs轉(zhuǎn)錄因子。擬南芥中EIN3是乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中的關(guān)鍵因子,EIN3的水平影響乙烯信號(hào)傳遞的強(qiáng)弱[18]。EIN3基因家族轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合到下游的乙烯響應(yīng)因子(ERF)的啟動(dòng)子上。這些轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)子介導(dǎo)了乙烯下游的基因表達(dá),通過(guò)與乙烯調(diào)節(jié)因子的啟動(dòng)子區(qū)的GCC-box結(jié)合。
能夠抑制乙烯合成或拮抗乙烯作用的有氨氧乙酸、氨氧乙烯基甘氨酸、1-甲基環(huán)丙烯、水楊酸、Co2+、Ag+(硝酸銀、硫代硫酸銀等)[19]。氨氧乙酸能夠阻斷植物體內(nèi)的乙烯生物合成途徑,抑制乙烯的內(nèi)源合成,但對(duì)于外源乙烯并無(wú)抑制作用。1-甲基環(huán)丙烯則是一種新型乙烯受體抑制劑,能與乙烯受體不可逆性結(jié)合,阻斷乙烯的傳導(dǎo)途徑,能有效抑制內(nèi)源乙烯對(duì)植物的影響,并阻止外源乙烯誘導(dǎo)內(nèi)源乙烯的合成。硝酸銀也是一種乙烯抑制劑,能降低乙烯積累對(duì)植物的傷害與分化抑制,可以有效減少玻璃化現(xiàn)象的產(chǎn)生。這是由于Ag+能和乙烯受體結(jié)合,阻止乙烯和乙烯受體結(jié)合,抑制了乙烯的生物活性,因而使得植物對(duì)于乙烯的合成與乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的能力降低,進(jìn)而使保衛(wèi)細(xì)胞中過(guò)氧化氫合成降低,氣孔開(kāi)度增大,失水加快,含水量下降,并最終使玻璃化植株復(fù)原[20]。硫代硫酸銀(silver thiosuifate,簡(jiǎn)稱STS)是另一種銀離子乙烯抑制劑,對(duì)植物毒性較低,在溶液中比較穩(wěn)定,且與硝酸銀相比,不與培養(yǎng)基中常常含有的Cl-和I-作用。STS經(jīng)常被用于切花運(yùn)輸,能有效減輕乙烯促進(jìn)花材衰老的作用,延長(zhǎng)切花開(kāi)放時(shí)間。
3 乙烯在植物逆境響應(yīng)中的作用
在植物進(jìn)化過(guò)程中,為應(yīng)對(duì)各種逆境,演化出一套復(fù)雜的防御網(wǎng)絡(luò)。乙烯作為一種簡(jiǎn)單氣態(tài)分子,具有擴(kuò)散快、反應(yīng)靈敏等特點(diǎn),在多種逆境脅迫中均具有重要地位,是植物體內(nèi)的一種快速響應(yīng)因子。乙烯對(duì)于植物的水分脅迫應(yīng)答有重要作用,在缺水、高溫、高鹽等環(huán)境下,植物細(xì)胞缺水產(chǎn)生干旱信號(hào),使植物內(nèi)源乙烯產(chǎn)生量增加,并使植物的抗逆性得到提高[21]。
3.1 乙烯與溫度脅迫
低溫脅迫會(huì)導(dǎo)致許多植物的乙烯合成增強(qiáng)[22-23]。然而,Shi等報(bào)道乙烯可以負(fù)調(diào)控?cái)M南芥試管苗的抗凍性。擬南芥幼苗用乙烯前體ACC處理后表現(xiàn)出抗凍性,冷脅迫能夠促進(jìn)蛋白酶體介導(dǎo)的EBF1降解從而使EIN3更加穩(wěn)定,反過(guò)來(lái)又抑制CBF途徑[24]。下游轉(zhuǎn)錄因子EIN3通過(guò)與啟動(dòng)子中的特異性元件結(jié)合,負(fù)調(diào)控CBFs和A型擬南芥響應(yīng)調(diào)節(jié)因子ARR5、ARR7和ARR15的表達(dá)量。然而,在土壤中ACC增強(qiáng)了擬南芥幼苗的抗寒性[22],它通過(guò)維持乙烯水平以促進(jìn)冷脅迫過(guò)程中COR基因的表達(dá)。在冷脅迫下,編碼乙烯轉(zhuǎn)錄因子的基因也被調(diào)控,例如乙烯反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(EREBP)C1、C2、C3、WRKY TF(CaWRKY1A)。在煙草中,JEF3激活某些氧化基因的轉(zhuǎn)錄,以消除冷脅迫過(guò)程中產(chǎn)生的活性氧[25]。