李雯,趙偉偉,葛建敏,吳俊峰,董建芳
張家口市第一醫院,河北張家口075000
咳嗽變異性哮喘(CVA)是一種以咳嗽為主的不典型哮喘,具有與典型哮喘類似的臨床和病理生理特征,如季節性咳嗽、氣道高反應性、嗜酸性氣道炎癥和氣道重塑等。CVA 是導致兒童慢性咳嗽的主要原因,部分患者可進展為典型哮喘[1]。CAV 存在輔助型T 細胞1(Th1)/輔助型T 細胞2(Th2)失衡,表現為以Th2 為主的免疫反應。Th2 相關細胞因子可誘導炎性介質釋放,導致局部氣道炎性細胞浸潤[2]。微小RNA 是一類小編碼RNA,在細胞增殖、炎性反應、免疫調節等病理生理過程中發揮重要作用[3]。微小RNA-155(miR-155)是一種多功能性非編碼蛋白RNA,其表達與癌癥發展、炎癥反應和免疫穩態有關,參與Th2 相關免疫應答[4]。細胞因子信號轉導蛋白抑制蛋白1(SOCS-1)是一種通過抑制Janus激酶(JAK)/轉錄信號轉導器和激活因子(STAT)來調控細胞因子信號轉導的調節因子,在免疫反應中發揮調控作用[5]。SOCS-1在活化單核細胞中異常表達,誘導M2 巨噬細胞分化,參與過敏性哮喘的發生發展[6]。因此,本研究擬探討 miR-155、SOCS-1 與CVA 患兒Th1/Th2 失衡的關系,以期為臨床CVA 治療提供理論基礎。
1.1 臨床資料 選擇 2018 年 3 月—2020 年 6 月本院收治的103 例CVA 患兒(CVA 組),納入標準:①具有典型CAV 癥狀,符合2013 版《中國兒童慢性咳嗽診斷與治療指南》中CAV診斷標準[7];②病程大于1 個月;③肺功能正常。排除標準:①慢性阻塞性肺疾病、支氣管擴張、肺結核、肺部感染等疾病;②過敏性疾病、免疫性疾病、感染性疾病;③近1 個月服用免疫抑制劑;④合并惡性腫瘤。其中男59 例、女44例,年齡 2~12(7.25 ± 2.16)歲,有哮喘家族史 42例,過敏體質21 例,IgE 陽性53 例。另選擇同期本院兒科保健門診接診的72例健康兒童為對照組,均經門診體檢排除呼吸道感染、哮喘、高血壓、糖尿病、免疫性疾病等。其中男39 例、女33 例,年齡2~11(7.93 ± 2.04)歲。兩組性別、年齡比較差異無統計學意義(P均>0.05)。受試兒童法定監護人均簽署知情同意書。本研究獲得醫院醫學倫理委員會批準。
1.2 外周血miR-155、SOCS-1 mRNA 表達檢測 采用RT-PCR 法。采集兩組空腹靜脈血5 mL,注入EDTA 抗凝管,4 ℃ 3 000 r/min 離心 20 min(離心半徑10 cm),分離血漿,-80 ℃保存備用。室溫復融血漿樣本,采用TRIzol 試劑(美國Ambio 公司)提取總RNA,采用 CFX96 實時熒光PCR 儀(美國Bio-Rad 公司)M-MLV 逆轉錄酶(Epicentre 公司)進行RT-PCR,將總RNA轉錄為cDNA。反轉錄體系共18 μL,包括RNA 模板 5 μL,OligodT 1 μL,反轉錄酶(50 U/μL)1 μL,RNA 酶 抑 制劑(20 U/μL)0.5 μL,dNTPs(100 mmol/L)1 μL,Buffer 液1.5 μL,DEPC 水5 μL,U6及miRNA引物3 μL。引物合成及序列測定由上海基康公司完成。miR-155 上游引物5'-CGTTAATGC?TAATCGTGATAG-3',下 游 引 物 5'-GCAGGGTCC?GAGGT-3';SOCS-1 上 游 引 物 5'-AGACCCCTTCT?CACCTCTTG-3', 下 游 引 物 5'-CTGCACAG?CAGAAAAATAAAGC-3';U6上游引物5'-CTCGCTTC?GGCAGCACA-3',下 游 引 物 5'-AACGCTTCAC?GAATTTGCGT-3'。反應條件:95 ℃預變性10 s,65 ℃變性 20 s;75 ℃退火15 s,共40 個循環。擴增條件:95 ℃預變性 10 min,95 ℃變性 15 s、60 ℃退火 60 s,45 個循環,共進行 3 次平行試驗。用 2-ΔΔCt法計算miR-155、SOCS-1 mRNA相對表達量。
