豬偽狂犬病病毒安徽分離株對小鼠的致病性研究

李春芬，何贊贊，楊龍斌，何長生，占松鶴，孫 裴，魏建忠，李 郁

（1.安徽農業大學動物科技學院，安徽 合肥 230036；2.巢湖市畜牧獸醫中心，安徽 巢湖 238000；3.安徽省動物疫病預防與控制中心，安徽 合肥 230091）

豬偽狂犬病（Pseudorabies, PR）是由豬偽狂犬病病毒（Pseudorabies virus, PRV）引起的一種高度接觸性傳染病[1]。一般成年豬呈隱性感染，可導致妊娠母豬流產、死胎和木乃伊胎，種豬不育，15日齡內的仔豬病死率高，肥育豬呼吸困難、生長停滯、增重緩慢等。PR呈世界性分布，是危害全球養豬業的重大傳染病之一。世界動物衛生組織（OIE）將PR列為必須通報的動物疫病，我國農業農村部將PR列為二類動物疫病，同時PR也是我國《國家中長期動物疫病防治規劃（2012—2020年）》中優先防治的動物疫病，要求到2020年底全國所有種豬場達到凈化標準。

疫苗免疫接種是預防和控制PR的根本措施，以凈化豬群為主要手段。20世紀90年代以來，隨著PR基因缺失疫苗（Bartha-K61株）的引入并廣泛使用，PR在我國大部分地區得到有效控制[2]。但自2011年以來，我國各地均有PR疫情的報道[3-5]，給養豬業造成了嚴重的經濟損失。安徽地區豬群中PRV的感染率也呈現逐年上升趨勢[6-7]，可臨床流行毒株的致病性、與疫苗株之間的匹配性等目前尚不清楚。本研究在從安徽不同地區疑似PRV感染病豬中分離鑒定的13株PRV基礎上，以小鼠為動物模型，通過對13株PRV安徽分離株的半數致死量（LD50）測定、病理剖檢和病理組織學觀察以及各組織臟器的病毒載量檢測，了解和掌握PRV安徽分離株的毒力特征，從而為深入研究PRV安徽分離株的抗原性奠定基礎，為安徽地區PR的有效防控提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 試驗時間與地點

試驗于2016年1月至2018年12月在安徽農業大學動物傳染病研究室進行。

1.2 毒株、細胞及試驗動物

13株PRV安徽分離株（代號為AH1601～AH1604、AH1701～AH1704、AH1801～AH1805）由安徽農業大學動物傳染病研究室分離、鑒定[8]；Vero細胞由安徽農業大學動物傳染病研究室保存；455只體重為18～22 g清潔級昆明雌性小鼠購自安徽醫科大學動物實驗中心。

1.3 主要試劑與儀器

DMEM培養液、2×SuperStar Plus High-GC PCR Mix、DL 2000 DNA Marker。熒光定量PCR儀、PCR擴增儀、凝膠成像系統、超高速離心機。

1.4 半數致死量（LD50）的測定

在13株PRV安徽分離株中，每株為1組，共計13組（編號為1～13）。以第1組（代號為AH1601的PRV安徽分離株）為例說明。將AH1601半數組織培養感染劑量（50% tissue culture infective dose, TCID50）為106/mL進行10倍遞增稀釋，取6個不同釋梯度（106～101TCID50）的病毒液編號為1A～1F。35只小鼠隨機分成7組（編號1A～1F和G），每組5只。試驗組1A～1F，頸部皮下注射對應的不同稀釋度PRV，0.1 mL/只；對照組G，以相同的接種途徑和劑量注射DMEM細胞培養液。在適宜環境下每組小鼠分別隔離飼養。持續觀察1周并記錄小鼠的精神狀態及死亡情況，按照Reed-Muench法計算AH1601的LD50。

1.5 病理剖檢及病理組織學觀察

經1.4攻毒后觀察各組小鼠精神狀態，分別取第1～13組PRV攻毒劑量為106TCID50（試驗A組）小鼠，依次標記為1A～13A，對照組小鼠標記為G，剖檢小鼠觀察各臟器病變，并采集小鼠的腦組織及肺、肝、脾和腎臟于10%福爾馬林溶液中，24 h后重新更換福爾馬林，進行固定和保存，之后送至安徽醫科大學制備病理組織切片，顯微鏡觀察，比較各組織病變程度。

