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羊口瘡病毒SYBR Green I實時熒光定量PCR法的建立

2021-02-27 10:31:22張敏楊丹嬌藍嵐劉怡雯葉忠明
四川畜牧獸醫(yī) 2021年2期
關鍵詞:檢測

張敏,楊丹嬌,藍嵐,劉怡雯,葉忠明

(四川省甘孜藏族自治州畜牧業(yè)科學研究所,四川康定 626000)

羊口瘡又稱羊傳染性膿皰,是由羊口瘡病毒(ORFV)引起的一類人獸共患接觸性傳染病。該病多見于小反芻獸,其中羊群最為易感。羊口瘡病毒屬于痘病毒科、副痘病毒屬,該病毒具有很強的嗜上皮性,感染羊病程初期主要表現(xiàn)為口唇、舌、鼻部出現(xiàn)紅疹,進而表現(xiàn)為張口呼吸、口腔分泌物增多、流涎、采食減少,病程后期食欲廢絕,感染部位有明顯的水泡、膿皰、糜爛,最后形成結(jié)痂[1]。該病分布廣泛,澳大利亞、新西蘭、意大利、印度、韓國等均有羊口瘡發(fā)病的報道[2]。近年來我國大力發(fā)展養(yǎng)羊業(yè),羊只交易頻繁,加速了該病在我國各地區(qū)的發(fā)生。有報道我國甘肅、新疆等省份發(fā)生過該病[3]。

注射疫苗是預防該病的有效方法,但是我國至今還沒有ORF商品化疫苗,疫苗研究還處于實驗室評估階段[4]。因此,及時準確地診斷該病,并對患病羊進行隔離和對癥治療,是阻止該病擴散的有效途徑。目前,用于診斷ORF的方法主要有電子顯微鏡檢查、血清學方法、PCR擴增、LAMP技術等[5]。SYBR Green Ι 實時熒光定量PCR和常規(guī)方法相比,具有特異性強、靈敏度高等突出優(yōu)勢[6]。本試驗基于臨床上快速高通量檢測OR?FV的需求,建立了快速檢測ORFV DNA的SYBR Green I實時熒光定量PCR方法。

1 材料

1.1 毒株 羊口瘡病毒四川毒株(ORFV-SC)由西南民族大學實驗室分離鑒定并保存。山羊痘疫苗、綿羊痘疫苗均由西南民族大學實驗室保存。

1.2 主要試劑及儀器 質(zhì)粒提取試劑盒購自OMEGA Bio-Tek公司;SYBR Premix Ex Taq ΙΙ試劑、DL2000 DNA Ladder、膠回收試劑盒、pMD19-T載體、DH5-α感態(tài)細胞均購自寶日醫(yī)生物技術(北京)有限公司;電泳瓊脂糖購自Oxoid公司;島津紫外可見分光光度計BioSpec-nano購自島津企業(yè)管理(中國)有限公司;熒光定量96孔PCR儀,購自杭州博日科技有限公司。

1.3 引物 參照文獻[7-8]合成擴增B2L全長基因的特異性引物;參照GenBank中登錄的ORFV B2L全基因(登錄號:MK645803.1),運用Primer 7設計熒光特異性引物(表1)。兩對特異性引物均由生工生物工程有限公司合成。

表1 引物信息表

2 方法

2.1 羊口瘡病毒重組質(zhì)粒的構(gòu)建及測序鑒定以ORFV-SC毒株DNA為模板,PCR特異性擴增出B2L全長基因(1 137 bp)。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳鑒定,切下陽性條帶。根據(jù)凝膠回收試劑盒說明書回收目的DNA,后將目的片段與pMD19-T載體連接,構(gòu)建含B2L基因的重組質(zhì)粒,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化DH5-α感受態(tài)細胞,劃線培養(yǎng)于含氨芐的LB固體培養(yǎng)基上。37℃恒溫過夜,盲挑轉(zhuǎn)化生長的菌落進行培養(yǎng)。根據(jù)質(zhì)粒提取試劑盒說明書提取質(zhì)粒,并以其為模板進行常規(guī)PCR鑒定,然后將菌液送檢測序。測序結(jié)果經(jīng)DNAStar和BLAST比對,比對正確的作為陽性標準品。