1.3 外周血Th1、Th2 及其相關細胞因子檢測 采集兩組肘靜脈血6 mL,一份注入EDTA 抗凝管混勻檢測Th1、Th2,一份注入干燥試管檢測相關細胞因子。取100 μL 血液標本注入流式檢測管,加入Per?CP-小鼠抗人CD4 單克隆抗體IgG,室溫避光孵育30 min,加入 2 mL 紅細胞 lysis Buffer 混勻,室溫避光孵育10 min,300 g 離心5 cm(離心半徑10 cm)棄上清,用2 mL 磷酸鹽緩沖液洗滌。加入PerCP-抗CD3和PE-抗CD8抗體,再次離心洗滌,加入500 μL磷酸鹽緩沖液重懸細胞,制成外周血單個核細胞液懸液(1×104/mL)。用 EPICS-XL 流式細胞儀檢測 Th1、Th2 細胞比例,計算Th1/Th2。干燥試管血標本置于安徽中科中佳臺式離心機KDC-1044L 進行離心處理,離心半徑為15 cm,離心速率3 000 r/min,離心時間為10 min,取血清-80 ℃保存。采用酶鏈免疫吸附試驗檢測Th1 細胞分泌的干擾素(IFN-γ)、白細胞介素2(IL-2)及Th2 細胞分泌的IL-4、IL-10。試劑盒購自上海透景生命科技股份有限公司。
1.4 統計學方法 采用SPSS25.0 統計軟件。計量資料用±s表示,比較采用獨立樣本t檢驗。各指標之間的相關性分析采用Pearson 相關。P<0.05 為差異有統計學意義。
2.1 兩組外周血miR-155、SOCS-1 mRNA 表達比較 CVA 組外周血 miR-155、SOCS-1 mRNA 相對表達量高于對照組(P均<0.05),見表1。
表1 兩組miR-155、SOCS-1 mRNA表達比較(±s)

表1 兩組miR-155、SOCS-1 mRNA表達比較(±s)
組別CVA組對照組t P n 103 72 miR-155 1.32±0.42 0.39±0.05 22.697<0.05 SOCS-1 mRNA 1.21±0.32 0.25±0.06 29.486<0.05
2.2 兩組 Th1、Th2、Th1/Th2 及其相關細胞因子比較 CVA 組 Th2 比例及 IL-4、IL-10 水平高于對照組(P均<0.05),Th1 比例、Th1/Th2 及 INF-γ、IL-2 水平低于對照組(P均<0.05),見表2、3。
表2 兩組Th1、Th2及Th1/Th2比較(±s)

表2 兩組Th1、Th2及Th1/Th2比較(±s)
組別CVA組對照組t P n 103 72 Th1(%)3.62±0.72 6.42±2.13 12.453<0.05 Th2(%)3.31±2.09 1.39±0.42 13.697<0.05 Th1/Th2 1.09±0.27 4.76±1.51 23.925<0.05
表3 兩組相關細胞因子水平比較(pg/mL,±s)

表3 兩組相關細胞因子水平比較(pg/mL,±s)
組別CVA組對照組t P n 103 72 INF-γ 46.35± 9.59 62.35±15.49 8.782<0.05 IL-2 32.15± 6.28 52.35±13.49 13.575<0.05 IL-4 46.35±9.35 20.21±3.56 5.997<0.05 IL-10 26.35±5.15 13.43±4.23 19.386<0.05
2.3 CVA 組外周血 miR-155、SOCS-1 mRNA 表達與Th1、Th2、Th1/Th2 及相關細胞因子的相關性 CVA組患者外周血miR-155 表達與SOCS-1 mRNA 表達呈 正相 關(r=0.612,P<0.05)。CVA 組 外 周 血miR-155、SOCS-1 mRNA表達與Th2比例、IL-4、IL-10呈正相關(P均<0.05),與Th1比例、Th1/Th2、INF-γ、IL-2均呈負相關(P均<0.05)。見表4。
CVA 是典型哮喘的前驅癥狀,患兒臨床僅表現為咳嗽,無喘息或呼吸短促,肺功能正常,但是CVA患兒可出現呼吸道嗜酸性粒細胞為主的炎性細胞浸潤、平滑肌痙攣、氣道高反應性和呼吸道重構[7]。CVA 患兒對抗生素治療無反應,但傳統哮喘治療有效,被認為是特殊表型的哮喘,30%~40%的CVA 可發展成為典型哮喘,嚴重影響肺功能[8-9]。哮喘患者存在顯著的Th1/Th2 失衡,Th2 亞群占優勢易引起IgE 血癥、嗜酸性粒細胞增多癥,在哮喘發病過程中發揮關鍵作用[10-11]。CVA 與典型哮喘發病機制大致相同,Th1/Th2失衡引起的Th2優勢應答可能是其重要的免疫學發病機制[12]。