1.6 感染小鼠各組織臟器中PRV載量的檢測

經1.4攻毒后，分別取第1～13組PRV攻毒劑量為106TCID50（試驗A組）小鼠，采其腦組織及肺、肝、脾和腎臟于1.5 mL研磨管，稱重記錄（各組織重約100 mg），按照一定體積比（1∶5）加入無菌PBS緩沖液進行研磨，提取各組織核酸，利用安徽農業大學動物傳染病實驗室建立的SYBR Green Ⅰ熒光定量PCR檢測PRVgE基因的方法，對各臟器組織進行PRV載量的檢測。

2 結果與分析

2.1 LD50的測定結果

1 3株PRV安徽分離株對小鼠的LD50在102.569～105.167TCID50之間，不同毒株對小鼠致病力大小各有差異，其中AH1802和AH1803對小鼠的致病力最強，LD50分別為102.569TCID50和102.833TCID50，AH1603和AH1703對小鼠的致病力最弱，LD50均為105.167TCID50（表1）。

表1 13株PRV安徽分離株對小鼠的LD50測定結果

2.2 病理剖檢及病理組織學觀察結果

在LD50的測定中，對照組小鼠均健活，試驗組小鼠死前出現精神沉郁、食欲下降、呼吸加快等現象。部分小鼠出現典型的PR癥狀：奇癢、啃咬注射部位，致使局部被毛脫落、皮膚出血，隨后四肢麻痹，倒地不起，最后衰竭死亡。剖檢死亡小鼠可見肝、脾、肺、腎臟及腦等部位均有不同程度的出血、腫大，對照組無異常變化。病理組織HE檢查結果如下。

2.2.1 腦部 對照組G結構正常，未見明顯病理變化。試驗組1A、3A未見明顯病理變化；2A少量炎癥細胞浸潤；4A腦血管輕微充血；5A、7A、8A少量炎癥細胞浸潤；6A輕微病毒性腦炎；9A大量炎癥細胞浸潤，腦水腫；10A病毒性腦炎，大量炎癥細胞浸潤；11A病毒性腦炎，腦水腫；12A輕微腦炎，出血；13A病毒性腦炎，腦水腫（圖1）。結果表明，AH1801、AH1802、AH1803感染小鼠腦組織病理變化較為嚴重。

2.2.2 肺臟 對照組G整體結構正常，肺泡結構清晰，肺泡壁無明顯增厚，組織未見明顯炎癥細胞浸潤。試驗組1A輕微出血，少量炎癥細胞浸潤；2A炎癥細胞浸潤，肺泡壁增厚；3A少量炎癥細胞浸潤；4A肺動脈充血；5A炎癥細胞浸潤；6A、9A肺泡壁輕微增厚；7A肺泡腔變小；8A肺動脈血管充血，組織間隙輕微出血；10A肺臟出血、肺泡內出血；11A炎癥細胞浸潤；12A肺動脈充血，肺泡壁增厚；13A肺臟出血，彌漫性炎癥細胞浸潤（圖2）。結果表明，AH1802、AH1803、AH1804、AH1805感染小鼠肺臟組織病理變化較為嚴重。

圖1 各組小鼠腦組織病理組織學觀察（HE染色，20×）

圖2 各組小鼠肺臟病理組織學觀察（HE染色，20×）

2.2.3 肝臟 對照組G整體結構正常，中央靜脈輪廓清晰，肝細胞結構飽滿，肝索沿著中央靜脈放射狀排列。試驗組1A淤血；2A中央靜脈充血；3A無特征性明顯病變；4A肝竇間隙輕微增寬，組織少量炎癥細胞浸潤；5A少量炎癥細胞浸潤；6A炎癥細胞浸潤；7A出血，充血；8A少量炎癥細胞浸潤；9A充血；10A肝細胞排列紊亂，空泡性變性；11A炎癥細胞浸潤，肝水腫；12A肝竇間隙輕微增寬；13A少量炎癥細胞浸潤（圖3）。結果表明，AH1702、AH1802、AH1803感染小鼠肝臟組織病理變化較為嚴重。

