黃宇晴,溫藝紅,張 銘,朱杰寧,楊 瑩,嚴鈺敏,易芷瑤,曾 妮,單志新,,,4△
(華南理工大學 1生物科學與工程學院,2醫學院,廣東廣州 510006;3廣東省臨床藥理學重點實驗室,廣東省人民醫院,廣東省醫學科學院,廣東廣州 510080;4南方醫科大學第二臨床醫學院,廣東廣州 510280)
心肌纖維化與多種心臟疾病有密切關系,隨著心肌纖維化程度加重,將導致心臟順應性下降、泵血功能降低、心功能不全甚至發生心衰。一般認為,當心臟應激或受到損傷時,心肌成纖維細胞激活并向肌成纖維細胞轉化,持續的肌成纖維細胞激活會導致細胞外膠原過度沉積和心肌纖維化。已知有多種因子,包括血管緊張素Ⅱ(angiotensin Ⅱ,Ang Ⅱ)、轉化生長因子β、醛固酮、結締組織生長因子、成纖維細胞生長因子(fibroblast growth factor,FGF)和白細胞介素等參與心肌纖維化的發生和發展過程[1-4]。
成纖維細胞生長因子廣泛參與細胞增殖、分化、遷移,胚胎發育,血管生成及損傷修復等生物學過程。目前發現哺乳動物FGF 家族包括22 個成員,即FGF1―FGF23,其中小鼠的FGF15與人的FGF19是同源蛋白,也被稱為FGF15/19。根據FGF 的作用方式不同,可將其分為旁分泌、內分泌和細胞內分泌3種。既往研究表明,FGF 家族中的FGF2、FGF16、FGF21及FGF23參與心肌纖維化的調控過程[5]。
FGF7 是一種旁分泌的FGF 家族成員,因其具有促進角質形成細胞有絲分裂的能力,所以也叫角質形成細胞生長因子。FGF7 由多種間充質細胞分泌,并通過FGFR2b 受體發揮其作用[6]。FGF7 與創傷愈合、胚胎發育、腫瘤形成與發展和免疫重建等關系密切[6-8],但FGF7 在心肌纖維化中的作用尚未見報道。我們既往mRNA 表達譜芯片的分析結果顯示FGF7在心衰病人心肌中表達下調。因此,本文利用小鼠心肌成纖維細胞(mouse cardiac fibroblasts,mCFs),進一步研究FGF7 對纖維化相關基因表達的調控作用及可能機制。
利用心衰患者和健康器官捐獻者的心肌組織進行mRNA 表達譜分析和FGF7表達的RT-qPCR 檢測。本研究經廣東省人民醫院倫理委員會批準[批準號No.GDREC2019238H(R1)],手術標本來自廣東省心血管病研究所。
SPF 級C57BL/6 乳小鼠,雌雄不限,1~3 d,購于廣州中醫藥大學實驗動物中心,許可證號為SCXK(粵)2013-0034。
DMEM/F12 細胞培養基、特級澳洲胎牛血清和0.25%EDTA-胰蛋白酶(Gibco);青-鏈霉素混合抗生素(Solarbio);轉染試劑Lipofectamine 2000,逆轉錄試劑盒(TaKaRa);FGF7 重組腺病毒(維真生物);超氧化物歧化酶2(superoxide dismutase 2,SOD2)siRNA(廣州銳博);RIPA 裂解液(碧云天);SDS-PAGE 凝膠配制試劑盒(碧云天);PI 細胞周期與凋亡試劑盒(Absin);抗GAPDH 抗體、Ⅲ型膠原蛋白α1 鏈(typeⅢcollagen α1,Col3a1)抗體(Protein Technology);抗Ⅰ型膠原蛋白α1 鏈(type Ⅰcollagen α1,Col1a1)抗體(Invitrogen);抗α 平滑肌肌動蛋白(α-smooth mus?cle actin,α-SMA)抗體(Abcam);抗FGF7 抗體(Sig?nalway Antibody);抗SOD2 抗體(Cell Signaling Tech?nology);BCA 蛋白定量試劑盒(Thermo);蛋白Marker(Fermentas);ECL 發光液(Millipore);PVDF 膜(What?man);血管緊張素Ⅱ(Sigma);其他生化試劑均為進口分裝或國產分析純。
4.1 心肌成纖維細胞的原代分離、培養及處理 按我們已報道的方法[9]進行小鼠心肌成纖維細胞的分離。用含0.25%胰酶和2×104U/L DNA 酶的無血清培養基消化出生1~3 d 的C57BL/6 小鼠心肌組織。將分離到的小鼠心肌成纖維細胞在含有10%胎牛血清、1%青霉素和1%鏈霉素的DMEM/F12 培養基中培養。當細胞豐度達到約90% 時,用0.25% 含EDTA 的胰酶消化傳代。將P2 代小鼠心肌成纖維細胞鋪于12孔板中進行細胞學實驗。
