夏儒銳 梁培育 王聲興 歐善際 彭曉暉
(海南醫學院第一附屬醫院泌尿外科,???570102)
膀胱癌是泌尿系統常見的惡性腫瘤,以膀胱尿路上皮癌(bladder urothelial carcinoma,BUC)最為常見,其易復發和轉移性及術后并發癥導致患者生存質量降低,患者5年生存率低于15%[1]。研究其發展的分子機制對疾病的靶向治療極其重要。研究表明,lncRNA和miRNA在可作為預測BUC患者生存和預后的獨立標志物[2-3]。有報道,lncRNA HOXA11-AS(homeobox A11-antisense RNA)在肝癌組織、骨肉瘤組織和細胞及口腔鱗狀細胞癌組織中高表達,其過表達可促進口腔鱗狀細胞癌細胞的增殖,抑制其表達可抑制肝癌和骨肉瘤細胞的遷移和侵襲能力[4-6]。本研究通過生物信息學預測,發現miR-515-5p可能是lncRNA HOXA11-AS的靶基因。MiR-515-5p在前列腺癌、非小細胞肺癌和胃癌細胞中表達下調,過表達miR-515-5p可抑制癌細胞的增殖或轉移[7-9]。但lncRNA HOXA11-AS和miR-515-5p在BUC中的表達、對癌細胞的影響及兩者的關系目前還尚未可知。本研究探尋HOXA11-AS和miR-515-5p在BUC細胞增殖、遷移、侵襲中的作用機制,以期為BUC的診斷治療提供新的分子生物學靶點。
1.1材料
1.1.1標本 選取2016年6月至2017年12月于本院病理檢查確診為BUC的患者手術切除的BUC組織及癌旁組織(距離BUC組織邊緣>1.5 cm)各20例,男16例,女4例,年齡26~80歲,平均年齡(49.5±16.6)歲,按照2006年WHO標準分類,浸潤性14例,非浸潤型6例。所有患者術前未接受放療和化療。本研究通過醫院醫學倫理委員會批準,并與所有患者簽訂知情同意書。
1.1.2試劑及儀器 人BUC細胞株J82購自ATCC;胎牛血清(fetal bovine serum,FBS)和MEM培養基購自美國Gibco公司,Total RNA提取試劑盒、RT-PCR試劑盒、反轉錄試劑盒(RT-PCR)、Lipofectamine 2000轉染試劑購自美國Invitrogen公司;四氮唑藍(MTT)、二甲基亞砜(DMSO)和胰蛋白酶Trypsin購自美國Sigma-Aldrich公司;Cyclin D1、p21、p27、MMP-2、MMP-9、MMP-14和GAPDH抗體購自美國Santa公司;lncRNA HOAX11-AS抑制劑(si-HOAX11-AS)、HOAX11-AS過表達載體(pcDNA-HOXA11-AS)、miR-515-5p模擬物(miR-515-5p)、miR-515-5p模擬物(miR-515-5p)、陰性對照(si-NC、pcDNA、anti-miR-NC和miR-NC)和HOXA11-AS野生型(WT-HOXA11-AS)、突變型(MUT-HOXA11-AS)雙熒光素酶載體購自蘇州吉瑪基因公司;Transwell板購自美國Corning公司;雙熒光素酶報告系統(Dual-Luciferase Reporter Assay System)購自美國Promega公司;光學顯微鏡、全自動酶標儀、發光儀及RT-PCR儀購自美國Bio-Rad公司。
1.2方法
1.2.1細胞培養 將J82細胞培養在含10% FBS、100 U/ml青霉素和100 μg/ml鏈霉素的MEM培養液中,培養條件:濕度95%,37℃,5%CO2培養箱中培養。傳代保存。
1.2.2細胞轉染 轉染前24 h,收集對數生長期的J82細胞,胰蛋白酶消化,將細胞稀釋為1×106個/ml,以2×105個/孔接種于6孔板,培養至融合度達到80%時,按照Lipofectamine 2000轉染試劑說明書進行轉染。轉染分組:HOXA11-AS干擾組(轉染si-NC和si-HOXA11-AS);miR-515-5p過表達組(轉染miR-NC和miR-515-5p);HOXA11-AS過表達組(轉染pcDNA和pcDNA-HOXA11-AS);miR-515-5p和HOXA11-AS雙抑制組(共轉染si-HOXA11-AS+anti-miR-NC、si-HOXA11-AS+anti-miR-515-5p),雙熒光素酶報告系統組(共轉染miR-NC+WT-HOXA11-AS、miR-515-5p+WT-HOXA11-AS、miR-NC+MUT-HOXA11-AS和miR-515-5p+MUT-HOXA11-AS)。轉染48 h,收集細胞進行后續實驗。
1.2.3qRT-PCR檢測miR-515-5p和lncRNA HOXA11-AS的表達 用總RNA提取試劑盒從BUC組織、癌旁組織和培養的J82細胞中提取總RNA,然后反轉錄試劑盒合成cDNA,合成的cDNA檢測后于-80℃保存。取cDNA按照qRT-PCR的說明書進行反應合成lncRNA HOXA11-AS和miR-515-5p,反應程序為:94℃ 5 min;94℃ 30 s、60℃ 44 s、72℃ 30 s,45個循環;72℃延伸10 min。用2-ΔΔCt方法進行數據分析。
1.2.4MTT實驗測定細胞增殖 轉染48 h后,胰蛋白酶消化J82細胞,離心后培養基重懸細胞,將細胞稀釋濃度為1×105個/ml,以200 μl/孔接種于96孔板,繼續培養,分別在培養至24 h、48 h和72 h時,每孔加入20 μl MTT(5 mg/ml),繼續培養4 h,棄上清培養液,加入150 μl DMSO,振蕩10 min,酶標儀檢測490 nm處的吸光度值。
1.2.5Transwell實驗測定細胞遷移和侵襲 遷移實驗:收集轉染后各組J82細胞,用不含FBS的MEM培養基過夜饑餓培養,用胰蛋白酶消化細胞,用無血清培養基稀釋細胞為1×105個/ml。在Transwell下層培養孔加入500 μl含10%FBS的MEM培養基作為遷移趨化物,Transwell上層小室加入100 μl稀釋的J82細胞,再將上層小室放入下層培養孔中,置 CO2培養箱培養24 h,用棉簽拭去上層小室未遷移的細胞,甲醛固定遷移細胞,結晶紫染色,顯微鏡觀察計數遷移細胞。侵襲實驗:用4℃無血清培養基1∶8比例稀釋液化的Matrigel,取100 μl加入上層Transwell小室,固化,以下步驟同遷移實驗。
1.2.6雙熒光素酶報告系統實驗 根據1.2.2進行J82細胞培養和轉染,將構建的含HOXA11-AS和miR-515-5p結合位點的WT-HOXA11-AS和MUT-HOXA11-AS雙熒光素酶報告載體,分別與miR-NC或miR-515-5p共轉染J82細胞,轉染后培養48 h,收集并裂解細胞,離心收集上清,-20℃保存或根據試劑盒說明書進行操作,發光儀檢測熒光素酶活性。以海腎熒光素酶活性為內參照,計算相對螢火蟲熒光素酶活性。
1.2.7Western blot檢測蛋白表達 收集各組轉染的J82細胞,RIPA裂解液裂解細胞,將細胞進行破碎,收集蛋白,并進行SDS-PAGE,分離蛋白,轉PVDF膜,室溫封閉2 h,洗膜,加入稀釋的一抗(Cyclin D1抗體1∶2 000、p21抗體1∶2 000、p27抗體1∶1 000、MMP-2抗體1∶1 000、MMP-9抗體1∶1 000、MMP-14抗體1∶2 000和GAPDH抗體1∶3 000),4℃過夜孵育,洗膜,加入稀釋的酶標二抗,洗膜,顯影,以為GAPDH內參照,計算蛋白水平。

