徐洪雨, 甄莉麗, 李鈺瑩, 董寬虎, 李向林
(1. 山西農業大學草業學院, 山西 太谷 030801;2. 對外經濟貿易大學外語學院, 北京 100029;3. 中國農業科學院北京畜牧獸醫研究所, 北京100193)
紫花苜蓿(MedicagosativaL.,以下簡稱苜蓿)是一種蛋白含量豐富的優質飼草,其在我國的種植面積不斷擴大,且主要集中在內蒙古、甘肅和新疆等北方地區[1]。我國北方冬季寒冷少雪,因此苜蓿越冬失敗、不能正常返青時有發生,給生產上造成了嚴重的經濟損失。在管理措施中,有研究表明澆灌越冬水可提高苜蓿的越冬能力[2]。秋冬季節,氣溫和地面溫度不斷下降,并一直向地下傳遞。當氣溫下降至凍結溫度后,地下土壤剖面就會形成深度逐漸增加的凍土層。在形成的凍土層中,上層土壤剖面(約20~40 cm)的溫度與地面溫度具有很好的相關性,但因溫度波向地下傳遞需要一定的時間,上層土壤剖面的溫度與地面溫度相比仍存在很大的滯后性[3]。另外,土壤凍結后,土壤孔隙被冰完全充填,凍土層可阻隔大氣與土壤空氣的熱交換[3]。因此,在苜蓿整個越冬過程中,土壤凍土層能夠緩解低溫和溫度劇烈變化對根頸和根系的傷害[4-5]。但北方地區(如內蒙古阿魯科爾沁旗和甘肅等地)多為沙性土,沙性土保水能力差,澆灌越冬水時水分快速下滲,加上蒸發和空氣循環等因素導致表層土壤水分丟失嚴重,使越冬期間表土層內水分含量低,難以形成凍土層。此種情況下,越冬水并不能對苜蓿根頸和根系起到很好的保護作用。2019年2月,對中國農業科學院國際農業高新技術產業園(河北,廊坊)內‘WL440HQ’苜蓿的越冬情況調查時發現,當月平均氣溫-6℃,0~10 cm表土層范圍內的土壤(沙質土)含水量僅約田間持水量的20%~30%,土壤松散,苜蓿根頸失水嚴重,存在萎縮現象(圖1-A),經多樣點測定,根頸組織細胞液相對滲透率達到81.7%~89.6%。2019年4月,再次對產業園內的苜蓿進行調查,當月平均氣溫已達8℃,苜蓿返青率不足10%,原2月份調查時失水萎縮的根頸絕大部分已發生霉變(圖1-B)。冬季寒冷和土壤干旱共同組成低溫干旱環境,此種不利的環境條件可能是導致苜蓿無法順利越冬的原因之一。

圖1 紫花苜蓿越冬期間根頸萎蔫及返青期根頸霉變的情況
在低溫脅迫下,植物細胞膜發生龜裂,透性增大,當細胞液相對滲透率達到50%時所對應的溫度稱為低溫半致死溫度(LT50),常用來衡量植物的耐寒性[6-8]。根頸靠近地表,是苜蓿返青時新枝條的生長點,因此根頸也被認為是苜蓿最重要的越冬組織[9],常用根頸的LT50來衡量苜蓿的耐寒性。有研究認為,脯氨酸不僅可防止細胞膜脫水,而且具有穩定蛋白質的作用,是影響苜??购缘闹饕被醄10]。在低溫脅迫初期,苜蓿通過冷適應積累物質以提高自身的抗寒能力,其中可溶性糖是對低溫條件反應較為敏感的物質[11]??扇苄蕴遣粌H具有滲透調節的作用,還具有冷凍保護的作用[12-13]。此外,苜蓿的耐寒性還與冷適應期間低溫誘導可溶性蛋白的積累有關,如脫水蛋白和營養貯藏蛋白[14]??扇苄缘鞍卓膳c細胞成分形成氫鍵從而結合水分,發揮冷凍保護劑的作用[10,15]。有研究表明,K-3脫水蛋白的轉錄水平在冷適應過程中顯著提高,并且在苜蓿抗寒性的輪回選擇性育種中,該基因在苜蓿群體中正等位基因的頻率也會增加[14]。低溫導致細胞脫水時,K3脫水蛋白在維持細胞膜的完整性中發揮著重要作用[16-17],與苜蓿的耐寒性息息相關[18]。