4.2 心肌成纖維細胞的處理 參考我們已報道的方法進行重組全長FGF7 腺病毒的制備[10-11]。將人FGF7 全長編碼DNA(585 bp)片段定向插入到pAdTrack-CMV 載體的多克隆位點,并進一步將pAdTrack-CMV-FGF7 與pAdEasy-1 在E.ColiBJ5183中進行重組。將重組FGF7 腺病毒載體用限制性內切酶PacI 線性化,轉染至293T 細胞中,包裝并擴增FGF7 重組腺病毒。用FGF7 重組腺病毒感染mCFs,以rAd-GFP(MOI 5)作為對照,感染后于37℃、5%CO2培養箱中培養24 h。參照Lipofectamine 2000 oli?go 試劑說明書進行轉染,用100 nmol/L 陰性對照(Scramble)、SOD2 siRNA 分別轉染至mCFs 中培養過夜,并在37℃、5% CO2培養箱中繼續培養24 h,收集細胞,進行后續測定。
4.3 mRNA 表達譜芯片檢測 分別將5例心衰患者心肌組織和5 例健康捐獻者心肌組織、過表達FGF7的小鼠心肌成纖維細胞及對照細胞進行mRNA 表達譜分析。mRNA 表達譜芯片雜交、結果分析由上海康成公司協助完成。簡要步驟如下:將富集后的總RNA 采用隨機引物轉錄、擴增成為熒光標記的cRNAs 探針。cRNAs 探針與Arraystar mRNA Array(8×15K)表達譜芯片上的寡核苷酸片段雜交后采用Agilent Scanner G2505C 掃描并用Agilent Feature Ex?traction Software 11.0.1.1分析雜交結果。
4.4 流式細胞術檢測細胞周期 接種合適密度的mCFs于6孔板中,穩定生長后分別用重組FGF7腺病毒及對照病毒感染細胞,24 h 后用胰酶消化,收集孔中細胞,PBS 清洗后加70%冷乙醇固定4 h,PBS 清洗后每個細胞樣品加入0.5 mL 配制好的PI 染色工作液,37℃避光孵育30 min后采用流式細胞術檢測。
4.5 RT-qPCR 用Trizol 法提取處理后的mCFs 中總RNA,取1 μg 總RNA,加入5×逆轉錄試劑4 μL(逆轉錄試劑盒),用Oligo(dT)15 和random primers逆轉錄出cDNA。以GAPDH 作為內參照,用相應的引物檢測FGF7、SOD2以及纖維化相關基因的mRNA表達水平。在ViiA 7 Quantitative PCR System(Ap?plied Biosystems)進行PCR 反應后,以2-ΔΔCt法計算FGF7、SOD2和纖維化相關基因的相對表達水平。所用引物由Invitrogen合成,具體序列見表1。
4.6 Western blot 實驗 處理后的mCFs 中加入RI?PA 蛋白裂解液,冰上裂解,收集裂解液于4℃、10 000×g離心15 min,取上清,進行蛋白質定量。加入4×上樣緩沖液,99℃加熱10 min 使蛋白質變性,然后進行SDS-PAGE。蛋白轉至PVDF 膜,5%脫脂奶粉溶液封閉1 h,分別用相應的抗體[Col1a1(1∶1 000)、Col3a1(1∶1 000)、α-SMA(1∶2 000)、FGF7(1∶1 000)、p-Akt(1∶1 500)、Akt(1∶1 500)、p-AMPK(1∶2 000)、AMPK(1∶2 000)和SOD2(1∶1 000)]4℃孵育過夜。TBST 洗膜后,加入Ⅱ抗(1∶5 000)室溫孵育1 h。ECL 發光試劑盒顯影,以GAPDH(1∶5 000)為內參照,ImageJ 軟件進行灰度值分析并計算蛋白表達相對含量。

表1 RT-qPCR引物序列Table 1.The sequences of the primers for RT-qPCR
用GraphPad Prism 8.0 軟件進行統計分析。計量資料以均數±標準差(mean±SD)表示,兩組間比較采用t檢驗;多組間比較采用單因素方差分析(oneway ANOVA),并用Bonferroni 校正的t檢驗進行組間兩兩比較。以P<0.05為差異有統計學意義。
mRNA 表達譜芯片結果顯示,心衰患者心肌組織中基因表達譜發生顯著改變,與健康對照組相比,分別有178 和319 個基因發生2 倍以上的上調和下調表達,其中FGF7 表達呈降低趨勢,見圖1A。RTqPCR 檢測結果證實FGF7 在心衰患者心肌中的表達顯著降低(P<0.01),與芯片檢測結果一致,見圖1B。Western blot結果顯示,與對照組相比,心衰患者心肌組織中FGF7表達下調(P<0.05),見圖1C。在AngⅡ誘導的mCFs 中FGF7 mRNA 和蛋白表達均一致降低(P<0.05),見圖1D、E。

