張勤雪 閆強 袁星星



摘要 以綠豆(Vigna radiata (L.) Wilczek)幼嫩健康的子葉節為外植體,對影響其再生的2個關鍵因素——綠豆基因型和培養基植物生長調節劑配比開展篩選試驗,建立綠豆子葉節離體再生體系。在篩選的100份種質資源中,8份材料再生效果好,同時發現適宜不定芽分化的培養基配方為B5+1.0 ?mg/L 6-BA +1.0 ?mg/L KT+0.1 ?mg/L IBA,適宜不定根誘導的培養基配方為1/2MS+1 ?mg/L IBA。通過此次試驗,初步建立起了適合國內應用的綠豆子葉節外植體離體再生體系。
關鍵詞 綠豆;子葉節;離體;再生體系;優化
中圖分類號 S522 ?文獻標識碼 A
文章編號 0517-6611(2020)19-0034-04
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2020.19.009
Abstract Using the young and healthy cotyledon nodes of Vigna radiataas explants,a screening experiment was conducted to establish two key factors (Vigna radiata genotype and medium plant growth regulator ratio) affecting its regeneration,and an in vitro regeneration system of Vigna radiata cotyledon nodes was established.Among the 100 germplasm resources screened,8 materials had good regeneration capacity,and found that the medium suitable for adventitious bud differentiation was B5+1.0 ?mg/L 6-BA+1.0 ?mg/L KT+0.1 ?mg/L IBA;the optimal adventitious rootinducing medium formula was 1/2MS+1 ?mg/L IBA.Through this experiment,an in vitro regeneration system of Vigna radiata cotyledonary explants suitable for domestic production and application was initially established.
Key words Vigna radiata (L.) Wilczek; Cotyledonary node;In vitro;Regeneration system;Optimization
基金項目 國家重點研發項目(2016YFE0203800);國家自然科學基金項目(31871696);國家食用豆產業技術體系生物防治與綜合防控崗位科學家項目(CARS-08-G15);江蘇特糧特經產業技術體系集成創新中心項目(JATS〔2018〕255)。
作者簡介 張勤雪(1991—),女,河北邯鄲人,博士研究生,研究方向:綠豆遺傳育種。*通訊作者,薛晨晨,副研究員,博士,從事綠豆遺傳育種研究;陳新,研究員,博士,博士生導師,從事綠豆遺傳育種研究。
收稿日期 2020-01-17;修回日期 2020-03-16
