四川玉米小斑病菌交配型組成與育性分析

孫小芳，劉敏，潘婷敏，龔國淑

四川農業大學農學院，成都 611130

0 引言

【研究意義】玉米（Zeamays）是最重要的農作物之一，廣泛用于食品、飼料、工業和能源等方面，然而病害的發生給玉米優質高產帶來了嚴重威脅。由Cochliobolusheterostrophus（無性型：Bipolarismaydis）引起的玉米小斑病（southern corn leaf blight）是玉米生產上不容忽視的重要病害，在世界各玉米產區均有發生[1-3]。目前小斑病是我國黃淮海夏玉米區的主要病害，在東北和西南地區也普遍發生，近年來在福建等南方丘陵區的鮮食玉米上發生嚴重，一般年份減產5%—15%，重發年份可以引起20%—30%的減產[4-6]。長期以來，對該病的防治主要以培育抗病品種為主，輔以化學藥劑，但由于病菌群體內生理分化明顯、變異頻繁，導致品種抗性喪失，防治難度大[6-10]。有性生殖是導致病菌變異的重要途徑之一，影響病原菌的群體結構，在遺傳變異中起著重要作用。明確小斑病菌自然群體的交配型和空間分布情況，以及菌株的有性生殖能力（育性）是進行小斑病菌有性生殖研究的前提條件。因此，開展小斑病菌交配型與育性分析，探索小斑病菌有性世代在自然界存在的可能性，對闡明有性生殖在小斑病菌遺傳變異中的作用具有重要意義。【前人研究進展】真菌的有性生殖由交配型位點（mating-type locus，MAT）控制，如釀酒酵母（Saccharomycescerevisiae）及構巢曲霉（Aspergillus nidulans）的互補交配型分別以MATα和MAT a表示，粗糙脈孢霉（Neurosporacrassa）的交配型分別被命名為MAT a和MAT A，其他子囊菌的交配型一般以MAT1-1和MAT1-2表示[11-13]。DRECHSLER將自然發病的玉米葉片保濕培養，首次獲得了玉米小斑病菌的有性世代[14]，TURGEON等首次克隆得到玉米小斑病菌的交配型基因 MAT1-1和 MAT1-2，分別編碼α-box DNA結合域和HMG-box DNA結合域[15]。交配型種類及其分布影響真菌的交配策略，交配型比例的失衡會造成有性生殖發生的稀缺。引起馬鈴薯晚疫病的致病疫霉（Phytophythorainfestans）為異宗配合卵菌，在瑞士發現 A2交配型以前，除墨西哥以外的其他國家只存在 A1交配型，不能進行有性生殖[16]；20世紀80年代以后在原本僅存在A1交配型的地區，由于 A2交配型菌株的引入，使得致病疫霉群體的有性生殖成為可能，之后有性生殖相繼被報道，成為該病原生活史的重要部分[17]。稻瘟病菌（Magnaporthe grisea）群體的交配型分布和育性水平存在顯著差異，一些地區只有一種交配型，即使環境有利，也不存在有性重組的機會，有性重組可能不是這些地區稻瘟病菌群體變異的主要來源，但在印度喜馬拉雅地區到中國云南南部山區發現稻瘟病菌群體兩種交配型菌株均有分布，且存在較大比例的雌性可育菌株，可能存在有性生殖[18-21]。玉米小斑病菌同稻瘟病菌一樣，屬于典型的無性繁殖真菌，有性世代在自然界鮮有發現，但在人工培養中能夠大量誘導產生，即使是室內長期保存的無性產孢能力減弱的菌株依然保存有性生殖的能力。玉米小斑病菌是異宗配合子囊菌，只有在MAT1-1和MAT1-2兩種交配型的菌株同時存在時才有可能進行有性生殖，因此首先要明確菌株群體的交配型組成。通過設計交配型特異性引物，運用PCR方法檢測子囊菌的交配型已在多種重要植物病原菌的有性生殖研究中應用，如玉米大斑病菌（Setosphaeria turcica）[22-23]、新月彎孢（Cochlioboluslunatus）[24]、灰霉病菌（Botryotiniafuckeliana）[25-26]、小麥白粉病菌（Blumeriagraminisf.sp.tritici）[27]等。目前玉米小斑病菌自然種群的交配型組成及空間分布情況鮮有報道，代玉立等建立了小斑病菌交配型的多重PCR檢測方法，并對福建省102個玉米小斑病菌的交配型進行檢測，MAT1-1和 MAT1-2菌株分別占比 36.3%和63.7%，存在交配型分布不均衡的現象[10,23]。【本研究切入點】玉米小斑病是四川省玉米常發病害之一，近年來，在玉米葉斑類病害中，小斑病的發生普遍率和嚴重度均為最高[28]。四川生態環境復雜多樣，特別是在現有的小麥、玉米輪作系統下推行秸稈還田和免耕等模式，田間復雜的環境則更可能發生著有性生殖。目前，四川玉米小斑病菌自然群體的交配型組成及空間分布情況未見報道，菌株的育性結構尚不明確，育性在時空間是否存在差異仍有待探究。【擬解決的關鍵問題】于2013—2018年大量收集玉米小斑病菌田間菌株，應用多重PCR技術對小斑病菌的交配型進行檢測，并通過與標準菌株對峙雜交的方法對小斑病菌群體的育性進行分析，以期明確小斑病菌自然群體的交配型和空間分布情況，以及育性水平，為探明小斑病菌有性世代在自然界存在的可能性提供依據。

