趙尚碧,趙振宇,劉 松,曾穩穩,王和玉,王 莉
(貴州茅臺酒股份有限公司,貴州仁懷 564501)
白酒中的有機酸主要有甲酸、乙酸、己酸、丁酸、乳酸、蘋果酸、琥珀酸等數十種,其來源不一,但都是微生物發酵或醇氧化而成[1]。酸類物質是白酒中重要的呈香呈味物質,在白酒微量芳香成分中占很大比例,同時酸類也是形成酯類的前體物質[2-3]。乳酸為揮發性較弱的有機酸,在白酒有機酸中占據著很大的比例,是醬香型白酒發酵過程中一種必不可少的有機酸,適量的乳酸在白酒生產中可以起到抑制雜菌生長、調節酸度的作用,但乳酸含量偏高容易造成淀粉的糖化率降低,出酒率也會降低[4-7]。因此,監測白酒發酵過程中乳酸的含量至關重要。
高溫大曲是醬香型白酒生產過程中重要的糖化劑和發酵劑,也是釀酒原料的一部分,通過自然接種、高溫發酵而制成,是醬香型白酒香氣成分的主要來源之一[8-10]。高溫制曲、用曲量大是生產醬香型白酒的一大特點,乳酸菌是大曲中含有的一種耐高溫的厭氧型或兼性厭氧型細菌,主要代謝產物為乳酸[11-12]。醬香型白酒經過多輪次堆積發酵,大曲的加入會使酒醅的乳酸逐漸積累,從而導致酸度持續增加,酸度增加過度會影響產酒酵母和其他產風味物質微生物的生長代謝,影響酒的產量和質量[13-14]。目前行業中對酒醅中乳酸的檢測已有報道[15-20],但大曲中的乳酸檢測還未見報道,本文旨在建立一種能夠準確、快速測定醬香型高溫大曲中乳酸含量的方法,為白酒釀造過程中乳酸的監控提供技術支撐。
醬香型高溫大曲:某酒廠提供;L-乳酸(色譜純,98 %,Sigma-Aldrich 公司,美國),甲醇(色譜純,TEDIA 公司,美國),磷酸(色譜純,阿拉?。粚嶒炇矣盟鶠槌兯?8.2 MΩ·cm)。
儀器設備:超高效液相色譜儀帶PDA 檢測器(I-Class,Waters,美國);ACQUITYUPLC?HSS T3色譜柱(2.1×100 mm,1.8 μm,Waters,美國);超純水儀(Milli-Q);多管渦旋振蕩器(Talboys,美國)高速冷凍離心機(MIKRO220R,Hettich,德國);超聲波清洗器(KQ-500DA 型,昆山市超聲儀器有限公司);漩渦混合器(Vortex-Genie2T,美國);電子天平(0.01 g,梅特勒-托利多);0.22 μm 濾頭(親水性PTFE針式濾器,安譜)。
1.2.1 大曲樣品處理
大曲樣品粉碎后,稱取5 g 粉末樣品于50 mL離心管中,加入10 mL 水,渦旋振蕩10 min 后,以6000 r/min的轉速冷凍離心5 min,吸取上清液1 mL于2 mL 離心管中,以12000 r/min 冷凍離心10 min,再吸取一定量的上清液用水稀釋30 倍,最后經0.22 μm微孔濾膜過濾進樣。
1.2.2 色譜條件
流動相:0.12%磷酸溶液作為流動相A,100%甲醇作為流動相B,梯度洗脫;柱溫:45 ℃;流速:0.45 mL/min;進樣量:1 μL;檢測波長:214 nm;梯度洗脫程序見表1。

表1 梯度洗脫程序
1.2.3 標準溶液的配制
準確稱取一定量的L-乳酸標準品,用超純水溶解并定容于100 mL 容量瓶中,得到2000 mg/L 的乳酸標準儲備液,置于4 ℃冰箱保存。取一定量的乳酸標準儲備液進行稀釋,分別配成20 mg/L、50 mg/L、100 mg/L、200 mg/L、400 mg/L、600 mg/L、800 mg/L的標準溶液,漩渦混勻。
2.1.1 浸提方式的選擇
乳酸易溶于水,并且超純水純度高,不會引入雜質污染,因此選擇超純水作為浸提溶劑。選取1份大曲樣品,稱取5 g 加入10 mL 水,分別采用浸泡、超聲和渦旋振蕩的方式提取10 min,并測定乳酸含量,每種浸提方式做3 次平行實驗,并計算標準偏差,實驗結果見圖1。