綠豆(Vigna radiata(L.)Wilczek)是重要的谷類豆類作物和膳食蛋白質的良好來源,在東南亞、南美洲和澳大利亞都有廣泛種植[1]。綠豆因為含有比其他豆類更高水平的葉酸和鐵而受到青睞[2]。世界上對綠豆植株再生的研究較少,現有的報道中綠豆的體外再生方法包括從子葉[3]、芽尖[4-5]、嫩葉[6]都能成功地再生成完整植株,目前來說,研究和應用比較多的是子葉節再生體系[7-8]。子葉節是在多種豆類作物中公認的利于再生的外植體,在大豆[9-12]、豇豆[13]和綠豆[8]中都有報道,但不同的作物間使用子葉節外植體的體系方法不同。盡管以子葉節為外植體可能會存在不定芽的相互抑制,再生困難以及轉化時會出現嵌合體等問題,但仍然被認為是用于豆類作物再生的比較理想的外植體。
植物生長調節劑的合理組合搭配使用,這對于豆類再生率的影響極大,1.1 mg/L 6-BA處理可以使大豆“合豐35”子葉節再生率達98%,平均芽數為3.56個[12];Sonia等[7]研究發現1.0 mg/L 6-BA可以使綠豆PUSA-105子葉節不定芽分化率高達100%,平均芽數為5.3;Bakshi等[13]認為1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L KT可以使豇豆品種Pusa Komal子葉節再生率達87%,平均芽數為6.72。植株再生是大多數遺傳轉化工作的基礎,而豆類作物的再生對基因型有一定的依賴。綠豆再生體系在國內鮮見報道,為促進國內綠豆遺傳轉化體系的建立,該試驗以綠豆子葉節為外植體,研究不同的植物激素和不同基因型對子葉節愈傷組織和不定芽誘導的影響,找出最適的基因型和相匹配的植物生長調節劑濃度,為國內綠豆的再生體系建立以及后期遺傳轉化工作奠定基礎。
1 材料與方法
1.1 試驗材料 供試材料來自亞蔬中心、中國、泰國和日本的綠豆材料100份。
1.2 試驗方法
1.2.1 培養基及培養條件。
萌發培養基為MS培養基+1.0 mg/L 噻苯隆(TDZ)+0.5%瓊脂+3%蔗糖。不定芽誘導培養基分以下3種配方,均以B5培養基為基礎,配方1添加1.0 mg/L芐氨基腺嘌呤(6-BA)、1.0 ?mg/L 激動素(KT)和0.1 ?mg/L吲哚丁酸(IBA);配方2添加1.0 ?mg/L 6-BA和0.1 ?mg/L IBA;配方3添加1.0 ?mg/L 6-BA。不定芽伸長培養基用B5基本培養基加0.1 ?mg/L IBA和0.2 ?mg/L 6-BA。生根培養基為MS基本培養基加1.0 ?mg/L IBA。以上所有培養基pH均為5.8。培養溫度為(25±2)℃。光照度3 000~5 000 lx,光/暗周期為16 h/8 h。
1.2.2 外植體制備。滅菌消毒后的種子接種于萌發培養基光照培養4 d,切除上胚軸和子葉,并在子葉節處輕輕劃傷,以帶有4~5 mm下胚軸為外植體。
1.2.3 外植體愈傷組織誘導效率計算。
將子葉節分別接種于3種不同的培養基上進行愈傷組織誘導。每14 d繼代1 次,30 d后統計外植體表現。愈傷組織誘導率=有愈傷組織的外植體數/接種的外植體總數×100%。
1.2.4 不同基因型對子葉節外植體愈傷組織形成的影響及不定芽分化情況。
將100份不同基因型的子葉節接種于不定芽誘導培養基上進行愈傷組織誘導。28 d后統計不同基因型愈傷組織誘導率,56 d后統計不定芽分化情況。
1.2.5 不定芽的伸長。將不定芽連同部分愈傷組織分別轉接到不定芽伸長培養基上,同時觀察不同基因型材料的伸長情況。
1.2.6 不定根的誘導。待芽苗伸長至3~4 cm后,轉接到生根培養基上,比較不同濃度的激素對不定根生長誘導的影響;14 d后統計芽苗的生根率:生根率=形成不定根的苗數/總轉接的苗數×100%。
1.2.7 煉苗與移栽。待綠豆苗長出5根以上,長度超過2 cm的不定根后,打開瓶蓋,補充少量的滅菌水,放置于恒溫條件下進行煉苗,3~4 d后取出綠豆苗并清洗去掉根部的培養基,移栽至裝有蛭石的花盆中,置于溫室進行生長。
2 結果與分析
2.1 不同激素組成對外植體愈傷組織形成的影響