乙烯還調(diào)節(jié)冬小麥抗凍蛋白的積累[26]。乙烯對(duì)番茄的冷耐受能力具有正向調(diào)節(jié)作用。總之,有研究表明乙烯對(duì)抗凍性的影響可能具有物種特異性。熱脅迫下不同植物乙烯水平受到不同程度的調(diào)控。例如,在溫度為35 ℃時(shí),小麥的乙烯水平受到抑制,但溫度為45 ℃時(shí),在大豆中仍舊不受影響。高溫誘導(dǎo)生殖器官脫落與ACC水平升高有關(guān)。擬南芥中乙烯負(fù)調(diào)節(jié)熱脅迫。具有抑制乙烯信號(hào)的EIN突變體植物對(duì)熱的耐受性相對(duì)較高,表明EIN2負(fù)調(diào)控?cái)M南芥的耐熱性[27]。
3.2 乙烯與鹽脅迫
在鹽脅迫下乙烯或其前體ACC的生成量增加。擬南芥鹽脅迫下的轉(zhuǎn)錄組分析結(jié)果表明,大量的乙烯應(yīng)答基因的表達(dá)量發(fā)生改變[28]。利用擬南芥ACS7突變體發(fā)現(xiàn),乙烯通過(guò)減弱的ABA信號(hào)負(fù)調(diào)控鹽脅迫[29-30]。然而,也有報(bào)道稱擬南芥乙烯水平的提高與耐鹽性的提高呈正相關(guān)[31-32]。絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)途徑激活乙烯生物合成所需的ACS基因,從而正向調(diào)節(jié)耐鹽性[29]。乙烯和鹽均能誘導(dǎo)上皮修復(fù)因子(ERF)基因的表達(dá)。ERF綁定到乙烯與脅迫響應(yīng)基因的啟動(dòng)子上的GCC和DRE/CRT順式作用元件[33]。信號(hào)應(yīng)答基因(SR1)是乙烯應(yīng)答基因,編碼鈣調(diào)蛋白結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子,參與極端溫度、鹽、傷害的應(yīng)激反應(yīng)[34],在植物的鹽脅迫應(yīng)答中,乙烯起到快速傳遞環(huán)境信號(hào)的作用。高鹽條件會(huì)誘導(dǎo)乙烯合成,有報(bào)道指出,用ACC處理能提高擬南芥在高鹽環(huán)境下的存活率[35]。有多個(gè)乙烯通路中的因子參與了鹽脅迫應(yīng)答,Cao等發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)乙烯受體NTHK1能使煙草對(duì)鹽脅迫更加敏感[36]。另一個(gè)乙烯通路因子EIN3則被發(fā)現(xiàn)能增強(qiáng)幼苗對(duì)鹽脅迫的耐性,缺失EIN3的幼苗對(duì)鹽的耐受力顯著下降。
3.3 乙烯與干旱脅迫
在干旱條件下乙烯的生成與脫水速率呈正相關(guān)。在干旱脅迫下乙烯抑制ABA誘導(dǎo)氣孔關(guān)閉,而ABA水平的增加抑制乙烯的產(chǎn)生[37]。總體而言,ABA與乙烯之間的相互作用依賴于植物的氧化脅迫程度。
3.4 乙烯和水澇脅迫
在水澇條件下植物光合作用的能力被限制,所以它們通過(guò)莖部伸長(zhǎng)浮出水面。乙烯對(duì)深水水稻生長(zhǎng)有促進(jìn)作用,有利于植物適應(yīng)淹水情況。淹水會(huì)引起缺氧,并導(dǎo)致乙烯產(chǎn)量增加,最終使擬南芥中乙烯應(yīng)答基因如ERF/AP2家族的表達(dá)量上調(diào)。部分淹沒(méi)情況下SNORKELs(SK1、SK2)編碼AP2/EFS調(diào)節(jié)莖伸長(zhǎng)[38]。相反,在全部淹沒(méi)條件下乙烯誘導(dǎo)另一個(gè)ERF/AP2轉(zhuǎn)錄本SUB1A的表達(dá)[39]。SUB1A還限制活性氧(ROS)介導(dǎo)的應(yīng)激反應(yīng)[40]。轉(zhuǎn)錄因子RAP2.2和ERF73/HRE1也參與了乙烯依賴性的抗缺氧能力[41]。
3.5 乙烯和玻璃化
目前一般認(rèn)為,植物內(nèi)部水分代謝失去平衡、細(xì)胞過(guò)度吸水或者失水率降低是玻璃化發(fā)生與發(fā)展的關(guān)鍵[42]。在組織培養(yǎng)過(guò)程中過(guò)量的乙烯積累常常與玻璃化的發(fā)生有關(guān)。玻璃化發(fā)生過(guò)程中乙烯含量也會(huì)持續(xù)增加。玻璃化苗中常觀察到氣孔開(kāi)度減小[43],導(dǎo)致失水率降低,而乙烯可以通過(guò)誘導(dǎo)保衛(wèi)細(xì)胞中H2O2含量的增加而使氣孔關(guān)閉,可能與玻璃化發(fā)生有關(guān)。另一方面,Qing等研究表明乙烯可以誘導(dǎo)Pip2-1發(fā)生磷酸化從而調(diào)控水分運(yùn)輸使擬南芥吸水能力增強(qiáng),也可能是玻璃化發(fā)生的另一個(gè)原因[44]。
