駱啟豪 王衛軍 倪樂海 景福濤 許 賀 李 贊 李 彬, 5 楊建敏1, , 5
四種不同餌料對真蛸()生長與腸道微生物影響的研究*
駱啟豪1, 6王衛軍1, 2, 3①倪樂海4景福濤4許 賀3李 贊2李 彬2, 5楊建敏1, 2, 5①
(1. 上海海洋大學 水產科學國家級實驗教學示范中心 上海 201306; 2. 魯東大學農學院 煙臺 264025; 3. 江蘇寶源生物科技有限公司 連云港 222100; 4. 山東省漁業技術推廣站 濟南 250013; 5. 煙臺海育海洋科技有限公司 煙臺 264000; 6. 山東省海洋資源與環境研究院 煙臺 264006)
本研究分析了不同餌料對真蛸()生長與腸道微生物的影響。實驗采用4種餌料: 藍點馬鮫(魚組)、天津厚蟹(蟹組)、四角蛤蜊(貝組)和日本槍烏賊(魷魚組)分別投喂真蛸, 分析了各實驗組真蛸的日均攝食量、特定生長率、餌料轉化率、經濟效益比, 以及餌料對腸道微生物菌群結構和多樣性的影響。實驗結果表明: 在生長性能指標方面, 貝組的日均攝食量最高, 而餌料轉化率低于魚組與蟹組; 魚組與蟹組的日均攝食量差異不大, 但蟹組真蛸的特定生長率和餌料轉化率高于其他三組且經濟效益最佳; 魷魚組的日均攝食量、特定生長率、餌料轉化率和經濟效益比均低于其他三組。在真蛸腸道微生物群落的豐富度與多樣性方面, 魚組均高于其他各組, 而魷魚組的豐富度最低; 在門水平上, 軟壁菌門、螺旋體門、變形菌門等10個門為真蛸的優勢菌群; 在屬水平上, 攝食率最大的貝組真蛸腸道菌群中的支原體、乳球菌等11種菌為優勢菌群, 特定生長率最大的蟹組中真蛸腸道菌群中的弧菌、小紡錘狀菌等5種菌為優勢菌群。綜合不同餌料對真蛸生長性能指標和腸道菌群的影響, 認為蟹類是真蛸理想的餌料。
真蛸(); 餌料; 生長性能; 腸道微生物;16S rDNA
真蛸()別稱普通八爪魚、母豬章、章魚, 為軟體動物門(Mollusca)、頭足綱(Cephalopoda)、八腕目(Octopoda)、蛸科(Octopodidae)、蛸屬() (董正之, 1978), 是我國沿海地區的重要經濟頭足類。真蛸為世界廣布種, 在中國主要分布于東南沿海地帶, 在北部地區如山東沿海也有少量分布(徐實懷等, 2014)。真蛸對環境適應性強, 餌料來源廣且轉化率高(王懷忠等, 2018), 而且肉質鮮美, 富含優質蛋白質和不飽和脂肪酸, 營養豐富, 具有養血通乳、解毒、生肌的功效(Vaz-Pires, 2004), 深受消費者歡迎, 因而具有很大養殖發展前景。
水產養殖過程中, 餌料選擇直接影響養殖物種健康與生長的好壞, 這使餌料對水產動物生長性能的影響成為了國內外研究的熱點。Abu-Elala等(2020)發現在日糧中添加一定量的啤酒酵母()可以促進尼羅羅非魚()生長性能和免疫力, 并增加其對疾病的抵抗力。葉建生等(2017)研究不同餌料對胭脂魚()生長的影響, 結果表明不同餌料對其生長的效果具有明顯差異。張麗等(2011)對投喂冰鮮小雜魚和配合飼料的加州鱸()生長性能、形體指標等進行比較分析后, 發現飼喂冰鮮小雜魚可顯著提高加州鱸的生長性能并改良其肌肉品質。
水產動物攝食餌料種類的不同可導致其體內的腸道微生物群落結構的不同, 而動物腸道微生物在宿主的生長、營養和健康等方面可作為一個重要的角色, 對宿主的免疫防御、消化吸收和營養代謝等生理功能產生十分重要的影響(陳泓宇等, 2018)。Wang等(2020)研究發現日糧中添加一定量的發酵麥麩多糖可以提高鯉魚()的消化酶活性和雙歧桿菌()的數量, 改變其肌肉組成并提高鯉魚的生長性能。Amoah等(2020)研究發現一定水平的多粘芽孢桿菌()可以調節凡納濱對蝦()的腸道微生物組成, 對其腸道健康具有積極作用, 并促進營養的消化吸收, 增強蝦的免疫力。
目前, 對于真蛸的飼養限于從野外捕獲的苗種進行海上網箱或室內水泥池的養成(王懷忠等, 2018), 國內外現已研究了多種類型的人工飼料用于喂養真蛸, 但比較生長及存活率結果后發現人工配合飼料的效果不如自然餌料(Biandolino, 2010)。目前, 餌料對于真蛸的生長性能與腸道微生物多樣性影響的研究鮮有報道。本研究作者選用4種真蛸養成過程中常用的自然餌料: 藍點馬鮫()、天津厚蟹()、四角蛤蜊()和日本槍烏賊()進行投喂, 比較其日均攝食量、特定生長率、餌料轉化率及經濟效益比、腸道微生物菌群結構和多樣性的影響, 并分析其生長與腸道微生物的關系, 旨在為真蛸養成過程中的餌料選擇提供科學的理論依據。