Figure 1.Expression of FGF7 in the myocardium of heart failure(HF)patients and in Ang Ⅱ-induced mCFs.The heat map figure(A)showed the representative dysregulated mRNAs in the myocardium of HF patients by mRNA array.Red and green pots separately present the up-regulated and down-regulated mRNAs.FGF7 expression in the myocardium tissue of HF patients by RT-qPCR(B)and Western blot assay(C).The expression of FGF7 in Ang Ⅱ-treated mCFs by RT-qPCR(D)and Western blot(E).Mean±SD. n=3.#P<0.05,##P<0.01 vs healthy controls;*P<0.05,**P<0.01 vs vehicle group.圖1 心衰患者心肌和Ang Ⅱ誘導的mCFs中FGF7表達的鑒定
流式細胞術檢測結果顯示,與對照組相比,腺病毒介導過表達FGF7的mCFs的細胞周期差異無統計學顯著性,見圖2A。利用重組FGF7 腺病毒感染mCFs,RT-qPCR 和Western blot 結果顯示,過表達FGF7 可顯著降低mCFs 中纖維化相關基因Col1a1、Col3a1和Acta2的表達,見圖2B、C。
mRNA 表達譜芯片結果顯示,過表達FGF7 可引起mCFs 中1 064 和758 個基因發生2 倍以上的上調和下調表達。RT-qPCR 鑒定結果顯示,TGFBR3、SOD2、A20等基因在過表達FGF7 的mCFs 中顯著上調,其中SOD2 的表達升高最顯著,見圖3A。Western blot 結果顯示,在心衰患者心肌和AngⅡ誘導的mCFs 中,纖維化相關基因Col1a1、Col3a1和Ac?ta2的表達顯著增加,而SOD2 在心衰患者心肌組織中表達升高,但在Ang Ⅱ誘導的mCFs 中表達降低,見圖3B、C。過表達FGF7 的mCFs 較對照細胞中的SOD2 表達顯著升高,同時發現磷酸化AMPK 水平明顯升高,而磷酸化Akt水平變化不明顯,見圖3D。

Figure 2.Over-expression of FGF7(OE-FGF7)inhibited fibrosis-related gene expression in mCFs.A:cell cycle distribution in mCFs with over-expression of FGF7 detected by flow cytometry;B and C:the mRNA and protein expression of Col1a1,Col3a1,Acta2/α-SMA and FGF7 in mCFs with over-expression of FGF7 detected by RT-qPCR and Western blot,respec?tively.Mean±SD. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs vector group.圖2 過表達FGF7抑制mCFs中纖維化相關基因的表達
為明確SOD2 表達和AMPK 激活在FGF7 抑制心肌纖維化相關基因表達中的作用,分別利用SOD2 siRNA 和AMPK 抑制compound C 來干預mCFs 中SOD2 的表達和AMPK 的活性。Western blot 結果顯示,沉默SOD2表達可顯著增加mCFs 中Col1a1 和Acta2 的表達,并顯著逆轉FGF7 對Col1a1、Col3a1 和Acta2 表達的抑制作用,見圖4A。Compound C 處理mCFs,可顯著抑制AMPK 的激活,降低SOD2 的表達并逆轉FGF7 對Col1a1、Col3a1 和Acta2 表達的抑制作用,見圖4B。
研究表明FGF 參與調控心肌纖維化過程,其中FGF16[12-13]和FGF21[14]抑制心肌纖維化,而FGF23 有促進心肌纖維化的作用[15-17]。有的研究認為FGF2可通過結合FGFR1c 激活MAPK 信號通路促進心肌肥厚和纖維化[5],但也有研究與此相反,認為FGF2具有抑制纖維化的作用[18]。FGF7與創傷愈合、胚胎發育、腫瘤形成與發展、免疫重建等過程密切關系[6-8],但FGF7 在心肌纖維化中的作用尚不明確。我們證實FGF7 在心衰病人心肌和Ang Ⅱ誘導的mCFs 中表達降低,過表達FGF7不影響mCFs的細胞周期,但可顯著抑制mCFs中Col1a1、Col3a1和Acta2等纖維化相關基因表達,表明FGF7具有抑制心肌纖維化的作用。