為研究冬季冷凍期土壤干旱對苜蓿越冬的影響,本研究在實驗室內通過培養箱控溫和更換表土試驗,模擬苜蓿越冬過程中的低溫干旱環境,借助根頸組織細胞膜透性、低溫半致死溫度、細胞活力和丙二醛等指標,分析低溫干旱環境對不同秋眠級苜蓿根頸耐寒性的影響,并通過根頸組織含水量、脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白等脅迫抗逆標志物含量,分析低溫干旱環境對苜蓿耐寒性影響的原因。本研究結果將為研究如何通過管理措施提高苜蓿越冬能力提供參考。
本試驗選擇的苜蓿品種為‘WL440HQ’(秋眠級6.0,WL)和‘肇東’(秋眠級2.0,ZD),ZD種子購買于甘肅大業牧草科技有限責任公司,WL苜蓿種子購買于北京正道生態科技有限公司。試驗共涉及3個處理階段,2種水分處理,4次生物學重復。
試驗所用的苜蓿苗在中國農業科學院國際農業高新技術產業園區進行培育,園區位于河北省廊坊市萬莊鎮,占地約1 330 ha,全年光照充足,年平均氣溫11.9℃,年平均降水量為554.9 mm,土壤為沙質土,田間持水量為0.203 3 g·g-1(水/干土)。2018年5月育苗,2019年5月在培育好的材料中選取根系大小相近的2個品種苜蓿苗,而后移栽到預先準備好的PVC管(直徑10 cm,高度15 cm)內,管內填充育苗田里的沙質土壤。將移栽好的苜蓿苗帶回培養室內進行為期1個月的恢復生長,PVC管內的土壤含水量通過稱重法維持在田間持水量的75%。進行恢復生長期間,培養室內的其它條件設置為:溫度(24±2)/(20±2)℃(晝/夜),光照時長12 h,光照強度600~800 μmol·m-2·s-1。
本研究的試驗處理過程如圖2所示,具體處理細節如下所述:
(1)適應性生長。苜蓿苗在培養室恢復生長1個月后,將苗轉移到低溫光照培養箱(LRH-200-GD,THK Ltd.,廣東)內進行適應性生長1周。培養箱內的條件控制:24/20℃(晝/夜)、光照12 h和光照強度400 μmol·m-2·s-1。
(2)冷適應處理(階段1)。適應性生長1周結束后,降低培養箱溫度對苜蓿苗進行冷適應處理。將培養箱溫度設置從24/20℃(晝/夜)降低到4/0℃(晝/夜),光照條件不變,冷適應處理1周。此處理階段不涉及控水處理,土壤含水量保持75%田間持水量。冷適應處理結束后,剪掉所有苜蓿地上部,烘干稱重測定含水量和地上部干重。每個品種隨機選取4管(Sampling 1,S1),剪掉地上部,烘干稱重測定含水量及干重;將地下部洗凈吸干,稱取濕重,然后將根頸和根系分開,根系烘干并計算地下部含水量,根據含水量及地下部總鮮重,計算地下部總干重;根頸部位用于測定冷適應處理后苜蓿根頸的細胞液相對滲透率、LT50和細胞活力的大小以及丙二醛、脯氨酸、總可溶性糖和總可溶性蛋白的含量。此階段2個品種的試驗處理樣品分別標記為WL-1-B和ZD-1-B。
(3)剪掉地上部和更換表層土壤。在冷凍處理之前,剪掉地上部,模擬苜蓿越冬期地上部枯黃。將階段1取樣后每個品種剩余的樣品分別隨機分成2份,其中1份用烘干的陶粒(直徑1 mm)替換表層5 cm范圍內的表土,模擬越冬期土壤干旱條件,另外1份保持原土壤及75%田間持水量的含水量不變。
(4)冷凍處理(階段2和階段3)。剪掉地上部和更換表層土壤后,關閉培養箱光照(地上部已剪掉,光合作用停止),將培養箱溫度設置從4/0℃(晝/夜)降低到-2℃(夜),對苜蓿進行冷凍處理,以模擬北方苜蓿越冬。在冷凍處理5天后(Sampling 2,S2)和7天后(Sampling 3,S3)分別取樣一次,地下部樣品的處理參考冷適應階段取樣。在階段2和階段3處理后,未更換表層土壤的2個苜蓿品種樣品冷凍處理后分別標記為WL-2-B,WL-3-B,ZD-2-B和ZD-3-B,而更換表層土壤的2個苜蓿品種樣品冷凍處理后分別標記為WL-2-K,WL-3-K,ZD-2-K和ZD-3-K。