2019年5月本實驗用真蛸()采捕于中國福建海域, 挑選個體健康且體表無外傷的真蛸運至山東華春漁業有限公司養殖基地。實驗水池長′寬′高為6.85 m′3.37 m′1.40 m, 在水池底部兩側用瓷磚與紅磚搭建巢穴, 巢穴數量多于真蛸數量。養殖車間白天亮度小于300 lx, 模擬真蛸在自然狀態下所適宜的暗環境。
真蛸在暫養池中適應48 h后, 從中挑選120只體重相近、活力強且無外傷的真蛸隨機分成四組進行實驗: 分別投喂冰鮮藍點馬鮫(魚組)、鮮活天津厚蟹(蟹組)、鮮活四角蛤蜊(貝組)和冰鮮日本槍烏賊(魷魚組)。每組真蛸30只, 實驗前稱其初始體重量, 餌料投喂量為真蛸體重的10%—20%。每日16:00進行全量換水并清除殘餌, 水溫控制在21—23 °C, 鹽度為28—31。每日17:00投喂餌料, 每次投餌前稱餌料重量, 第二天清池時收集殘餌瀝干后稱殘餌重量。飼養周期為36 d, 每18 d對各實驗組稱重。
第36天投喂餌料8 h后對各實驗組雄性真蛸進行取樣。對真蛸的體表進行消毒處理, 在無菌環境條件下, 用無菌手術剪刀對胴部進行解剖, 收集腸道內容物于凍存管中, 并迅速放入液氮罐中保存。每組取五個平行樣本, 共計20個樣本。
1.4.1 基因組DNA的提取和PCR擴增 將樣本交由諾禾致源生物信息科技有限公司進行處理。采用CTAB法對樣本的基因組DNA進行提取, 之后利用瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA的純度和濃度, 取適量的樣本DNA于離心管中, 使用無菌水稀釋樣本至1 ng/μL。以稀釋后的基因組DNA為模板, 根據測序區域的選擇, 使用帶Barcode的特異引物, New England Biolabs公司的Phusion?High-Fidelity PCR Master Mix with GC Buffer, 和高效高保真酶進行PCR擴增, 并對PCR產物進行混樣和純化。16S rRNA V4區引物對應區域為:
5′-GTGCCAGCMGCCGCGGTAA-3′(515F)
5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′(806R)
1.4.2 文庫構建和上機測序 使用TruSeq?DNA PCR-Free Sample Preparation Kit建庫試劑盒進行文庫構建, 構建好的文庫經過Qubit和Q-PCR定量, 文庫合格后, 使用NovaSeq6000進行上機測序。
1.4.3 序列信息分析 通過對測序所得的原始數據進行Reads拼接、Tags過濾去雜和去除嵌合體等重量控制處理后獲得最終所需的有效數據(Caporaso, 2010; Bokulich, 2013; Rognes, 2016)。利用Uparse軟件(Haas, 2011)對各個樣本的有效數據以97%的一致性進行聚類, 獲得可操作分類單元(OTUs), 隨后篩選OTUs中出現頻數最高的序列作為OTUs的代表序列, 并用Mothur方法與SILVA132 (Edgar, 2013)的SSU rRNA數據庫(Wang, 2007)進行序列信息比對獲得物種注釋分析(設定閾值為0.8—1.0)。最后利用Qiime軟件(Caporaso, 2010)、R軟件和SPSS 22.0軟件等分析途徑對各樣品OTU進行豐度、α-多樣性、β-多樣性以及各分類水平(界、門、綱、目、科、屬、種)上的細菌群落結構比較分析。
日均攝食量、特定生長率、餌料轉化率、經濟效益比計算公式如下:
日均攝食量ADI (g/ind.) =(d-y)/, (1)
特定生長率SGR (%/d) = (lnt- ln1) /′100%, (2)
餌料轉化率DCR(%)= (t-1)/z′100%, (3)
經濟效益比EBR(元/kg)=/a, (4)
式中,d表示每只真蛸每天餌料投喂量(g),y表示餌料剩余量(g),表示每天真蛸個數(ind.),t表示第36 d時測量真蛸體重(g),1為真蛸初始重量(g),z為36 d內總攝入量,a表示36 d內真蛸平均增加體重(kg/ind.),表示36 d真蛸所需餌料成本(元/ind.)。
各實驗組的真蛸每只日均攝食量與特定生長率的變化見圖1。貝組的餌料日均攝食量最高(47.94 g/ind.), 蟹組的攝食量稍高于魚組, 分別為19.60 g/ind.和19.10 g/ind., 魷魚組的攝食量最低(12.50 g/ind.)。在36 d的飼養期間, 蟹組的特定生長率高于其他三組, 平均每只可達到2.15 %/d, 貝組與魚組的特定生長率分別為1.85 %/d和1.67 %/d, 魷魚組最低, 其特定生長率為0.26 %/d。