綠豆外植體的愈傷形成能力與培養基內添加的激素有很大關系,該試驗隨機選擇8份綠豆材料(124、137、149、174、175、179、180、184)的外植體,分別接種在3種不同濃度激素的不定芽誘導培養基上,第15天開始統計子葉節外植體愈傷組織的形成情況。由圖1可見,同一種材料在不同配方上表現的愈傷形成能力不同,綜合8份材料的整體表現,可以發現在配方1(培養基B5+1.0 ?mg/L 6-BA +1.0 ?mg/L KT+0.1 ?mg/L IBA)上子葉節外植體愈傷組織形成率最高,該現象在多個材料中表現一致。因此推斷配方1培養基適合綠豆子葉節愈傷組織的形成。
2.2 不同基因型對子葉節外植體愈傷組織形成的影響
由圖1可見,同一種配方培養基下,不同的基因型材料表現的愈傷形成能力各有不同,證明綠豆子葉節愈傷的形成與材料的基因型也有很大關系。
將100份不同基因型的子葉節接種于配方1培養基上進行愈傷組織誘導。將愈傷組織誘導率分為5個等級:1級,愈傷組織誘導率為0;2級,愈傷組織誘導率為0.01%~30.00%;3級,愈傷組織誘導率為30.01%~70.00%;4級愈傷組織誘導率為70.01%~99.00%;5級愈傷組織誘導率為99.01%~100%。從圖2可以看出,不同基因型子葉節外植體愈傷組織形成率各不相同,其中愈傷組織誘導率為70%以上的基因型有44個,這些基因型的子葉節愈傷組織誘導率較高,比較適宜作為綠豆再生體系建立的材料。
2.3 不同基因型對子葉節外植體不定芽形成的影響
將100份基因型的外植體繼續觀察,結果發現(圖3),并非形成了愈傷就能形成不定芽,全部材料中有8份材料能很好地形成不定芽,整體生長狀況很好,但這8份材料并非全是愈傷形成率最高的,可見愈傷組織形成率與不定芽生成率并無直接關系。其中66%材料沒有不定芽生成,可見大部分的綠豆基因型不太容易長不定芽。
2.4 不同基因型對外植體不定芽生長的影響
選取8份不定芽生長較好的材料,將不定芽連同部分愈傷組織分別轉接到不定芽伸長培養基上,觀察8份基因型材料的不定芽伸長情況,結果發現(表1),在芽伸長培養基中,全部的試驗材料都有不定芽伸長,因此推測綠豆的不同基因型僅對子葉節愈傷組織的形成有影響,對后期不定芽的伸長影響不大。
2.5 IBA濃度對不定根誘導的影響
外植體在不定芽伸長培養基上持續生長,待芽苗伸長至 3~4 cm后,分別轉接到1/2MS+0.1 mg/L IBA、1/2MS+0.5 mg/L IBA和1/2MS+1.0 mg/L IBA培養基上,比較不同激素濃度對不定根誘導的影響,14 d 后統計芽苗的生根率。從表2可以看出,使用濃度為0.1和0.5 ?mg/L 的IBA不促進綠豆無菌苗生根,而1.0 mg/L IBA的平均根數2.35。
2.6 綠豆再生體系優化
總結試驗結果,初步優化了綠豆再生體系。將滅菌后綠豆種子(優選192品種)在萌發培養基(MS培養基 +1.0 ?mg/L TDZ+0.5%瓊脂+3%蔗糖)生長4 d(圖4a),切除上胚軸,部分下胚軸和子葉的外植體(圖4b)分別接種在不定芽誘導培養基(B5+1.0 ?mg/L 6-BA +1.0 ?mg/L KT+0.1 ?mg/L IBA)上生長(圖4c)。每隔14 d進行繼代一次,等外植體長出不定芽后,移植到不定芽伸長培養基(B5+0.1 ?mg/L IBA+0.2 ?mg/L 6-BA)進行不定芽促伸長過程(圖4d)。待芽苗伸長至 3~4 cm后,轉接到生根培養基(MS+1.0 ?mg/L IBA)上,待綠豆苗長出5根以上、長度超過2 cm的不定根(圖4e)后,去掉瓶蓋,在培養瓶中加入少量的蒸餾水,放置于培養室進行煉苗,3 d后取出綠豆苗并清洗去掉根部的培養基,移栽至裝有蛭石的花盆中,置于溫室進行生長(圖4f)。
3 討論與結論