參考文獻(xiàn):
[1]Iqbal N,Khan N A,F(xiàn)errante A,et al. Ethylene role in plant growth,development and senescence:interaction with other phytohormones[J]. Frontiers in Plant Science,2017(8):475.
[2]潘延云,郭 毅,趙軍峰,等. 乙烯在植物中的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)[J]. 浙江大學(xué)學(xué)報(bào)(農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版),2003,29(4):453-460.
[3]Rudich J,Halevy A H,Kedar N. Ethylene evolution from cucumber plants as related to sex expression[J]. Plant Physiology,1972,49(6):998-999.
[4]Khan N A,Mir M R,Nazar R,et al. The application of ethephon(an ethylene releaser)increases growth,photosynthesis and nitrogen accumulation in mustard(Brassica juncea L.)under high nitrogen levels[J]. Plant Biology,2008,10(5):534-538.
[5]Ronald P,Danny T,Hendrik P,et al. The Janus face of ethylene:growth inhibition and stimulation[J]. Trends in Plant Science,2006,11(4):176-183.
[6]Bennett M J,Marchant A,Green H G,et al. Arabidopsis AUX1 gene:a permease-like regulator of root gravitropism[J]. Science,1996,273(5277):948-950.
[7]Stepanova A N,Hoyt J M,Hamilton A A,et al. A Link between ethylene and auxin uncovered by the characterization of two root-specific ethylene-insensitive mutants in Arabidopsis[J]. The Plant Cell,2005,17(8):2230-2242.
[8]Woeste K E,Ye C,Kieber J J. Two arabidopsis mutants that overproduce ethylene are affected in the posttranscriptional regulation of 1-aminocyclopropane-1-carboxylic acid synthase[J]. Plant Physiology,1999,119(2):521-530.
[9]Vogel J P,Woeste K E,Theologis A,et al. Recessive and dominant mutations in the ethylene biosynthetic gene ACS5 of Arabidopsis confer cytokinin insensitivity and ethylene overproduction,respectively[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences,1998,95(8):4766-4771.