圖1 真蛸日均攝食量與特定生長率
注: Ov.A, Ov.B, Ov.C, Ov.D分別表示魚組、蟹組、貝組、魷魚組。下同
不同實驗組的成本、餌料轉化率與經濟效益比如表1所示。貝類餌料投喂組成本遠高于其他組, 而其餌料轉化率低于魚組和蟹組, 且經濟效益與魚組和蟹組相比較差; 蟹組的餌料轉化率最高, 且經濟效益比最佳; 魷魚組的餌料轉化率最低, 僅為0.46%, 其成本也高于魚組和蟹組, 且經濟效益比最差。
表1 各實驗組成本、餌料轉化率與經濟效益比

Tab.1 The cost, conversion rate, and economic benefit ratio of diets in each group
2.2.1 測序數據評價 由測序數據量與對應的物種數來構建的物種數目飽和度稀釋曲線, 可見各樣本的曲線均趨向平坦(圖2), 說明目前的OTU數量可以代表各組的微生物信息。對測序數據進行OTU聚類分析, 獲得魚組、蟹組、貝組和魷魚組的OTU個數分別為862、658、695和519。
2.2.2 α-多樣性分析 各實驗組的覆蓋率均為1, 表明本次實驗的測序深度均已經基本覆蓋各個樣品的所有物種。各實驗組的Chao1指數和可觀測物種數從大到小依次為魚組、貝組、蟹組和魷魚組, 表明魚組腸道微生物群落的豐富度最高, 魷魚組豐富度最低。由香農指數和辛普森指數可以看出, 微生物群落的多樣性大小依次為魚組、貝組、魷魚組、蟹組(表2)。
2.2.3 群落結構差異 多重響應排列程序(Multi Response Permutation Procedure, MRPP)分析顯示, 各實驗組間(除魚組與其他三組無顯著性差異外)微生物群落結構的差異顯著, 可看出, 其他各組之間在微生物群落結構上存在顯著性差異, 而貝組與魷魚組存在極顯著差異(表3)。
2.2.4 門和屬水平物種豐度分析 測序注釋結果顯示, 所有樣本在不同分類水平上可劃分入16個門, 26個綱, 56個目, 93個科, 159個屬, 65個種; 其中, 在門的水平上, 豐度排名前十的物種分別為軟壁菌門(Tenericutes)、螺旋體門(Spirochaetes)、變形菌門(Proteobacteria)、厚壁菌門(Firmicutes)、藍細菌(Cyanobacteria)、擬桿菌門(Bacteroidetes)、放線菌門(Actinobacteria)、浮霉菌門(Planctomycetes)、芽單胞菌門(Gemmatimonadetes)、疣微菌門(Verrucomicrobia)。選取各組豐度前10的物種構建物種相對豐度圖(見圖3), 顯示軟壁菌門為四個實驗組的優勢菌群, 蟹組中螺旋體門的豐度最高, 貝組中變形菌門和厚壁菌門豐度均高于其他三組。

圖2 物種數目飽和度稀釋曲線
注: Ov.A1、Ov.A2、Ov.A3、Ov.A4、Ov.A5為魚組的真蛸腸道內容物樣本; Ov.B1、Ov.B2、Ov.B3、Ov.B4、Ov.B5為蟹組的真蛸腸道內容物樣本; Ov.C1、Ov.C2、Ov.C3、Ov.C4、Ov.C5為貝組的真蛸腸道內容物樣本; Ov.D2、Ov.D3、Ov.D4、Ov.D5魷魚組的真蛸腸道內容物樣本
在屬水平上, 選取豐度前35的物種繪制豐度聚類熱圖(見圖4), 實驗結果顯示: 魚組鹽單胞菌()、下水道球菌()、大腸桿菌(Enterobacteriaceae)、摩根氏菌()、嗜冷桿菌()、黃桿菌()、假交替單胞菌()、假船蛆科桿菌()、、的豐度均高于其他實驗組。蟹組弧菌()、小紡錘狀菌()、微酸菌屬()、、的豐度均高于其他實驗組。貝組在支原體()、藻際細菌()、小紡錘狀菌()、螺旋體(unidentified)、發光桿菌()、藍細菌(unidentified)、乳球菌()、鼠海豚桿菌()、慢桿菌()、、的豐度均高于其他實驗組。魷魚組的濱海邊疆桿菌()的豐度均高于其他實驗組。
在蛸類養殖中, 通常用鮮活的雜蟹、雜蝦、雜魚、低廉貝類等作為餌料進行投喂(朱文博等, 2016), 而不同的餌料種類會影響生長(陳泓宇等, 2018)。本實驗使用藍點馬鮫、天津厚蟹、四角蛤蜊和日本槍烏賊四種餌料分別投喂真蛸, 各組在生長性能指標上均表現出明顯差異。前人研究發現, 蟹類是蛸類的優選餌料, 如呂國敏等(2007)研究發現頭足類主要食物為甲殼類, 其中游泳能力弱的蛸類以捕食蟹類等底棲甲殼動物為主, 而人工養殖下的嘉庚蛸()喜捕食天津厚蟹(焦海峰等, 2005), 長蛸()較菲律賓蛤仔()和南美白對蝦()等更喜食招潮蟹(郝振林等, 2013), 這與本研究發現蟹組中真蛸日均攝食量高于魚組和魷魚組的結果一致。