2.1lncRNA HOXA11-AS和miR-515-5p在BUC中的表達 結果表明,與正常癌旁組織相比,BUC中HOXA11-AS含量顯著升高(P<0.05),miR-515-5p的含量顯著下降(P<0.05),見表1。
2.2干擾HOXA11-AS表達可抑制膀胱尿路上皮癌J82細胞增殖 轉染后,與si-NC組相比,si-HOX-A11-AS組的J82細胞中HOXA11-AS水平顯著下降(P<0.05),si-HOXA11-AS組的細胞OD值在48 h、72 h均顯著下降(P<0.05),Cyclin D1表達下降(P<0.05),p21和p27表達升高(P<0.05),見圖1和表2。說明干擾HOXA11-AS表達可以抑制J82細胞增殖。
2.3干擾HOXA11-AS表達可抑制膀胱尿路上皮癌J82細胞遷移、侵襲 與si-NC組相比,si-HOXA11-AS組J82細胞的遷移細胞數和侵襲細胞數均顯著下降(P<0.05),MMP-2、MMP-9和MMP-14含量顯著降低(P<0.05),見圖2和表3。
2.4miR-515-5p過表達可抑制J82細胞增殖、遷移、侵襲 轉染后,與miR-NC組相比,miR-515-5p組的miR-515-5p水平顯著上升(P<0.05),J82細胞OD值在48 h和72 h時均顯著降低(P<0.05),遷移細胞數和侵襲細胞數也顯著下降(P<0.05),Cyclin D1、MMP-2和MMP-9表達降低(P<0.05),p21表達升高(P<0.05),見圖3和表4。