1 材料與方法

1.1 材料

供試菌株：544個待測玉米小斑病菌菌株為2013—2018年從四川、云南等18個市（州）103個采集地采集，經常規組織分離后單孢純化所得，每個菌株均來自不同的單病斑樣本，菌株由四川農業大學植物病理實驗室保存。為了減少繼代培養對菌株育性測定結果的影響，本研究使用的所有菌株均是從斜面保存的一代菌株中活化而來。根據地理來源將544個菌株劃分為6個類群，四川中部地區227個菌株，分別來自成都、眉山；四川東部地區58個菌株，分別來自內江、遂寧、南充、廣安、巴中、達州；四川西部地區 13個菌株，分別來自雅安、甘孜；四川南部地區66個菌株，分別來自樂山、自貢、宜賓、瀘州；四川北部地區163個菌株，分別來自德陽、綿陽、廣元；另有來自云南南部西雙版納州的17個菌株。

馬鈴薯葡萄糖瓊脂（potato dextrose agar，PDA）培養基：馬鈴薯200 g，葡萄糖20 g，瓊脂粉10 g，蒸餾水1 L；馬鈴薯葡萄糖（potato dextrose，PD）培養液：馬鈴薯200 g，葡萄糖20 g，蒸餾水1 L；Sach’s培養基：KNO31.0 g，NaCl 0.5 g，MgSO4·7H2O 0.5 g，Ca(NO3)2·4H2O 0.5 g，CaCO30.5 g，Ca3(PO4)20.5 g，FeCl30.06 g，瓊脂粉15 g，蒸餾水1 L，以玉米葉片為誘導基物，調節pH至6。

主要試劑：Ezup柱式真菌基因組DNA抽提試劑盒，生工生物工程（上海）股份有限公司；2×TaqPCR Master Mix、DNA Marker DL 2000，南京諾唯贊生物科技有限公司；PCR擴增引物由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。

主要儀器：NanoDropTM2000超微量分光光度計，美國Thermo Fisher Scientific公司；Bio-Rad PowerPac 3000凝膠電泳儀，Bio-Rad Universal Hood II凝膠成像儀，美國伯樂公司；Zeiss Axio Imager Z2熒光顯微鏡，德國卡爾蔡司公司。

1.2 供試菌株DNA的提取

菌株接種到PDA培養基上，25℃黑暗培養5—7 d后，用直徑5 mm的打孔器在菌落邊緣打孔，取3—5個菌餅接種到盛有150 mL PD培養液的錐形瓶中，置于26℃下120 r/min振蕩培養4 d，用無菌紗布過濾菌絲體，再用無菌濾紙將菌絲體的水分吸干，于液氮中速凍。參照Ezup柱式真菌基因組DNA抽提試劑盒的方法從凍干菌絲中提取菌株基因組DNA。