表2 各實驗組真蛸腸道微生物α-多樣性指數

Tab.2 The α-diversity index of intestinal microorganisms in each group
表3 各實驗組真蛸腸道微生物MRPP差異分析

Tab.3 The MRPP analysis of intestinal microorganisms in each group
注: 觀測delta值越小表示組內差異小, 期望delta值越大表示組間差異大。值表示分組解釋的距離比例,值大于0表示組間差異大于組內差異;值小于0表示組內差異大于組間差異。值小于0.05表示差異顯著;值小于0.01表示差異極顯著

圖3 真蛸腸道微生物門水平上的物種相對豐度柱形圖

圖4 真蛸腸道微生物屬水平的物種豐度聚類圖
朱文博等(2016)比較了菲律賓蛤仔、縊蟶()和肉球近方蟹() 3種餌料對短蛸()生長的影響, 結果發現蟹類是短蛸養成階段較為理想的餌料, 邵楚等(2011)用縊蟶、凡納濱對蝦、弧邊招潮蟹()投喂暫養長蛸, 通過分析長蛸的攝食率、重量增加率、特定生長率、餌料轉化率的結果后表明蟹類餌料最佳, 本實驗結果發現蟹組的特定生長率和餌料轉化率均高于其他三組, 表明蟹類相對其他餌料更有利于蛸類的生長。
有研究發現通過對真蛸分別投喂雜魚、紫貽貝()和由蟹肉、貝肉及魚肉組成的混合餌料, 分析其生長性能后發現, 使用冰鮮雜魚投喂真蛸能夠更快地促進生長(Biandolino, 2010)。本實驗使用藍點馬鮫、天津厚蟹、四角蛤蜊和日本槍烏賊投喂真蛸后發現魚組的特定生長率低于蟹組, 與前人研究結果不一致, 本研究結果顯示魚組餌料轉化率和經濟效益比也低于蟹組, 表明蟹類比魚類更能促進真蛸的生長且更適合作為真蛸養成期間的餌料。
在養殖過程中, 特定生長率越高則所飼養動物的日均增重量越大, 而餌料中蛋白質含量的高低可以影響動物的特定生長率(徐云等, 2009)。真蛸具有高蛋白、低脂肪的特點(馬之明等, 2011), 且可以較快地將餌料中的蛋白質轉化為氨基酸為自身所利用(戴宏杰等, 2014), 因而真蛸的生長速度的快慢與餌料的蛋白水平有關, 研究發現四指馬鲅魚()、三疣梭子蟹()、四角蛤蜊和日本槍烏賊肌肉中的粗蛋白含量分別為19.51%、74.02%、11.10%和9.29% (徐善良等, 2009; 劉玉鋒等, 2011; 滕瑜等, 2014; 郭海波等, 2017), 本實驗結果表明蟹組的特定生長率最高, 平均每只可達到2.15 %/d, 其原因可能為蟹類所含蛋白質高于其他餌料, 使得蟹組的真蛸能較其他組更快地生長。
盛鵬程等(2020)以烏鱧()為研究對象, 發現用畜禽內臟為餌料投喂的烏鱧腸道細菌群落多樣性和物種總數均高于用冰鮮魚投喂; 鐘蕾等(2016)通過PCR-DGGE指紋分析發現投喂人工配合飼料和冰鮮魚會對鳡()腸道菌落組成產生差異。本實驗通過對真蛸腸道微生物的α-多樣性和群落結構差異分析, 發現各實驗組間真蛸腸道微生物組成具有差異, 魚組的真蛸腸道微生物群落的豐富度與多樣性均高于其他各組, 且蟹組、貝組與魷魚組的真蛸腸道微生物群落結構之間可產生顯著性的差異, 說明水產動物的攝食方式和種類可以影響腸道內微生物的組成種類、菌群多樣性和分布比例(鐘蕾等, 2016)。Iehata等(2015)研究發現智利章魚()的腸道菌群主要為變形菌門和厚壁菌門, 與本研究測得的真蛸腸道微生物的優勢菌群一致。
弧菌是一種廣泛分布于淡水和海水中的條件致病菌, 易存在于雜食性動物體表和體內, 尤其是甲殼類和貝類(陳梅等, 2002), 本研究通過16S rDNA擴增技術測序后發現蟹組的弧菌屬豐度高于其他三組, 蟹組高豐度的弧菌可能來源于所食的天津厚蟹, 但在養殖過程中并未暴發疾病, 這可能與魚類自身的腸道微生物中的弧菌可以作為一種正常菌群而存在有關(Bano, 2007)。支原體為水生動物易感染的致病菌(Li, 2016), 能夠破壞宿主免疫的系統并參與其他致病病變的發展和誘導疾病的加重(Razin, 1998), 本實驗結果顯示貝組的支原體屬的豐度高于其他三組, 有研究發現縊蟶內臟團的優勢菌屬為支原體(王鑫毅等, 2019), 推測本實驗中貝組的支原體屬有可能來源于真蛸所食的四角蛤蜊。