表4 CVA組外周血miR-155、SOCS-1與Th1、Th2、Th1/Th2及相關細胞因子的相關性
Th1、Th2 細胞分化和平衡調節通過細胞內轉錄、信號途徑實現。miRNA 在免疫細胞發育分化中起調控作用,其異常表達可能導致免疫紊亂[13]。miR-155來源于B細胞整合簇,在人胸腺、脾臟、肺等富含免疫細胞器官中高表達,在Th 細胞分化、細胞因子生成、免疫監管中發揮重要作用[14]。miR-155與免疫系統疾病發病密切相關。現有研究顯示,miR-155 在免疫性血小板減少癥患者中表達上調,與 B 淋巴細胞功能相關[15],miR-155 在過敏性紫癜患者表達升高,參與調節過敏性氣道炎癥反應以及IL-33信號傳導[16]。miR-155與哮喘的發生也有著密切的關系,在介導T 細胞過敏性炎癥反應中發揮作用[17]。本研究發現,miR-155 在 CVA 患兒中表達增高,且 miR-155 表達與 Th2 比例、IL-4、IL-10 呈正相關,與Th1、Th1/Th2、INF-γ、IL-2 呈負相關,說明Th1/Th2 與CVA 患兒Th1/Th2 失衡有關。相關報道指出miR-155參與T細胞免疫反應和相關細胞功能,過表達 miR-155 可促進 IFN-γ 誘導的 Th1 細胞分化,促進IL-4 誘導的 Th2 表型,miR-155 缺失是導致 Th2 活化受損的主要原因[4]。轉移相關肺腺癌轉錄本1(MALAT1)可抑制CD4+T 細胞中miR-155 表達,細胞毒 T 淋巴細胞相關抗原 4(CTLA-4)是 MALAT1 上游調節因子,CTLA-4/MALAT1/ miR-155 軸參與Th1/Th2平衡調節[18]。以上結果提示,miR-155是CVA患兒Th2相關變態反應性疾病的關鍵介質。
SOCS-1是細胞因子信號轉導的負性調節因子,經 IL-6 刺激 M1細胞后誘導 STAT3 活化,SOCS-1 通過與JAK 催化域JH1 區絡氨酸殘基結合反饋性調控 JAK/STAT 信號通路,影響細胞增殖分化[19]。SOCS-1 還可通過toll 樣受體(TLR)促效劑阻斷TLR信號轉導,參與多種免疫反應調控[20]。現有報道顯示SOCS-1 參與兒童過敏性紫癜T 輔助17 細胞/調節性T 細胞失衡調節過程[21],與哮喘發病也密切相關[22]。本研究發現,SOCS-1 在 CVA 患兒中表達升高,且其表達與Th1/Th2失衡有關,說明SOCS-1參與了Th1/Th2 的調控過程。機體在抗原刺激下JAK/STAT信號通路活化,促使SOCS-1表達,SOCS-1負向調控細胞因子信號轉導,調控Th1/Th2 處于動態平衡中,維持機體免疫穩態,SOCS-1 調控異常可引起Th1/Th2 失衡[23]。SOCS-1 參與 CVA 患兒 Th1/Th2 失衡的機制可能為:CVA 局部氣道炎癥反應誘導IL-6分泌增加,IL-6 通過 JAK/STAT 途徑誘導 SOCS-1 表達抑制Th1相關細胞因子IFN-γ分泌;另一方面通過Ras 蛋白/細胞外信號調節激酶/絲裂原活化蛋白激酶途徑活化T 細胞核因子2,促使IL-4 介導的Th2 細胞分化。說明SOCS-1 可干擾IFN-γ 信號途徑抑制Th1 分化,激活IL-4 信號途徑促使Th2 細胞優勢活化,導致Th1/Th2失衡[24]。
本研究中miR-155 與SOCS-1 表達呈正相關,說明 miR-155、SOCS-1 在 CVA 患兒 Th1/Th2 失衡中發揮作用。研究顯示,SOCS-1 是miR-155 的靶點,miR-155可調控SOCS-1表達,二者參與小膠質細胞炎癥反應、氧化應激和免疫反應[25]。miR-155/SOCS-1軸在登革病毒感染介導的宿主免疫反應中發揮重要作用[26]。以上結果提示,miR-155/SOCS-1 軸參與CVA患兒Th1/Th2失衡過程。miR-155、SOCS-1可直接調控T 淋巴細胞分化,也可通過miR-155/SOCS-1軸抑制Th1 細胞分化,促使Th2 優勢反應,進而誘導CVA發生和進展。
綜上所述,CVA 患兒外周血miR-155、SOCS-1呈高表達,miR-155、SOCS-1 可能參與了 CVA 患兒Th1/Th2 失衡過程。由于Th1/Th2 調控機制復雜,miR-155、SOCS-1 在 CVA 患兒 Th1/Th2 失衡中的調控機制尚待更多基礎研究和體外研究證實。