1.3 交配型的分子鑒定

以 NCBI數據庫中玉米小斑病菌的交配型基因MAT1-1（Accession number：AF029913）和 MAT1-2（Accession number：AF027687）序列為參照，使用軟件Primer Premier 5.0設計特異性多重PCR引物：ChMAT1（5′-GCACCTGAGCGATTTCTT-3′）為上游引物，ChMAT1-1（5′-CATCTTCATCGGCTCCAA-3′）為MAT1-1下游引物，ChMAT1-2（5′-GGCGGATTG ACTCAGTGTTG-3′）為 MAT1-2下游引物。PCR反應體系為15 μL，菌株DNA 1 μL，體系內3個引物各0.5 μL，2×TaqPCR Master Mix 7.5 μL，ddH2O 5 μL。擴增程序：95℃預變性3 min，94℃變性40 s，53℃復性 60 s，72℃延伸 1.5 min，30 個循環，72℃延伸 7 min。同時設不加模板 DNA的反應體系為陰性對照。擴增產物經1.2%瓊脂糖凝膠電泳檢測，根據電泳條帶大小來區分菌株的交配型。

1.4 育性分析

根據交配型PCR檢測結果，從小斑病菌群體中隨機選取不同地理來源的MAT1-1和MAT1-2菌株各10株，進行相反交配型菌株的兩兩配對雜交，篩選出一對高配合力的菌株作為標準菌株，再以標準菌株與田間待測菌株雜交，進行育性分析。

有性雜交以Sach’s培養基為基礎培養基，以玉米葉片為誘導基物。在 9 cm的培養皿中加入 15 mL Sach’s培養基，在培養基凝固前將1張4 cm×2 cm的滅菌成熟玉米葉片放置于皿中央培養基上。待培養基凝固后將兩個相反交配型的菌株分別接種在距葉緣0.5 cm的兩側，24℃下黑暗培養25—30 d。當標準菌株間對峙雜交產生成熟假囊殼時，在解剖鏡下檢查待測菌株與標準菌株對峙產生的假囊殼，統計假囊殼產生量，并隨機挑選20—30個假囊殼置于載玻片上，蓋上蓋玻片，輕輕壓碎后在光學顯微鏡下觀察子囊、子囊孢子的發育情況。試驗重復3次，每次每個配對雜交培養3皿。育性由待測菌株與標準菌對峙雜交時產生的假囊殼及子囊數量來衡量。將形成假囊殼，且能夠產生子囊孢子的菌株界定為可育菌株；將不能形成假囊殼，或只產生空的假囊殼的菌株界定為不育菌株。育性分級標準見表1。

表1 玉米小斑病菌有性雜交的育性分級標準Table 1 The fertility grading criteria of C.heterostrophus

1.5 育性的遺傳分化

根據育性分析結果，在高育性菌株群體中選擇MAT1-1和MAT1-2菌株各10株，進行兩兩配對雜交；在低育性菌株群體中選擇 MAT1-1菌株 8株與MAT1-2菌株11株，進行兩兩配對雜交。以標準菌株對峙雜交為對照，24℃下黑暗培養25—30 d，統計假囊殼產生量，檢測子囊、子囊孢子的發育情況。方法同1.4。

1.6 數據分析

采用SPSS 21.0軟件進行試驗數據的統計分析，應用 Duncan氏新復極差法進行差異顯著性檢驗。卡方檢測χ2是在MAT1-1﹕MAT1-2的理論比率1﹕1，自由度為1的基礎之上計算得出。