不同食性的魚類腸道菌群內, 存在滿足不同營養物質消化吸收的標志性微生物(Navarrete, 2008)。在肉食性魚類的腸道菌群中會存在與消化吸收緊密相關的產生蛋白酶和脂肪酶的微生物, 如鹽單胞桿菌屬、鯨桿菌屬() (孟曉林等, 2019)。本研究發現真蛸腸道內存在鹽單胞桿菌屬, 與前人研究結果一致。藻際細菌存在于微藻周圍, 與藻細胞及其胞外分泌物共同形成“藻際環境” (Bell, 1972)。本研究發現貝組真蛸腸道中藻際細菌的豐度高于其他實驗組, 其原因可能與所用餌料為以浮游植物為主的濾食性貝類有關(董波等, 2000)。
乳球菌等益生菌可以長期定植在宿主的腸道體內, 可以有效地幫助宿主進行食物消化與營養吸收(Balcázar, 2007)。本實驗中貝組真蛸的日均攝食量遠高于其他三組, 可能與貝組腸道微生物中的乳球菌豐度高于其他三組有關。Lin等(2019)研究發現螺旋體屬在延緩花鰻鱺()生長方面起著關鍵作用, 從本研究得出的生長性能指標可以發現, 貝組真蛸攝食量遠高于蟹組, 但其特定生長率卻低于蟹組, 其原因可能與貝組的真蛸腸道中優勢菌群為螺旋體屬有關。
腸道菌群的生物多樣性和群落結構的組成對水生宿主, 尤其是海洋生物的生長具有密切的聯系, 通常認為在一個穩定的腸道菌群環境下, 其微生物多樣性越高, 腸道對于營養吸收的功能越好(de Schryver, 2014)。本實驗中魷魚組的腸道微生物的多樣性最低, 且優勢菌屬單一, 尤其是益生菌較少, 這可能為魷魚組的攝食率和餌料轉化率明顯低于其他實驗組的原因, 進而造成該組的特定生長率也低于其他實驗組。
Shi等(2020)研究發現快速生長的花鰻鱺腸道的優勢菌群為梭菌屬, 其生長與腸道內的梭菌屬豐度有關。通過本實驗結果發現蟹組的特定生長率最高, 腸道內弧菌、小紡錘狀菌、微酸菌屬、、的豐度高于其他實驗組, 推測真蛸的快速生長可能與上述菌屬有關。
本研究分別投喂真蛸藍點馬鮫(魚組)、天津厚蟹(蟹組)、四角蛤蜊(貝組)和日本槍烏賊(魷魚組)4種自然餌料, 各實驗組間的真蛸生長性能指標與腸道微生物產生了明顯差異。貝組中真蛸日均攝食量最高, 而餌料轉化率低于魚組與蟹組。魚組與蟹組的日均攝食量差異不大, 其中蟹組的特定生長率和餌料轉化率高于其他三組且經濟效益最佳。魷魚組的日均攝食量、特定生長率、餌料轉化率和經濟效益比均低于其他三組。魚組的真蛸腸道微生物群落的豐富度與多樣性均高于其他各組, 而魷魚組的真蛸腸道微生物群落的豐富度最低。
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EFFECTS OF FOUR DIFFERENT DIETS ON GROWTH AND INTESTINAL MICROORGANISMS OF COMMON OCTOPUS ()
LUO Qi-Hao1, 6, WANG Wei-Jun1, 2, 3, NI Le-Hai4, JING Fu-Tao4, XU He3, LI Zan2, LI Bin2, 5, YANG Jian-Min1, 2, 5
(1. National Demonstration Center for Experimental Fisheries Science Education, Shanghai Ocean University, Shanghai 201306, China; 2. School of Agriculture, Ludong University, Yantai 264025, China; 3. Jiangsu Baoyuan Biotechnology Co., Ltd., Lianyungang 222100, China; 4. Shandong Fishery Technology Extension Station, Jinan 250013, China; 5. Yantai Haiyu Ocean Technology Co., Ltd., Yantai 264000, China; 6. Shandong Marine Resource and Environment Research Institute, Yantai 264006, China)
