曹 瑋,孫 廣,李小多
(安順市人民醫(yī)院檢驗科,貴州 安順 561000)
近幾年來,國內(nèi)耐碳青霉烯類腸桿菌科細菌(carbapenem-resistantEnterobacteriaceae,CRE)的分離率呈現(xiàn)逐年升高趨勢。CRE是院內(nèi)感染的主要病原菌,感染后的死亡率可高達50%[1]。CRE主要包括大腸埃希菌和肺炎克雷伯菌,它們耐藥的機制主要是能產(chǎn)生水解碳青霉烯類抗菌藥的碳青霉烯酶,即產(chǎn)碳青霉烯酶腸桿菌科細菌(carbapenemase-producingEnterobacteriaceae,CPE)[2-3]。對CPE進行早期有效地檢出,在疾病的預(yù)防及控制方面具有重要意義。2018版CLSI將改良碳青霉烯滅活試驗(modified carbapenem inactivation method,mCIM)納入作為微生物藥敏試驗的執(zhí)行標準,但是需要的溫育時間較長,對早期檢測不利[3-5]。基于此,本研究探討快速碳青霉烯滅活試驗(rapid carbapenem inactivation method,rCIM)對CPE的檢測性能,以期為臨床提供參考依據(jù)。
收集2018年1月至2020年8月安順市人民醫(yī)院臨床分離得到的90株CRE。采用梅里埃VITEK 2 Compact全自動分析系統(tǒng)進行菌株的鑒定及藥敏試驗。質(zhì)控菌株大腸埃希菌ATCC25922,肺炎克雷伯菌ATCC BAA1705、ATCC BAA1706均購自國家衛(wèi)生健康委臨床檢驗中心。
梅里埃VITEK 2 Compact全自動細菌鑒定及藥敏分析系統(tǒng)(法國Bio-Merieux公司);PCR基因擴增儀(上海啟步生物科技有限公司);電泳儀及凝膠成像系統(tǒng)(成都壹科醫(yī)療器械有限公司);哥倫比亞血平板(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);M-H藥敏試驗瓊脂平板(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);藥敏紙片(杭州微生物試劑有限公司);胰蛋白胨大豆肉湯(TSB)培養(yǎng)基(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);亞胺培南西司他丁鈉(杭州默沙東制藥有限公司);細菌DNA抽提試劑盒(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);美羅培南藥敏紙片(北京中諾泰安科技有限公司);PCR試劑盒(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);瓊脂糖(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);DNALadder(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司);引物合成和PCR產(chǎn)物測序(廣東環(huán)凱微生物科技有限公司)。
取培養(yǎng)過夜的菌株20 μL,加入到1 mL的無菌水中進行渦旋混勻,然后加入2片(20 μg)美羅培南紙片至菌懸液中,渦旋混勻,在35 ℃條件下進行0.5 h的溫育。離心(10 000 r·min-1,5 min)后取上清液500 μL,加入到2.5 mL ATCC25922(3×108CFU·mL-1)的TSB培養(yǎng)基菌懸液中,在35 ℃條件下進行2 h的孵育,每0.5 h濁度計數(shù)1次(記錄結(jié)果為減去基線后的濁度增長)。肺炎克雷伯菌ATCC BAA1705為陽性質(zhì)控菌株,ATCC BAA1706為陰性質(zhì)控菌株。
取培養(yǎng)過夜的菌株1 μL,加入到2 mL的TSB培養(yǎng)基中進行渦旋混勻,然后加入1片(10 μg)美羅培南紙片至菌懸液中,渦旋混勻,在35 ℃條件下進行4 h的溫育。制備ATCC25922菌懸液(1.5×108CFU·mL-1),在M-H藥敏試驗瓊脂平板上均勻涂布,干燥10 min。用10 μL接種環(huán)取出紙片,擠去多余液體,貼于M-H藥敏試驗瓊脂平板,在35 ℃條件下溫育24 h,然后測量抑菌圈直徑。抑菌圈直徑為6~15 mm或直徑為16~18 mm,但抑菌圈內(nèi)有針尖樣散在菌落,則結(jié)果判定為陽性,即CPE;抑菌圈直徑為16~18 mm或直徑≥19 mm,但抑菌圈內(nèi)有針尖樣散在菌落,則結(jié)果判定為中介;抑菌圈直徑≥19 mm,則結(jié)果判定為陰性,即非產(chǎn)碳青霉烯酶腸桿菌科細菌(non-carbapenemase-producingEnterobacteriaceae,NPE)。
按照細菌DNA抽提試劑盒說明書操作要求提取細菌的DNA,對碳青霉烯酶基因blaKPC、blaNDM、blaIMP、blaOXA-48、blaVIM進行檢測,引物序列見表1。反應(yīng)條件:預(yù)變性,94 ℃×5 min;循環(huán),94 ℃×45 s,55 ℃×45 s,72 ℃×1 min,共進行36個循環(huán);延伸,72 ℃×10 min。PCR產(chǎn)物采用電泳儀及凝膠成像系統(tǒng)分析,電壓100 V,1 h。PCR擴增陽性結(jié)果測序后,用NCBI網(wǎng)站中的Blast程序進行比對。