圖2 試驗過程示意圖
(1)細胞液相對滲透率和LT50的測定
本研究采用細胞液相對滲透率和LT50作為判斷各處理間根頸耐寒性的主要依據。受低溫脅迫,細胞膜受到破壞,細胞液滲透增加,通過組織細胞電導率計算細胞液相對滲透率。具體計算公式如下:
相對滲透率(%)=(EL1-EL)/(EL2-EL)×100
(1)
式(1)中EL1為試驗處理后根頸樣品的電導率;EL2為經高壓滅菌鍋蒸煮后根頸樣品的電導率,代表細胞完全破裂、細胞液完全滲出式樣品的電導率;EL為浸泡根頸樣品所用蒸餾水的電導率。
LT50的測定原理是對樣品進行不同溫度的冷凍,并測定每一冷凍溫度下的細胞液相對滲透率,再根據Logistic方程計算出細胞液相對滲透率為50%所對應溫度即為LT50。試驗處理后,苜蓿根頸組織LT50的測定及計算方法參考徐洪雨[19-20]的方法。本研究測定根頸組織LT50時,對樣品進行冷凍的溫度設置9個梯度,分別為-2℃,-4℃,-6℃,-8℃,-10℃,-12℃,-14℃,-16℃和-18℃。
(2)細胞活力的測定
根頸細胞活力的測定參考王學奎[21]測定植物根系細胞活性的方法。
(3)丙二醛、脯氨酸、總可溶性糖和總可溶性蛋白的測定
參考Catola[22]和Nemat[23]的方法提取樣品,參考Draper[24],Troll[25],Yemm[26]和Sedmak[27]的方法分別對丙二醛、脯氨酸、總可溶性糖和總可溶性蛋白的含量進行測定。
采用最小顯著差數法(LSD),對試驗各階段間指標變化的差異顯著性以及同一階段處理間比較的差異顯著性進行分析,差異顯著標準為P<0.05。
根據根頸組織的LT50、細胞液相對滲透率、細胞活力、含水量、干物質量以及丙二醛、脯氨酸、總可溶性糖和總可溶性蛋白的含量,采用隸屬函數法對2個品種苜蓿在整個試驗期間的表現進行綜合評價。
2.1.1細胞液相對滲透率和低溫半致死溫度大小 圖3-A為試驗期間苜蓿根頸細胞液相對滲透率的變化情況,其大小可表征細胞膜的透性。除WL-K外,WL-B,ZD-B和ZD-K樣本的根頸在試驗期間細胞液相對滲透率無顯著性變化。經過階段2的冷凍,WL-K樣本的根頸細胞液相對滲透率明顯提高,其值達到62.26%;經過階段3的冷凍,其值達到66.99%。據此判斷,低溫干旱環境對WL苜蓿根頸的影響極其顯著,導致細胞液相對滲透率超過50%,即意味著細胞死亡,但此環境對ZD苜蓿根頸的影響并不顯著。

圖3 試驗期間根頸細胞膜透性和低溫半致死溫度
圖3-B為試驗期間WL-B,ZD-B和ZD-K樣本根頸的LT50的變化。經過階段2的冷凍,ZD-B和ZD-K中根頸的LT50均有明顯降低。經過階段3的冷凍后,ZD-K和ZD-B中根頸的LT50顯著低于WL-B中根頸的(P<0.05),但在ZD-K和ZD-B樣本間根頸LT50的大小并無顯著性差異。對于WL苜蓿而言,冷凍處理已使WL-K中的根頸致死,其LT50大小遠遠高于WL-B中根頸的LT50大小。綜上,本研究中更換表土后的土壤干旱嚴重影響了WL苜蓿在零下低溫環境中的耐寒性,但對ZD苜蓿并無顯著性影響。