外植體再生過程中會受到外植體的取材部位、切割方法以及外植體的年齡等因素影響[14],不同的材料情況各異;雖然Sonia等[7]認為16 h苗齡最佳,但是綠豆的種子16 h后的外植體較小,不利于試驗操作和外植體存活。盡管不同苗齡外植體都會產生叢生芽,但是隨著外植體的年齡增加,芽的頻率和數量都會減少。早期研究表明,6 d苗齡的子葉節外植體再生頻率及不定芽數量會降低[15-16]。因此該試驗所用的外植體是苗齡為4 d的去除子葉的綠豆子葉節,該選擇既能便于操作,又盡可能減少對再生頻率的影響。
植物生長調節劑是植物離體再生的重要因素[17]。由于在豆類作物中6-BA被發現是最有效且廣泛使用的細胞分裂素,在綠豆外植體誘導不定芽試驗中此前已有報道[3,15]。在一定范圍內6-BA 的濃度可與外植體不定芽的數量成正比,4.0 ?mg/L 6-BA和0.05 ?mg/L IBA的組合可以使大豆不定芽分化率達到最大值[18]。但激素濃度過大也同時會影響不定芽的生長,大豆和綠豆雖然同屬于豆科,但仍有較大差異,其使用濃度有待驗證。另外有研究表明,1 mg/L的6-BA條件下,綠豆的子葉節外植體再生率最高[8];Mendoza等[19]研究表明再生過程中添加1 ?mg/L或2 ?mg/L KT有利于綠豆外植體的再生。因此,該試驗借鑒其他豆類的研究結果,以不同濃度的6-BA、KT和IBA為主要細胞分裂素(或生長素類物質)分別進行外植體再生研究,3種不同激素配比的培養基誘導愈傷組織形成,結果表明,在配方1(培養基B5+1.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L KT+0.1 mg/L IBA)上不同品種綠豆子葉節外植體愈傷組織形成率最高(除了175品種顯示持平);在配方2(培養基B5+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L IBA)和配方3(培養基B5+1.0 mg/L 6-BA)上愈傷組織誘導率變幅在0~80%,相比于配方1,愈傷組織誘導率略低,甚至品種137、149、184的愈傷組織誘導率為0。因此考慮試驗結果的廣適性,以配方1較適合綠豆不定芽誘導。
篩選再生能力較強的基因型是高頻率誘導綠豆再生植株的關鍵,也是綠豆高效再生體系建立的前提。Sonia等[7]研究表明不同基因型綠豆子葉節的不定芽率在45%~100%,Bakshi等[13]研究表明不同基因型綠豆子葉節的不定芽率在16%~87%。但國內外綠豆資源不全相同,大部分國外試驗材料不適宜國內研究和應用,篩選出適合國內研究應用的綠豆材料,對國內綠豆研究意義重大。該試驗對綠豆100個基因型的再生能力進行研究,發現不同基因型之間的愈傷組織誘導率有很大差異,愈傷組織誘導率在0~100%,其中愈傷組織誘導率為30.01%~70.00%的基因型最多。繼續試驗發現66%的品種再生能力較低,子葉節外植體所產生的愈傷組織全部褐化,無不定芽產生,因此并非能長出愈傷就能很好地開展再生,或者該類型基因型需要特殊的激素條件進行生長。8份材料不定芽再生能力最強,雖然愈傷形成率并非都最高,但都能很好地形成不定芽,其后完成不定芽伸長和生根的過程,證明綠豆的再生體系最關鍵的一步仍然是不定芽誘導。該試驗以8份材料為試驗對象,優化了綠豆的再生體系,為綠豆的無性繁殖技術以及遺傳轉化體系建立奠定了一定的基礎。
參考文獻
[1] VIJAYAN S,BEENA M R,KIRTI P B.Simple and effective regeneration of mungbean (Vigna radiata (L) Wilczek) using cotyledonary node explants[J].Journal of plant biochemistry and biotechnology,2006,15(2):131-134.