圖1 浸提方式的選擇(n=3)
由圖1 可知,3 種浸提方式均能提取出大曲樣品中的乳酸,浸泡和超聲兩種方式的提取效率差不多,渦旋振蕩方式比浸泡和超聲的提取效率高19%左右。因此,選取渦旋振蕩方式進行提取。
2.1.2 色譜柱的選擇
試驗中分別將ZORBXRRHTSB-C18(2.1×50 mm,1.8 μm)和ACQUITYUPLC? HSS T3 色譜柱(2.1×100 mm,1.8 μm)色譜柱進行對比試驗。如圖2 所示,當使用ZORBX RRHT SB-C18色譜柱時,樣品中乳酸峰與雜質峰不能完全分離,而選用ACQUITYUPLC? HSS T3 柱時,能把乳酸峰和雜質峰很好地分離,并且具有良好的靈敏度。

圖2 色譜柱的選擇
2.1.3 進樣量的優化
該研究對色譜條件中的進樣量進行了優化,取一份大曲樣品,按1.2.1 的方法處理后,在其他色譜條件相同的情況下,改變進樣量,結果如圖3 所示。由圖3 可知,當進樣量為10 μL 和5 μL 時,樣品中乳酸峰和它前后的峰不能完全分離,會使定量不準確,當進樣量為1 μL 時,乳酸峰不受其他峰的干擾,分離得很好,所以進樣量確定為1 μL。

圖3 不同進樣量色譜圖
乳酸標品和大曲樣品檢測分析結果分別見圖4和圖5,由圖4 和圖5 可以看出,大曲樣品中乳酸與乳酸標準品保留時間一致,出峰時間在0.913 min,且分離效果較好,能夠滿足檢測需求。

圖4 乳酸標準品色譜圖

圖5 大曲樣品色譜圖
乳酸標準曲線見圖6,由圖6 可看出,乳酸標準溶液在20~800 mg/L 范圍內線性關系良好,回歸方程為Y=1.026X+5.473,R2=0.9997,滿足檢測要求。以信噪比S/N=3 計算出儀器檢出限(LOD)為4.05 μg/kg,以信噪比S/N=10 計算出儀器定量限(LOQ)為13.50 μg/kg。

圖6 乳酸標準曲線
2.4.1 精密度分析
取1 份大曲樣品,按1.2.1 的方法處理后平行測定6 次,結果見表2,RSD 值為3.03 %,精密度滿足分析要求。

表2 精密度測定結果
2.4.2 重現性試驗
取同一大曲樣品6 份,按1.2.1 的方法處理后上機檢測,結果見表3。

表3 重現性測定結果
由表3 可看出,6 份相同大曲樣品的RSD 值為0.96%,方法重現性較好。
2.4.3 回收率試驗
向已知乳酸濃度的大曲樣品中分別按照5000 mg/L、10000 mg/L 和20000 mg/L 3 個不同添加水平進行乳酸加標回收率實驗,每個添加水平做3 次平行實驗,測定乳酸含量,計算平均回收率,結果見表4。
由表4 可看出,大曲樣品的平均加標回收率在93.4 %~97.2 %之間,表明方法的準確性較好,滿足定量檢測要求。

表4 回收率測定結果
采用超高效液相色譜法檢測醬香型高溫大曲中的乳酸含量,乳酸在20~800 mg/L范圍內線性良好,相關系數R2為0.9997,平均加標回收率在93.4 %~97.2%之間,儀器檢出限為4.05 μg/kg,具有較高的精密度和準確度。該方法前處理簡單,分析時間短,滿足定量檢測要求,適用于大曲中乳酸的測定,可為白酒發酵過程的乳酸監測提供一定的參考和技術支持。