2.1.2細胞活力大小 圖4為試驗期間苜蓿根頸細胞活力的變化情況。冷適應結束后,ZD-B中根頸的細胞活力顯著高于WL-B中根頸的(P<0.05)。而經過階段2和階段3的冷凍,4個樣本中根頸的細胞活力均有所下降。在取樣點S2和S3,根頸細胞活力的大小在樣本間的比較為:ZD-B>ZD-K>WL-B> WL-K(P<0.05)。由此可見,經過冷適應和冷凍處理后,ZD苜蓿根頸的細胞活力大于WL苜蓿的,不控水處理的根頸細胞活力大于控水處理的。

圖4 試驗期間苜蓿根頸細胞活力
2.1.3丙二醛含量 圖5為試驗期間苜蓿根頸細胞內丙二醛的含量變化。由圖可知,經過冷適應處理后,WL-B根頸中的丙二醛含量顯著高于ZD-B根頸中的(P<0.05)。經過冷凍后,4個樣本根頸中的丙二醛含量均有所增加,其中WL-K根頸中的丙二醛含量在階段2增加最明顯。經過冷凍后,在取樣點S2和S3,WL-B和WL-K根頸中的丙二醛含量仍高于ZD-B和ZD-K根頸中的;WL-K根頸中的丙二醛含量顯著高于WL-B根頸中的(P<0.05);對于ZD苜蓿,根頸中的丙二醛含量在ZD-B和ZD-K樣本間并無顯著性差異。根據試驗樣本根頸內的丙二醛含量變化判斷,低溫干旱環境對WL苜蓿的影響較大,而對ZD苜蓿影響不明顯。

圖5 試驗期間苜蓿根頸丙二醛含量
2.2.1地上部和地下部干物質量 圖6為試驗期間苜蓿單株的地上部和地下部干物質量,目的是為評估試驗期間苜蓿生長可能對根頸耐寒性的影響。在本研究中,冷適應處理結束后剪掉所有苜蓿的地上部并測定其干物質量,WL-B和ZD-B樣本地上部干物質量分別為0.51 g·株-1和0.57 g·株-1,且平均單株地上部干物質量在2個樣本間并無顯著性差異(圖6-A)。從圖6-B中還可看出,4個樣本中苜蓿地下部干物質量在同一取樣點均無顯著性差異。

圖6 試驗期間苜蓿單株地上部和地下部干物質量
2.2.2組織含水量 冷凍試驗結束后,WL-K中的根頸出現萎縮,而其它3個處理中的根頸無萎縮表現。圖7為試驗期間地上部和地下部組織(根頸和根系)含水量的變化情況。由圖7-A可知,冷適應結束后,WL地上部的含水量為74.38%,ZD苜蓿的為71.25%,2個品種苜蓿地上部組織含水量與土壤含水量相近。由圖7-B可知,在更換表層土壤進行凍干處理之前,2個品種苜蓿地下部含水量基本保持在75%左右;經過階段2冷凍處理后,WL-B和ZD-B中地下部組織含水量無明顯變化,而WL-K和ZD-K中的均顯著降低。在階段2和階段3期間,WL-K中根系的失水速率分別為3.48 %·d-1和5.0 %·d-1,2個階段的平均失水速率為3.91 %·d-1;而ZD-K中根系失水速率分別為1.52 %·d-1和2.5 %·d-1,2個階段的平均失水速率為1.80 %·d-1。因此,WL-K中根系失水速率較ZD-K中的快。

圖7 試驗期間苜蓿地上部和地下部的含水量
2.2.3脯氨酸、總可溶性糖和總可溶性蛋白的含量 圖8為試驗期間根頸細胞內脯氨酸、總可溶性糖和可溶性蛋白含量的變化情況。與S1處樣本根頸內的脯氨酸含量相比,經過階段2和3的冷凍,4個樣本根頸中的脯氨酸含量均明顯下降。在取樣點S2和S3處,ZD-B和ZD-K根頸中的脯氨酸含量顯著高于WL-B和WL-K樣本根頸中的(P<0.05)。在S2點,對于WL苜蓿來說,WL-K樣本根頸中的脯氨酸含量顯著高于WL-B樣本根頸中的(P<0.05);但對于ZD苜蓿來說,根頸內的脯氨酸含量在ZD-B和ZD-K樣本間卻無顯著性差異(圖8-A)。在S3點,對于同一品種苜蓿,根頸內的脯氨酸含量在控水與不控水處理下的樣本間(WL-K和WL-B;ZD-K和ZD-B)均無顯著性差異(圖8-A)。從可溶性糖的含量來看(圖8-B),在同一取樣點,ZD-B樣本根頸中的可溶性糖含量顯著高于WL-B樣本根頸中的(P<0.05),ZD-K中的顯著高于WL-K中的(P<0.05)。