2.2 羊口瘡病毒重組質(zhì)粒濃度和純度的測定及拷貝數(shù)的換算 利用島津紫外可見分光光度計測定質(zhì)粒DNA樣品液的質(zhì)量濃度,并換算為質(zhì)粒拷貝數(shù)。計算公式如下:拷貝數(shù)(copies/μL)=OD260×50×稀釋倍數(shù)×10-9×6.02×1023/(660×堿基數(shù))。

2.3 SYBR Green Ι 實時熒光定量PCR最佳引物濃度的篩選 20 μL體系:SYBR Premix Ex Taq ΙΙ(含SYBR Green Ι)10 μL,以重組陽性質(zhì)粒標準品為模板,取2 μL模板,10 μmol/L的上下游引物各0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0 μL(20 μL反應體系中所對應的終濃度分別為0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0 μmol/L),添加ddH2O補足20 μL體系。反應條件:95 ℃預變性2 min;然后95 ℃5 s,60 ℃45 s,共40個循環(huán),以篩選最佳引物濃度。

2.4 標準曲線的建立 分別以不同稀釋度拷貝數(shù)(2.13×102~2.13×108copies/μL)質(zhì)粒作為模板,用優(yōu)化好的反應條件和反應體系進行擴增,以拷貝數(shù)對數(shù)為橫坐標,以Ct值為縱坐標,推導出標準線性回歸方程(標準曲線)。

2.5 特異性和靈敏性試驗

2.5.1 特異性試驗 用建立好的方法對山羊痘病毒、綿羊痘病毒以及羊口瘡病毒的核酸進行檢測。

2.5.2 靈敏性試驗 對重組質(zhì)粒陽性標準品進行10倍系列(2.13×108~2.13×10-1copies/μL)稀釋,將稀釋的陽性質(zhì)粒標準品作為模板,分別進行實時熒光定量PCR和常規(guī)PCR檢測,比較兩者的靈敏性。

2.6 重復性試驗 用優(yōu)化好的反應條件分別對3個稀釋度(2.13×104~2.13×106copies/μL)的陽性標準樣品進行檢測,每個稀釋度同時進行3次重復檢測。上述陽性標準品于-80 ℃保存,間隔一周進行復檢,共檢3次,依據(jù)Ct值計算變異系數(shù)。

2.7 臨床樣品的檢測 從頻發(fā)羊口瘡的某山羊養(yǎng)殖場采集180份血清進行羊口瘡病毒檢測,用已建立的SYBR Grenn I實時熒光定量PCR和常規(guī)PCR分別進行檢測,比較陽性檢出率。

3 結(jié)果

3.1 ORFV B2L全長基因擴增及克隆鑒定結(jié)果 采用ORFV B2L特異性引物擴增出了約11 00 bp的PCR產(chǎn)物(圖1),與預期結(jié)果相符合。pMD19-T載體陽性克隆菌的測序結(jié)果經(jīng)DNAstar和BLAST比對,其目的基因已經(jīng)克隆到pMD19-T載體,表明成功構(gòu)建了含B2L基因的重組質(zhì)粒。

圖1 PCR擴增產(chǎn)物

3.2 重組質(zhì)粒陽性標準品濃度測定及拷貝數(shù)換算結(jié)果 經(jīng)測定,重組質(zhì)粒的質(zhì)量濃度為91.03 ng/μL,OD260/OD280為1.97。計算得出重組質(zhì)粒陽性標準品的拷貝數(shù)為2.13×1010copies/μL。

3.3 最佳引物濃度篩選結(jié)果 采用優(yōu)化好的循環(huán)條件,對引物終濃度0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7、0.8、0.9、1.0 μmol/L進行優(yōu)化,結(jié)果得出當引物濃度為0.5 μmol/L時能擴增出標準曲線,且有最小的Ct值和最大的熒光值。