圖3 各組小鼠肝臟病理組織學觀察（HE染色，20×）

2.2.4 脾臟 對照組G整體結構正常，脾小結結構清晰，無明顯增大縮小，紅髓白髓界限分明，無明顯壞死，淋巴細胞無明顯變性壞死，組織未見明顯中性粒細胞浸潤。試驗組1A、7A、9A無明顯特征性病變；2A、3A、8A少量中性粒細胞浸潤；4A淤血；5A出血；6A紅細胞浸潤；10A紅髓白髓界限不清；11A中性粒細胞浸潤；12A結締組織增生；13A淋巴細胞增生，紅細胞浸潤（圖4）。結果表明，AH1701、AH1802、AH1803感染小鼠脾臟組織病理變化較為嚴重。

圖4 各組小鼠脾臟病理組織學觀察（HE染色，20×）

2.2.5 腎臟 對照組G整體結構正常，未見腎小管上皮細胞明顯脫落水腫，腎小球結構清晰可見，組織未見明顯炎癥細胞浸潤。試驗組1A少量炎癥細胞浸潤；2A、4A腎小管上皮細胞空泡性變性；3A血管充血，炎癥細胞浸潤；5A腎小球輕微出血；6A輕微出血；7A腎小管上皮細胞空泡性變性；8A無明顯病理變化；9A組織間隙少量出血；10A出血；11A血管充血；12A腎小管上皮細胞空泡性變性，炎癥細胞浸潤；13A大量炎癥細胞浸潤，組織間隙輕微出血（圖5）。結果表明，AH1703、AH1802、AH1803、AH1804感染小鼠腎臟組織病理變化較為嚴重。

圖5 各組小鼠腎臟病理組織學觀察（HE染色，20×）

2.3 感染小鼠各組織臟器中PRV載量的檢測結果

13株PRV安徽分離株在感染小鼠各組織臟器中的病毒載量因不同毒株、不同臟器存在差異。試驗組第1～9、12～13組肝臟病毒含量顯著低于第10、11組（P＜0.05），第10組顯著低于第11組（P＜0.05），第11組病毒含量最高；第1～9、12～13組脾臟病毒含量顯著低于第10、11組（P＜0.05），第11組顯著低于第10組（P＜0.05），第10組病毒含量最高；第1～6、8、9、11～13組肺臟病毒含量顯著低于第7、10組（P＜0.05），第7組顯著低于第10組（P＜0.05），第10組病毒含量最高；第2、3、5、8、9、11、13組間腎臟組織病毒含量以及第4、6、10、12組間腎臟組織病毒含量無顯著差異（P＞0.05），但均顯著低于第7、1組（P＜0.05），第7組與第1組差異不顯著（P＞0.05），第1組病毒含量最高；第1～7、9、12～13組腦組織病毒含量均顯著低于第8、10、11組（P＜0.05），第8組顯著低于第10組（P＜0.05），第10組顯著低于第11組（P＜0.05），第11組病毒含量最高。結果表明，AH1802和AH1803感染小鼠肝臟、脾臟、腦中的病毒含量顯著高于其他11株（P＜0.05），AH1703和AH1802在肺臟中的病毒含量顯著高于其他11株（P＜0.05），AH1703、AH1704和AH1804在腦和肺臟中的病毒含量均顯著高于肝臟、脾臟和腎臟（表2）。