對于ZD苜蓿而言,根頸中的可溶性糖含量在ZD-B和ZD-K樣本間無顯著性差異;而對于WL苜蓿,WL-B樣本根頸中的可溶性糖含量顯著高于WL-K樣本根頸中的(P<0.05)(圖8-B)。對于根頸細胞內的可溶性蛋白含量,在S2點處,ZD-B中的顯著高于WL-B中的(P<0.05);在S3點處,ZD-B中的顯著高于WL-B中的(P<0.05),ZD-K中的的顯著高于WL-K中的(P<0.05)。對于同一品種苜蓿,根頸中可溶性蛋白含量在ZD-B和ZD-K樣本間無顯著性差異,在WL-B和WL-K樣本間也無顯著性差異(圖8-C)。

圖8 試驗期間苜蓿根頸組織中脯氨酸、總可溶性糖和總可溶性蛋白含量
采用隸屬函數法對2個品種苜蓿在整個試驗期間的表現進行綜合評價,評價結果見表1。根據多指標的綜合評價,結果顯示,排名前5位的全部為ZD苜蓿,而排名后5位的全部為WL苜蓿。在整個低溫干旱試驗中,ZD苜蓿的表現完全優于WL苜蓿,這與單純根據LT50和細胞液相對滲透率等指標所比較的結果相一致。
本試驗結果表明,WL苜蓿受低溫干旱環境的影響遠大于ZD苜蓿,試驗中更換表土使土壤干旱的處理嚴重影響了WL苜蓿應對低溫冷凍的能力,本研究結果與過去的研究結果保持一致。針對冬季土壤干旱可能對苜蓿越冬造成不良的影響,生產者常通過澆灌越冬水來提高苜蓿的抗寒越冬能力[2],其原因是土壤凍土層能夠緩解溫度劇烈變化對根頸和根系的傷害[4-5]。土壤剖面的溫度滯后于空氣的溫度,且土壤凍結后孔隙被冰完全填充,凍土層阻隔了大氣與土壤空氣的熱交換[3]。但即使秋末冬初已澆灌越冬水,因某些因素的影響(如澆灌越冬水的時節過早、灌水時土壤(沙質土)滲水過快或土壤蒸發,等等),導致越冬期間地表含水量過低,不能形成凍土層,從而影響苜蓿根頸應對低溫冷凍的能力。因此,根據本研究結果,建議越冬期間對地表土壤水分狀況進行監測,適時補充土壤水分可提高苜蓿的越冬能力。這與Wu等對冬季高土壤含水量利于苜蓿越冬的研究結論一致[28]。

表1 隸屬函數法對2個品種苜蓿的綜合評價
研究表明,植物受到干旱或者低溫脅迫時,都會導致細胞內活性氧的增加[11,29]。細胞膜系統在受到氧化傷害后產生丙二醛,其含量可表征細胞膜脂過氧化的程度,也常用來表征細胞膜受破壞的程度[30]。在本研究中,經過低溫冷凍處理后,WL根頸中的丙二醛含量明顯高于ZD苜蓿中的。此外,對于WL苜蓿而言,低溫干旱環境下根頸中的丙二醛含量顯著高于低溫環境下的,對于ZD苜蓿而言,低溫干旱環境下根頸細胞內的丙二醛含量與低溫環境下的無顯著性差異。本研究中樣本根頸細胞內丙二醛含量的對比結果與耐寒性的對比結果相一致,且符合丙二醛可表征細胞膜受破壞程度的理論。因此,本研究中丙二醛含量的對比結果可佐證耐寒性的對比結果。
在本研究中,調查了試驗期間苜蓿地上部和地下部干物質量的變化。冷適應結束后,地上部干物質量在2個苜蓿品種間并無顯著性差異。冷凍處理前,剪掉所有樣本的地上部,以模擬越冬期間苜蓿地上部枯黃。結果顯示,同一取樣點地下部干物質量在各樣本間也沒有顯著性差異,可能是由于試驗前所選的苜蓿樣本根系大小相近且冷凍處理期間地上部被剪掉后無新的物質積累。根據各樣本間地上部和地下部干物質量的差異性分析,推斷本研究中各樣本間根頸耐寒性的差異以及WL苜蓿根頸在經過低溫干旱環境處理后死亡的原因,并不是因試驗期間苜蓿的生長而造成的。從本研究中苜蓿根頸含水量的變化來看,WL-B和ZD-B根頸含水量在試驗期間未發生顯著性變化,而WL-K和ZD-K根頸含水量在試驗期間均存在顯著性降低,只是WL-K根頸的失水速率遠大于ZD-K根頸的。據此結果推斷,低溫干旱環境下水分散失過快致使根頸組織細胞含水量低,可能是導致WL-K根頸在低溫冷凍期間細胞膜受到不可恢復的破壞的原因之一。