Figure 3.Over-expression of FGF7(OE-FGF7)enhanced SOD2 expression and AMPK activation in the mCFs.A:the scatter plot showing the representative dysregulated mRNAs in the mCFs with over-expression of FGF7,and identification of the repre?sentative up-regulated genes by RT-qPCR;B and C:the protein expression of SOD2 and fibrosis-related genes in the myo?cardium of HF patients and Ang Ⅱ-treated mCFs detected by Western blot;D:SOD2 and FGF7 expression,and Akt and AMPK activation in the mCFs with over-expression of FGF7 detected by Western blot.Mean±SD. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs vector group;#P<0.05,##P<0.01 vs healthy controls;△P<0.05,△△P<0.01 vs vehicle group.圖3 過表達FGF7促進mCFs中SOD2的表達和AMPK的激活

Figure 4. SOD2 knockdown(A)and AMPK inactivation(B)increased the expression of Col1a1,Col3a1 and α-SMA in FGF7-modi?fied mCFs.Mean±SD. n=3.*P<0.05,**P<0.01 vs vector+scramble group;#P<0.05,##P<0.01 vs vector+scramble group;%P<0.05,%%P<0.01 vs OE-FGF7+scramble group;&P<0.05,&&P<0.01 vs vector group;△P<0.05,△△P<0.01 vs OE-FGF7 group.圖4 抑制SOD2表達和AMPK活性可逆轉FGF7抑制心肌纖維化相關基因表達的作用
氧化應激與心肌纖維化的發生發展關系密切,體內氧化與抗氧化的失衡會導致過量自由基產生,引起DNA 損傷、蛋白質及脂質氧化。線粒體表達的SOD2(即MnSOD)是維持正常心臟功能所必需的抗氧化酶,可以催化超氧陰離子自由基歧化生成氧和過氧化氫,在機體氧化與抗氧化平衡中起到至關重要的作用[19]。研究表明SOD2 可抵抗衰老小鼠心臟中的氧化應激,抑制纖維化和心肌細胞凋亡[20]。與野生型小鼠相比,SOD2 雜合子小鼠心臟功能下降,心肌肥厚和纖維化程度增加,對阿霉素誘導心肌損傷的易感性增加[21]。而心肌特異性敲除SOD2的小鼠由于線粒體大量產生ROS 從而發生擴張性心肌病[22]。我們證實FGF7 可特異性上調mCFs 中SOD2的表達,而沉默SOD2可以逆轉FGF7 抑制纖維化相關基因表達的作用,提示SOD2 參與了FGF7 抑制心肌纖維化的過程。本文中,Ang Ⅱ處理的mCFs 中SOD2 表達降低,與以往在Ang Ⅱ誘導的心肌細胞中SOD2 表達降低一致[23]。SOD2 在糖尿病性小鼠心肌中表達降低[24],而我們發現在心衰病人心肌中SOD2稍有增加,可能是一種代償性調控作用的結果,而心衰病人心肌中SOD2的生物學活性程度尚不清楚。
AMPK 作為一種關鍵的能量傳感器,除了維持能量穩態外,還具有抑制纖維化的作用[25]。血管緊張素Ⅱ受體拮抗劑LCZ696 可通過激活SIRT3/SOD2通路,改善氧化應激和壓力超負荷所致的病理性心臟重構,并可能以AMPK 依賴的方式發揮抑制心肌肥厚的作用[26]。本文結果顯示,過表達FGF7不影響mCFs 中Akt的活性,但可特異性激活AMPK 信號,用compound C 抑制AMPK 的活性后,mCFs 中SOD2 的表達降低,并可阻斷FGF7 抑制mCFs 中纖維化相關基因表達的作用。
綜上所述,本文證實了FGF7 在心衰患者心肌和Ang Ⅱ誘導的心肌纖維化細胞模型中表達降低,FGF7 通過激活AMPK 信號上調SOD2 表達來發揮抑制mCFs 中纖維化相關基因表達的作用。在后續研究中,我們將在整體動物和細胞水平研究心肌纖維化時FGF7 表達降低及其發揮抑制心肌纖維化作用的分子機制,為以FGF7為靶點的心肌纖維化治療研究提供科學依據。