2 結果

2.1 玉米小斑病菌有性世代的形態特征

通過相反交配型菌株的室內對峙雜交成功誘導出玉米小斑病菌的有性世代（圖 1）。成熟的假囊殼約在對峙雜交的25—30 d內形成，呈黑色，近球狀，大小約300—600 μm，頂口處有喙，不同的雜交組合產生的假囊殼大小和形態稍有差異。假囊殼內一般幾個到幾百個子囊不等，子囊棍棒狀，基部有短柄，大小（144—203）μm×（23—31）μm。子囊內常產生1—8個子囊孢子，大多數子囊內含有2—6個子囊孢子，子囊孢子線狀，隔膜6—9個，在子囊內螺旋形盤繞，大小（155—350）μm×（5—9）μm。

2.2 玉米小斑病菌的交配型分析

利用多重PCR檢測供試玉米小斑病菌的交配型，MAT1-1菌株擴增得到大小為 1 343 bp的片段，MAT1-2菌株擴增得到大小為1 141 bp的片段（圖2）。PCR檢測結果顯示，544個待測菌株中286個MAT1-1菌株，出現頻率為52.57%；258個MAT1-2菌株，出現頻率為47.43%。兩種交配型比例為1.11﹕1，卡方檢驗符合1﹕1分布（χ2=1.441，P=0.230）。沒有檢測到同時含有兩種交配型基因或兩種交配型基因全部缺失的菌株。根據菌株來源，對各地玉米小斑病菌交配型進行統計，結果見表 2。除甘孜州外，兩種交配型的菌株在各采樣區域均有分布，且同一田塊甚至同一病葉可分離到兩種交配型的菌株。四川中部、東部、西部、南部和北部地區小斑病菌MAT1-1和MAT1-2出現頻率分別為54.63%、45.37%；51.72%、48.28%；61.54%、38.46%；56.06%、43.94%；49.08%、50.92%。云南南部地區 MAT1-1和 MAT1-2出現頻率分別為41.18%和 58.82%。各地區兩種交配型的頻率稍有不同，推測小斑病菌在當地發生有性雜交的機率是不同的，但均未偏離1﹕1。

表2 四川省17個市（州）及云南省西雙版納州玉米小斑病菌交配型分布情況Table 2 Mating type of C.heterostrophus isolates collected from 17 cities (prefectures) of Sichuan and Xishuangbanna of Yunnan provinces

2.3 標準菌株的篩選

根據菌株交配型的PCR檢測結果，分別在兩種交配型的菌株中隨機挑選不同地理來源的 10個菌株進行兩兩對峙雜交，在100個配對雜交組合中，假囊殼產生量大于 200/皿的占比 29.00%（表 3）。其中，DY-12-1-2（MAT1-2）與 10個 MAT1-1交配型菌株雜交，假囊殼產生量大于 200/皿的有 9個組合；MSRS-2-3（MAT1-1）與10個MAT1-2交配型菌株雜交，假囊殼產生量大于200/皿的有7個組合。且這些具有高假囊殼形成能力的組合均能產生較多的子囊和子囊孢子，表明MSRS-2-3（MAT1-1）和 DY-12-1-2（MAT1-2）均具有較高的有性世代形成能力，適合作為標準菌株。因此，選擇MSRS-2-3（MAT1-1）和DY-12-1-2（MAT1-2）用作標準菌株。

表3 玉米小斑病菌田間菌株的對峙雜交假囊殼產生情況Table 3 Reciprocal crossing between different mating type isolates of C.heterostrophus