3.4 標準曲線 分別以不同稀釋度拷貝數(shù)(2.13×102~2.13×108copies/μL)質(zhì)粒作為模板,用優(yōu)化好的反應條件和反應體系進行擴增,獲得擴增曲線(圖1),以拷貝數(shù)對數(shù)為橫坐標,以Ct值為縱坐標獲得標準曲線(圖2)。

3.5 特異性試驗 采用建立的ORFV SYBR Green I實時熒光定量PCR方法對山羊痘病毒(GPV)和綿羊痘病毒(SPV)核酸進行特異性檢測,結(jié)果均未擴增出,而山羊口瘡病毒具有良好的擴增曲線(圖4),表明所建立的方法特異性強。

3.6 敏感性試驗 由圖5可知,實時熒光定量PCR和常規(guī)PCR的最低檢測限分別為2.13×101、2.13×103copies/μL,表明ORFV SYBR Green I實時熒光定量PCR方法的靈敏度優(yōu)于常規(guī)PCR方法。

圖2 ORFV SYBR Green I實時熒光定量PCR擴增曲線

圖3 ORFV SYBR Green I實時熒光定量PCR標準曲線

圖4 SYBR Green I實時熒光定量PCR特異性試驗結(jié)果

圖5 敏感性試驗結(jié)果

3.7 重復性試驗 將重組質(zhì)粒進行10倍系列稀釋,選取2.13×104、2.13×105、2.13×106copies/μL 3個稀釋度進行實時熒光定量PCR擴增,計算得出批內(nèi)變異系數(shù)和批間變異系數(shù)分別為0.437%~1.061%、0.554%~1.104%(表1),批內(nèi)和批間變異系數(shù)均小于2.5%,表明該方法的重復性好。

3.8 臨床樣品檢測情況 檢測180份山羊血清,常規(guī)PCR的陽性檢出率為2.8%(5/180)(圖6),實時熒光定量PCR的陽性檢出率為4.4%(8/180)。常規(guī)PCR檢出的5份陽性樣品,采用實時熒光定量PCR也都能檢出。

表1 實時熒光定量PCR的Ct值

圖6 常規(guī)PCR檢測的ORFV臨床血液樣本

4 結(jié)論與分析

羊口瘡病毒編碼區(qū)中間部分為中心保守區(qū),兩端為末端變異區(qū),而B2L基因位于羊口瘡病毒第11個完整開放閱讀框,高度保守[9]。本試驗基于B2L基因合成一對特異性引物,用于構(gòu)建羊口瘡SYBR Green I實時熒光定量PCR法,結(jié)果表明該方法特異性強、重復性好,無引物二聚體和非特異性擴增。

本試驗所建立的實時熒光定量PCR法,在靈敏度檢測中的最低檢測限可達2.13×101copies/μL,相較于某些文獻報道的同一方法高出數(shù)倍。出現(xiàn)這樣的比對結(jié)果,是因為DNA的純度存在一定差異。本試驗建立的羊口瘡病毒B2L基因重組質(zhì)粒,經(jīng)測定所得純度高,而從組織病料和細胞中提取的病毒DNA存在細胞DNA和RNA的雙重污染,由于目的DNA的純度不高,使得所建立方法的靈敏度降低。

PCR的檢測結(jié)果常作為目標基因存在與否的重要依據(jù)。引物的特異性是PCR檢測是否準確的前提。但是在實際操作中往往發(fā)現(xiàn)PCR產(chǎn)物經(jīng)凝膠電泳,經(jīng)常出現(xiàn)無條帶、無目的條帶或多條帶的現(xiàn)象,此時很難分辨是否存在引物二聚體或者引物和DNA的錯配,而熒光定量PCR可以通過分析熔解曲線,從而確定是否存在引物設計不合理的情況。本研究建立的實時熒光定量PCR方法經(jīng)熔解曲線分析只出現(xiàn)單一特異性峰,證明設計的引物特異性好。

實時熒光定量PCR依據(jù)其自身的優(yōu)越性已廣泛應用于各個領域[10]。對于羊口瘡,建立快速的檢測方法可及時確定病原,從而為ORF的防控提供依據(jù)。本研究構(gòu)建的ORFV實時熒光定量PCR法,適用于羊口瘡的臨床檢測。■

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