is one of the most important commercial cephalopods and widely distributes in southeast China. Featured with strong environmental adaptability, rich nutrition, fast growth, wide spectrum of bait, and high conversion rate,has become one of the best-selling aquatic products in China and other countries. In this study, we explored the effects of four diets on the growth and intestinal microorganisms of. The four diets were(fish group),(crab group),(clam group), and(squid group). The average daily food intake, specific growth rate, diet conversion rate, and economic benefit ratio of each group were analyzed. The intestinal contents ofof each group were detected. Results show that the clam group had the highest average daily food intake, while the diet conversion rate was lower than that of the fish group and the crab group. There was a little difference in the average daily food intake between the fish group and the crab group, whereas the crab group had the highest specific growth rate and diet conversion rate. The crab group had the best economic benefits ratio. The average daily food intake, specific growth rate, diet conversion rate, and economic benefit ratio of the squid group were the lowest. The abundance and diversity of the intestinal microbial community ofin the fish group were the highest. Ten phyla including Tenericutes, Spirochaetes, Proteobacteria, etc. were the dominant bacterial phyla in. Eleven genera includingetc., were the dominant bacterial genera in the clam group with the highest average daily food intake. Five bacterium species including, etc. were the dominant bacterial species in the crab group with the highest specific growth rate. In overall, crabs are ideal diet ofin terms of growth performance and intestinal microorganisms.
; diet; growth performance; intestinal microorganism; 16S rDNA
* 現代農業產業技術體系建設專項資金, CARS-49號; 江蘇省“雙創人才”計劃, 2020.09—2023.12; 江蘇省連云港市“花果山英才”計劃, 2019.12—2022.12。駱啟豪, 碩士研究生, E-mail: 17854266371@163.com
王衛軍, 碩士生導師, 副教授, E-mail: wwj2530616@163.com; 楊建敏, 碩士生導師, 教授, E-mail: ladderup@ 126.com
2020-09-26,
2020-11-26
S968
10.11693/hyhz20200900259