表2 13株PRV分離株攻毒后小鼠各組織病毒載量的測定結果 ng/μL

3 討論

PR具有傳播快、病死率高、流行范圍廣、傳播途徑多、病原體頑固等特點。自2011年以來，我國多省免疫過PRV基因缺失疫苗（Bartha-k61株）的豬群均出現PR疫情，其主要表現為突發性大面積母豬流產，肥育豬致死性感染，豬群gE抗體陽性率突然升高。有研究表明，此PR的暴發是由PRV變異株引起[9]。新的PRV流行株在多個基因位點發生了抗原變異，變異株與經典株屬于兩個不同的進化分支，且Bartha-k61株疫苗不能對變異株的攻擊提供完全抵抗[10-11]。2012年以來，安徽省部分地區也相繼發生PR。李春芬等[7]對2013—2017年安徽部分地區22 130份血清樣品進行PRV-gE抗體檢測，結果顯示豬群PRV感染呈現逐年上升趨勢。袁獻宇等[8]從2016—2018年安徽臨診病例中共分離鑒定了15株PRV，其主要毒力基因核苷酸序列均與2011年國內PRV變異株同源性較高，變異株已成為安徽省主要的流行毒株。面對PRV變異株的廣泛流行，對PRV變異株進行致病性研究，了解流行毒株的特征，對于提出科學有效的防制措施具有重要意義。

因PRV感染豬、羊及小鼠組織病理學病變相似，且小鼠感染PRV強毒株后病理變化明顯[11]，故本研究以小鼠為試驗動物模型。PRV只有1個血清型，不同毒株在毒力和生物學特性等方面存在差異。本研究LD50測定結果顯示，13株PRV的LD50在102.569～105.167TCID50之間，其中AH1802和AH1803的LD50分別為102.569TCID50和102.833TCID50，AH1603和AH1703的LD50均為105.167TCID50，表明PRV安徽分離株之間的毒力存在差異，AH1802和AH1803對小鼠的致病力最強，AH1603和AH1703對小鼠的致病力最弱。病理學結果顯示，小鼠肝、脾、肺、腎臟和腦等部位均有不同程度的出血、腫大，但各組織的病變程度因不同毒株而異，其中AH1802、AH1803引起的病變較其他毒株嚴重，主要表現為病毒性腦炎、腦水腫，肺、肝臟出血、炎癥細胞浸潤，脾臟紅白髓界限不清，大量炎癥細胞浸潤，腎臟出血等，進一步表明源自安徽不同地區的13株PRV毒力不同。

不同毒力PRV毒株感染后在機體內的分布存在差異，強毒株廣泛分布于全身，而弱毒株和中等毒力毒株在體內的擴散只局限在中樞神經系統（central nervous system, CNS）[12]。本研究13株PRV經頸部皮下攻毒小鼠，試驗組小鼠出現精神沉郁、食欲下降、呼吸加快等現象，部分小鼠出現奇癢、啃咬注射部位等典型PR癥狀后不久死亡；發病和死亡小鼠多個組織器官均出現明顯病理變化，且從發病和死亡小鼠的腦部、肺臟、肝臟、脾臟、腎臟等組織均檢測出PRV核酸，而對照組小鼠則均健活，且組織器官未呈現異常變化，表明13株PRV在發病和死亡小鼠體內分布廣泛，對小鼠具有較強的致病性。

熒光定量PCR檢測結果顯示，13株PRV在感染小鼠各組織中的病毒載量因不同毒株、不同臟器而各有不同，其中AH1802和AH1803感染小鼠在腦、肝臟、脾臟中的病毒載量顯著高于其他11株（P＜0.05），AH1703和AH1802在肺臟中的病毒載量顯著高于其他11株（P＜0.05），AH1601在腎臟中的病毒載量最高，AH1703、AH1704和AH1804在腦和肺臟中的病毒載量顯著高于肝臟、脾臟和腎臟，這或與毒株來源于不同地區、毒株本身發生變異和PRV在小鼠內的侵染途徑不同有關，究其原因需要進一步地深入研究。

綜上表明13株PRV均對小鼠具有較強的致病性，且AH1802和AH1803對小鼠的致病性強于其他毒株。針對PR的防控策略，在重視和加強疫苗免疫的基礎上，加強毒株遺傳變異研究，針對性地進行疫苗研發才是控制PR的關鍵。本研究不僅豐富了安徽PR流行病學資料，為進一步研究PRV安徽分離株的抗原性奠定基礎，也為安徽地區PR的有效防控提供了科學依據。