[2] KEATINGE J D H,EASDOWN W J,YANG R Y,et al.Overcoming chronic malnutrition in a future warming world:The key importance of mungbean and vegetable soybean[J].Euphytica,2011,180(1):129-141.
[3] GULATI A,JAIWAL P K.Culture conditions effecting plant regeneration from cotyledons of Vigna radiata (L.) Wilczek[J].Plant cell,tissue and organ culture,1990,23(1):1-7.
[4] BAJAJ Y P S,DHANJU M S.Regeneration of plants from apical meristem tips of some legumes[J].Current science,1979,48:906-907.
[5] GULATI A,JAIWAL P K.In vitro induction of multiple shoots and plant regeneration from shoot tips of mung bean (Vigna radiata (L.) Wilczek)[J].Plant cell,tissue and organ culture,1992,29(3):199-205.
[6] PETAL M B,BHARDWAJ R,JOSHI A.Organogenesis in Vigna radiata (L.) Wilczek[J].Indian journal of experimental biology,1991,29:619-622.
[7] SONIA,SAINI R,SINGH R P,et al.Agrobacterium tumefaciens mediated transfer of Phaseolus vulgaris αamylase inhibitor1 gene into mungbean Vigna radiata (L.) Wilczek using bar as selectable marker[J].Plant cell reports,2007,26(2):187-198.
[8] SAHOO D P,KUMAR S,MISHRA S,et al.Enhanced salinity tolerance in transgenic mungbean overexpressing Arabidopsis antiporter (NHX1) gene[J].Molecular breeding,2016,36(10):144.
[9] 王萍,王軍軍,商德虎,等.影響大豆子葉節叢生芽形成的誘導因子研究[J].吉林農業科學,2001,26(6):20-23.
[10] 孫昕.吉育 47 大豆子葉節遺傳轉化體系的建立與優化[D].長春:吉林大學,2013.
[11] WRIGHT M S,GARNES M G,HINCHEE M A,et al.Plant regeneration from tissue cultures of soybean by organogenesis[J].Plant regeneration and genetic variability,1986,3:111-119.
[12] 林樹柱,曹越平,衛志明,等.6-BA 誘導大豆子葉節和莖尖出芽的研究[J].上海交通大學學報 (農業科學版),2005,23(2):138-142.
[13] BAKSHI S,ROY N K,SAHOO L.Seedling preconditioning in thidiazuron enhances axillary shoot proliferation and recovery of transgenic cowpea plants[J].Plant cell,tissue and organ culture,2012,110(1):77-91.
[14] COLLADO R,VEITA N,BERMU′DEZCARABALLOSO I,et al.Efficient in vitro plant regeneration via indirect organogenesis for different common bean cultivars[J].Scientia horticulturae,2013,153:109-116.
[15] GULATI A,JAIWAL P K.Plant regeneration from cotyledonary node explants of mungbean (Vigna radiata (L.) Wilczek)[J].Plant cell reports,1994,13(9):523-527.
[16] JAIWAL P K,KUMARI R,IGNACIMUTHU S,et al.Agrobacterium tumefaciensmediated genetic transformation of mungbean (Vigna radiata L.Wilczek)A recalcitrant grain legume[J].Plant science,2001,161(2):239-247.
[17] 陳海軍,劉嘉偉,李佳,等.黑果枸杞 (Lycium ruthenicum) 組織培養與再生體系的建立[J].內蒙古農業大學學報(自然科學版),2018,39(4):14-23.
[18] 賴冰冰,韓陽,李春風,等.大豆子葉節植株再生體系的研究[J].大豆科學,2011,30(2):303-305.
[19] MENDOZA A B,FUTSUHARA Y.Varietal differences on plant regeneration by tissue culture in mungbean Vigna radiata (L.) Wilczek[J].Japanese journal of breeding 1990,40(4):457-467.