[10]Calvo A P,Nicolas C,Nicolas G,et al. Evidence of a cross‐talk regulation of a GA 20-oxidase(FsGA20ox1)by gibberellins and ethylene during the breaking of dormancy in Fagus sylvatica seeds[J]. Physiologia Plantarum,2004,120(4):623-630.
[11]Ghassemian M,Nambara E,Cutler S,et al. Regulation of abscisic acid signaling by the ethylene response pathway in Arabidopsis[J]. The Plant Cell,2000,12(7):1117-1126.
[12]陳新建,劉國(guó)順,陳占寬,等. 乙烯生物合成途徑及其相關(guān)基因工程的研究進(jìn)展[J]. 熱帶亞熱帶植物學(xué)報(bào),2002,10(1):83-98.
[13]姚瑞亮,關(guān) 雄,李楊瑞,等. 植物激素乙烯的分子生物學(xué)研究進(jìn)展[J]. 廣西農(nóng)業(yè)生物科學(xué),1999,18(2):153-156.
[14]胡花麗,梁麗松,李鵬霞,等. 外源乙烯對(duì)CA貯藏桃果實(shí)內(nèi)源乙烯生物合成的影響[J]. 保鮮與加工,2008,8(5):34-37.
[15]Chang C,Stadler R. Ethylene hormone receptor action in Arabidopsis[J]. BioEssays,2001,23(7):619-627.
[16]Schaller G E,Bleecker A B. Ethylene-binding sites generated in yeast expressing the Arabidopsis ETR1 gene[J]. Science,1995,270(5243):1809-1811.
[17]Hirayama T,Kieber J J,Hirayama N,et al. RESPONSIVE-TO-ANTAGONIST1,a menkes/wilson disease-related copper transporter,is required for ethylene signaling in Arabidopsis[J]. Cell,1999,97(3):383-393.
[18]Solano R,Ecker J R. Ethylene gas:perception,signaling and response[J]. Current Opinion in Plant Biology,1998,1(5):393-398.
[19]李明亮,韓一凡. 乙烯在植物生長(zhǎng)發(fā)育和抗病反應(yīng)中的作用及其生物合成的反義抑制[J]. 林業(yè)科學(xué),2000,36(4):77-84.
[20]Gao H Y,Xia X Y,An L J,et al. Reversion of hyperhydricity in pink (Dianthus chinensis L.) plantlets by AgNO3 and its associated mechanism during in vitro culture[J]. Plant Science,2017,254:1-11.
[21]Gazzarrini S,Mccourt P. Genetic interactions between ABA,ethylene and sugar signaling pathways[J]. Current Opinion in Plant Biology,2001,4(5):387-391.
[22]Catalá R,López-Cobollo R,Castellano M M,et al. The Arabidopsis 14-3-3 protein RARE COLD INDUCIBLE 1A links low-temperature response and ethylene biosynthesis to regulate freezing tolerance and cold acclimation[J]. The Plant Cell,2014,26(8):3326-3342.
[23]Zhao M G,Liu W J,Xia X Z,et al. Cold acclimation‐induced freezing tolerance of Medicago truncatula seedlings is negatively regulated by ethylene[J]. Physiologia Plantarum,2014,152(1):115-129.
[24]Shi Y T,Tian S W,Hou L Y,et al. Ethylene signaling negatively regulates freezing tolerance by repressing expression of CBF and type-A ARR genes in Arabidopsis[J]. The Plant Cell,2012,24(6):2578-2595.
[25]Wu L J,Zhang Z J,Zhang H W,et al. Transcriptional modulation of ethylene response factor protein JERF3 in the oxidative stress response enhances tolerance of tobacco seedlings to salt,drought,and freezing[J]. Plant Physiology,2008,148(4):1953-1963.
[26]Yu X M,Griffith M,Wiseman S B. Ethylene induces antifreeze activity in winter rye leaves[J]. Plant Physiology,2001,126(3):1232-1240.
[27]Clarke S M,Cristescu S M,Miersch O,et al. Jasmonates act with salicylic acid to confer basal thermotolerance in Arabidopsis thaliana[J]. New Phytologist,2009,182(1):175-187.