表1 PCR擴增檢測碳青霉烯酶基因的引物序列表

90株CRE中,經(jīng)PCR基因檢測顯示。CPE 52株,NPE 38株。52株CPE中,肺炎克雷伯菌37株(71.15%),大腸埃希菌7株(13.46%),陰溝腸桿菌4株(7.69%),奇異變形菌與產(chǎn)氣腸桿菌各2株(3.85%);52株CPE中,30株(57.69%)攜帶blaKPC基因,15株(28.85%)攜帶blaNDM基因,3株(5.77%)攜帶blaNDM+blaIMP基因,2株(3.85%)攜帶blaKPC+blaNDM基因,2株(3.85%)攜帶blaKPC+blaIMP基因。
52株CPE中,rCIM篩選結(jié)果為陽性菌株50株(96.15%),陰性菌株2株(3.85%),陰性菌株為奇異變形菌(攜帶blaNDM基因);mCIM篩選結(jié)果為陽性菌株39株(75.00%),陰性菌株13株(25.00%),陰性菌株為7株大腸埃希菌(2株攜帶blaKPC基因、2株攜帶blaNDM基因、3株攜帶blaNDM+blaIMP基因)、2株陰溝腸桿菌(攜帶blaNDM基因)、2株奇異變形菌(攜帶blaNDM基因)、2株產(chǎn)氣腸桿菌(攜帶blaNDM基因)。
以PCR基因檢測結(jié)果為金標準,rCIM檢測CPE的敏感度、特異度、陽性預(yù)測值、陰性預(yù)測值、Kappa值均高于mCIM(均P<0.05)。見表2。

表2 rCIM與mCIM檢測CPE的價值比較 n=52
rCIM的初次溫育時間、二次溫育時間均明顯短于mCIM(P<0.05),每株檢測成本明顯低于mCIM(P<0.05)。見表3。

表3 rCIM與mCIM檢測時間及成本的比較
CPE的不斷增多已經(jīng)成為國內(nèi)外醫(yī)院抗感染治療的主要問題。碳青霉烯酶的基因編碼存在于細菌的多個基因元件上,若是細菌的細胞膜受損時,細胞膜的通透性會增加,碳青霉烯酶能夠在細菌之間進行傳遞,從而導致耐藥細菌的大量產(chǎn)生并廣泛傳播[6]。因此,快速有效地檢出CPE是臨床需要解決的實際問題。與PCR等基因檢測方法相比,表型的檢測顯得更加便捷及經(jīng)濟。目前,常見的碳青霉烯酶表型篩選方法主要包括CIM、改良Hodge試驗、Carba NP試驗等,但是靈敏度較底,且成本較高[7]。mCIM用于碳青霉烯酶表型篩選的靈敏度及特異度均比較高,是2018版CLSI納入的微生物藥敏試驗執(zhí)行標準。因此,本研究比較rCIM與mCIM對CPE的檢測性能,結(jié)果顯示,在52株CPE中,rCIM檢出50株(96.15%),mCIM檢出39株(75.00%),rCIM檢測CPE的敏感度、特異度、一致性Kappa值分別為96.15%、94.76%、0.920,明顯高于mCIM的檢測效能,但是略低于文獻[8]的報道,分析可能與本研究菌株的樣本量不夠大有一定關(guān)系。
本研究90株CRE中,PCR基因檢測檢出52株CPE(57.77%),其中30株攜帶blaKPC基因,15株攜帶blaNDM基因,說明碳青霉烯酶的產(chǎn)生是本院CRE的主要耐藥機制,而以KPC、NDM類型的碳青霉烯酶為主[9]。52株CPE中肺炎克雷伯菌37株(71.15%),大腸埃希菌7株(13.46%),陰溝腸桿菌4株(7.69%);37株肺炎克雷伯菌中,28株攜帶blaKPC基因,7株攜帶blaNDM基因,2株攜帶blaKPC+blaIMP基因,說明本院肺炎克雷伯菌的耐藥機制以產(chǎn)KPC類型的碳青霉烯酶為主,與文獻[10]報道的一致。本研究未檢出攜帶blaOXA-48、blaVIM基因的CPE菌株,這與國內(nèi)的流行病學現(xiàn)狀[11]相符。雖然說,PCR、質(zhì)譜等分子生物學方法是檢測碳青霉烯酶的金標準,但是操作比較復雜,成本比較昂貴,且可能會遺漏不常見基因類型的碳青霉烯酶[12-13]。而rCIM能夠?qū)λ谢蝾愋偷奶记嗝瓜┟高M行表型篩選[14],與mCIM比較,rCIM的檢出時間、成本費用均明顯降低,且不需要特殊的試劑以及設(shè)備。
綜上所述,rCIM作為一種快速且經(jīng)濟的檢測方法,其對CPE的檢測性能優(yōu)于mCIM。但是也存在一定的不足,需要納入更大樣本、更加多樣化的菌株進行研究,以進一步評估rCIM的臨床價值。