水分散失過快可能是導致低溫干旱環境下苜蓿根頸細胞死亡的原因,需進一步分析是什么因素影響了苜蓿根頸細胞的水分散失速率。脯氨酸是植物體內重要的滲透調節物質[31-32],但有時植物抗寒性的增強要早于脯氨酸的積累,故無法確定它在改變植物耐寒性上的作用[33],然而也有研究通過轉基因手段證明了脯氨酸的積累在植物應對非生物脅迫上的積極作用,如轉入P5CS基因的矮牽牛其脯氨酸的積累量較野生種提高1.5~2.6倍,耐旱性也明顯增強[34]。在本研究中,脯氨酸含量在品種間存在顯著性差異,ZD苜蓿根頸中的脯氨酸含量高于WL苜蓿根頸中的。對于同一品種苜蓿而言,在S2點處WL-K根頸含有比WL-B根頸較高的脯氨酸含量,在S3點處WL-K根頸含有與WL-B根頸相近的脯氨酸含量,但這并未能阻止在冷凍環境下WL-K根頸較快的失水速率以及較大的細胞液相對滲透率。此外,經過階段2和3的低溫冷凍,2個品種苜蓿根頸內的脯氨酸含量均有明顯降低,這與過去的研究結果相近。在對金銀花進行干旱、低溫和水淹脅迫處理時,曾發現隨著脅迫時間的延長,脯氨酸含量有降低的趨勢,可能是由于隨著脅迫時間的延長,碳水化合物供應不足或酶活性降低等原因造成的[35]。在對2種暖季型草坪草進行持續的干旱脅迫,結果發現隨著脅迫時間的延長,脯氨酸含量呈先升高后降低的現象,可能是由于脅迫時間的延長,根系活力下降造成的[36]。同時,研究還認為不能簡單將某一時間點的脯氨酸含量作為衡量植物抗性的標準,可能會造成假結論的產生[36]。
此外,以往的研究表明,苜蓿在冷適應過程中會積累可溶性蛋白,并且學者們也肯定了可溶性蛋白在抗寒越冬過程中的重要作用[10,15]。但在本研究中,可溶性蛋白在WL-B和WL-K 2個樣本間并無顯著的差異性,可溶性蛋白未能阻止WL-K樣本根頸細胞的破裂??扇苄蕴且彩擒俎sw內重要的滲透調節劑,還具有冷凍保護劑的作用,可影響苜蓿的耐寒性,如棉子糖和水蘇糖等[10,37-38]。在本研究中,ZD苜蓿根頸內可溶性糖的含量顯著高于WL苜蓿根頸內的。同時,對于ZD苜蓿而言,經過低溫干旱環境和低溫環境處理后,苜蓿根頸內的可溶性糖含量在2個樣本間無顯著差異;對于WL而言,低溫干旱環境處理后苜蓿根頸中的可溶性糖含量顯著高于低溫環境處理后苜蓿根頸中的,此結果與本研究中根頸耐寒性的比較結果相一致。據此推斷,在低溫干旱環境下根頸中的可溶性糖含量較低,可能是導致WL苜蓿根頸水分散失過快以及細胞受到嚴重損傷的原因之一。根據幾種物質的含量在品種間及樣本間的差異性判斷,脯氨酸和可溶性蛋白的含量可能與ZD苜蓿應對冷凍環境時更優異的表現有關,而可溶性糖的含量低是低溫干旱處理境下WL苜蓿根頸細胞滲透性變高乃至死亡的原因。
在模擬的低溫干旱環境下,秋眠級較高的‘WL440HQ’苜蓿根頸失水速率較快,處理后細胞液相對滲透率超過60%,導致細胞受到無法修復的損傷,土壤干旱嚴重影響了‘WL440HQ’苜蓿抵抗冷凍的能力。而對于秋眠級較低的‘肇東’苜蓿,低溫干旱環境條件下其根頸失水速率較‘WL440HQ’苜蓿慢,土壤干旱未對冷凍期‘肇東’苜蓿根頸的耐寒性產生顯著性影響。從根頸細胞內物質的含量來看,脯氨酸和可溶性蛋白含量可能與‘肇東’苜蓿應對低溫環境時更優異的表現有關,而可溶性糖含量低才是與“低溫干旱”環境下‘WL440HQ’苜蓿根頸失水速率快乃至耐寒性受到嚴重影響的原因。