[28]Shen X Y,Wang Z L,Song X F,et al. Transcriptomic profiling revealed an important role of cell wall remodeling and ethylene signaling pathway during salt acclimation in Arabidopsis[J]. Plant Molecular Biology,2014,86(3):303-317.
[29]Xu J,Li Y,Wang Y,et al. Activation of MAPK kinase 9 induces ethylene and camalexin biosynthesis and enhances sensitivity to salt stress in Arabidopsis[J]. Journal of Biological Chemistry,2008,283(40):26996-27006.
[30]Hui D,Zhen Z Q,Peng J Y,et al. Loss of ACS7 confers abiotic stress tolerance by modulating ABA sensitivity and accumulation in Arabidopsis[J]. Journal of Experimental Botany,2011,62(14):4875-4887.
[31]Chen D H,Ma X Y,Li C L,et al. A wheat aminocyclopropane-1-carboxylate oxidase gene,TaACO1,negatively regulates salinity stress in Arabidopsis thaliana[J]. Plant Cell Reports,2014,33(11):1815-1827.
[32]Jiang C F,Belfield E J,Yi C,et al. An Arabidopsis soil-salinity-tolerance mutation confers ethylene-mediated enhancement of sodium/potassium homeostasis[J]. The Plant Cell,2013,25(9):3535-3552.
[33]Kevin L W,Yoshida H,Claire L,et al. Regulation of ethylene gas biosynthesis by the Arabidopsis ETO1 protein[J]. Nature,2004,428(6986):945-950.
[34]Yang T,Poovaiah B W. A calmodulin-binding/CGCG box DNA-binding protein family involved in multiple signaling pathways in plants[J]. The Journal of Biological Chemistry,2002,277(47):45049-45058.
[35]Cao W H,Liu J,He X J,et al. Modulation of ethylene responses affects plant salt-stress responses[J]. Plant Physiology,2007,143:707-719.
[36]Cao W H,Liu J,Zhou Q N,et al. Expression of tobacco ethylene receptor NTHK1 alters plant responses to salt stress[J]. Plant,Cell & Environment,2006,29(7):1210-1219.
[37]Desikan R,Kathryn L,Harrett-Williams R,et al. Ethylene-induced stomatal closure in Arabidopsis occurs via AtrbohF-mediated Hydrogen peroxide synthesis[J]. The Plant Journal,2006,47(6):907-916.
[38]Hattori Y,Nagai K,F(xiàn)urukawa S,et al. The ethylene response factors SNORKEL1 and SNORKEL2 allow rice to adapt to deep water[J]. Nature,2009,460(7258):1026-1030.
[39]Xu K N,Xu X,F(xiàn)ukao T,et al. Sub1A is an ethylene-response-factor-like gene that confers submergence tolerance to rice[J]. Nature,2006,442(713):705-708.
[40]Fukao T,Bailey-Serres J. Submergence tolerance conferred by Sub1A is mediated by SLR1 and SLRL1 restriction of gibberellin responses in rice[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences,2008,105(43):16814-16819.
[41]Licausi F,van Dongen J T,Giuntoli B,et al. HRE1 and HRE2,two hypoxia-inducible ethylene response factors,affect anaerobic responses in Arabidopsis thaliana[J]. The Plant Journal,2010,62(2):302-315.
[42]馬 婧,楊系玲,孫聰,等. 老山芹正常試管苗和玻璃化苗的生理生化特性比較[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2018,46(24):158-160.
[43]van den Dries N,Gianni S,Czerednik A,et al. Flooding of the apoplast is a key factor in the development of hyperhydricity[J]. Journal of Experimental Botany,2013,64(16):5221-5230.
[44]Qing D J,Yang Z,Li M Z,et al. Quantitative and functional phosphoproteomic analysis reveals that ethylene regulates water transport via the C-terminal phosphorylation of aquaporin PIP2;1 in Arabidopsis[J]. Molecular Plant,2016,9(1):158-174.喻彩麗,花元濤,劉書東. 棗樹(shù)根系土壤水分運(yùn)移的研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2020,48(12):20-24.