表1 HOXA11-AS和miR-515-5p在BUC和癌旁組織中的表達

圖1 增殖相關蛋白表達Fig.1 Expression of proliferation-related proteins

表2 干擾HOXA11-AS表達對J82細胞增殖的影響


圖2 干擾HOXA11-AS表達對J82細胞遷移、侵襲的影響


圖3 miR-515-5p過表達對J82細胞增殖、遷移侵襲的影響

表3 抑制HOXA11-AS表達對J82細胞遷移、侵襲的影響

表4 miR-515-5p過表達對J82細胞增殖、遷移和侵襲的影響

圖4 HOXA11-AS的序列中含有與miR-515-5p互補的核苷酸序列Fig.4 Sequence of HOXA11-AS contains complementary nucleotide sequences with miR-515-5p
2.5lncRNA HOXA11-AS靶向調控miR-515-5p的表達 Targetscan預測發現,miR-515-5p的序列中含有與HOXA11-AS互補的序列,見圖4。雙熒光素酶報告系統結果如表5所示,與miR-NC對照組相比,miR-515-5p組野生型WT-HOXA11-AS的螢火蟲熒光素酶相對活性顯著下降(P<0.05);而突變型MUT-HOXA11-AS的螢火蟲熒光素酶相對活性無顯著性差異。qRT-PCR結果表明,與pcDNA組相比,pcDNA-HOXA11-AS組的miR-515-5p含量顯著下降(P<0.05);與si-NC組相比,si-HOXA11-AS組的miR-515-5p水平顯著上升(P<0.05)。說明HOXA11-AS靶向負調控miR-515-5p的表達,見表6。

表5 雙熒光素酶報告實驗

表6 lncRNA HOXA11-AS調控miR-515-5p的表達


圖5 抑制miR-515-5p表達逆轉干擾HOXA11-AS表達對膀胱尿路上皮癌J82細胞增殖、遷移侵襲的作用

表7 抑制miR-515-5p表達逆轉干擾HOXA11-AS表達對J82細胞增殖、遷移、侵襲的作用
2.6抑制miR-515-5p表達逆轉干擾HOXA11-AS表達對J82細胞增殖、遷移和侵襲的作用 與si-NC組相比,si-HOXA11-AS組J82細胞中miR-515-5p含量顯著升高(P<0.05),細胞OD值在48 h和72 h時顯著下降(P<0.05),遷移和侵襲細胞數下降(P<0.05),Cyclin D1、MMP-2和MMP-9表達降低(P<0.05),p21表達升高(P<0.05);與si-HOXA11-AS+anti-miR-NC相比,si-HOXA11-AS+anti-miR-515-5p組J82細胞結果相反,見圖5、表7。說明抑制miR-515-5p表達逆轉干擾HOXA11-AS表達對J82細胞增殖、遷移和侵襲的作用。
HOXA11-AS是一種新發現的致癌lncRNA,在多種腫瘤中表達上調,是一種可預測惡性腫瘤轉移和預后的潛在生物標志物[10]。 HOXA11-AS在胃癌組織中表達上調,在體內敲除HOXA11-AS可誘導胃癌細胞G0/G1期阻滯,抑制胃癌細胞的遷移、侵襲和轉移[11]。HOXA11-AS在乳腺癌組織中高表達,通過影響EMT標志物(E-cadherin、N-cadherin、Vimentin)的表達,干擾其表達可抑制癌細胞侵襲和遷移[12]。HOXA11-AS在膠質瘤組織和細胞中表達升高,通過調控miR-214-3p/EZH2軸促進膠質瘤細胞生長和轉移[13]。但其在BUC中的表達還不清楚。本研究發現,與正常癌旁組織相比,HOXA11-AS在BUC組織中表達量顯著升高,干擾HOXA11-AS表達可抑制膀胱尿路上皮癌J82細胞增殖、遷移、侵襲。HOXA11-AS在多種癌癥包括BUC中表達上調,并調控癌細胞增殖、遷移和侵襲[10]。
本研究通過Targetscan預測發現,lncRNA HOXA11-AS序列中含有與miR-515-5p互補的核苷酸序列,預示miR-515-5p可能是HOXA11-AS的靶基因。miR-515-5p在前列腺癌、非小細胞肺癌和胃癌中表達下調,與癌細胞的增殖和轉移有關[7-9]。miR-515-5p在乳腺癌組織中表達下調,與IGF-1R的單核苷酸多態性影響BRCA1突變攜帶者的乳腺癌風險[14]。miR-515-5p高表達與乳腺癌和肺癌患者生存率增加有關,通過miR-515-5p/MARK4途徑調控癌細胞的遷移和侵襲[15]。miR-515-5p在BUC中的表達尚不清楚。本研究結果發現,miR-515-5p在BUC組織中水平降低,過表達miR-515-5p可抑制J82細胞增殖、遷移、侵襲。說明miR-515-5p在BUC進展中發揮重要作用。
而雙熒光素酶報告系統和qRT-PCR結果顯示,HOXA11-AS靶向負調控miR-515-5p的表達;抑制miR-515-5p表達逆轉了干擾HOXA11-AS表達對J82細胞增殖、遷移、侵襲的作用,進一步證實了在BUC中兩者的調控關系。綜上,本研究闡述了在BUC細胞J82中,lncRNA HOXA11-AS靶向miR-515-5p調控腫瘤細胞的增殖、遷移和侵襲。本研究只進行了體外細胞的研究,后續研究會從體內動物模型試驗著手,以期為BUC的臨床研究提供更多的數據支持,以期發現新的靶點。