2.4 育性分析

18個市（州）的544個玉米小斑病菌田間菌株與標準菌株對峙雜交有性世代形成情況見表 4。有 511個菌株能夠與標準菌株雜交形成假囊殼，占比93.93%，不能形成假囊殼的菌株僅有 33株，占比6.07%。各菌株間假囊殼形成量有很大的差異，從幾個到幾百個不等，其中低假囊殼形成能力的菌株 228株，占比41.91%，為主要類群。其次為中等假囊殼形成能力的菌株178株，占比32.72%；高假囊殼形成能力的菌株僅105株，占比19.30%。能夠雜交產生子囊孢子的可育菌株有483株，占比88.79%；61個參試菌株不能與標準菌株雜交形成子囊孢子，為不育菌株，占比11.21%。可育菌株與不育菌株的頻率差異極顯著（P＜0.01）。就交配型組成而言，在可育菌株群體中，MAT1-1交配型菌株有251個，占比51.97%，MAT1-2交配型菌株有232個，占比48.03%，兩種交配型分布差異不顯著。就育性結構而言，高育性菌株67株，占比12.32%；中等育性菌株149株，占比27.39%；低育性菌株267株，占比49.08%，為主要類群。來自甘孜州的2個菌株均表現為不育，其他各地區菌株的可育率在60%—100%。來自成都、德陽、廣元、綿陽、內江、自貢和云南西雙版納的菌株可育率均達到90%以上，其中內江、自貢和西雙版納菌株可育率為100%。在菌株量大于20株的成都、德陽、廣元、樂山、眉山和綿陽采樣區，高育性菌株率為8.70%—18.75%，中等育性菌株率為12.50%—34.78%，低育性菌株率為42.24%—65.00%，不育菌株率為4.76%—18.75%。

表4 四川省17個市（州）及云南省西雙版納州玉米小斑病菌有性世代形成情況Table 4 Fertility of C.heterostrophus isolates collected from 17 cities (prefectures) of Sichuan and Xishuangbanna of Yunnan provinces

按地理來源分區，四川中部、東部、西部、南部、北部地區小斑病菌的可育率和高育性菌株率分別為89.87%、11.89%；79.31%、6.90%；69.23%、15.38%；83.33%、6.06%；93.25%、12.27%。云南南部地區的菌株可育率和高育性菌株率分別為 100.00%和58.82%。以上結果表明不同地理來源的菌株群體育性結構不同。

2.5 交配型和育性水平的年度動態變化

統計 2013—2018年玉米小斑病菌交配型和育性組成，由表5可知，隨著時間的變化，小斑病菌兩種交配型的比例和育性水平出現波動，但變化不大。就交配型結構而言，各年間兩種交配型菌株的頻率沒有明顯差異，說明 6個時間群體的交配型結構是一致的。就育性結構而言，2013年和2014年菌株可育率均低于80%，可能是由于菌株保存時間較長，導致育性降低；2018年菌株可育率為88.76%，2015—2017年菌株可育率在 93.33%—94.87%，保持較高的育性水平。

表5 不同年份玉米小斑病菌交配型及有性世代形成情況Table 5 Mating type and fertility of C.heterostrophus isolates from corn southern leaf blight during 2013-2018

2.6 育性的遺傳分化

在高育性菌株的100個配對雜交組合中，假囊殼產生量大于200/皿的組合占比69.00%，假囊殼產生量在100—200/皿之間的組合占比22.00%，假囊殼產生量少于100/皿的組合占比9.00%（表6）。其中，B73-2-2（MAT1-2）與CZ-1-1（MAT1-1）菌株雜交雖產生了大量的假囊殼，但是假囊殼內只有極少量的子囊和子囊孢子；ZJ-10-2（MAT1-2）、J-A（MAT1-2）分別與MAT1-1的10個高育性菌株雜交時，均有4對雜交組合產生的假囊殼少于 100個/皿；DJY-1-2A（MAT1-2）與10個MAT1-1菌株雜交時，出現了3種不同等級的假囊殼產生情況。

表6 高育性菌株間對峙雜交假囊殼的產生情況Table 6 Reciprocal crossing between high fertile isolates of C.heterostrophus

在低育性菌株的 88個配對雜交組合中，出現 3對假囊殼產生量大于200/皿的組合，占比3.41%；假囊殼產生量在100—200/皿之間的組合占比42.05%；假囊殼產生量少于100/皿的組合占比47.73%；有6個雜交組合未能產生假囊殼，占比 6.82%（表 7）。18LS-2-5（MAT1-2）與D4-3-1（MAT1-1）的雜交組合沒有產生子囊孢子，但與 CZ-7-1-1（MAT1-1）的雜交組合產生大量假囊殼且形成豐富的子囊孢子。D4-3-1（MAT1-1）與8個MAT1-2菌株雜交時，有5對組合未能產生假囊殼。GY-6-1-2（MAT1-1）與 8個MAT1-2菌株雜交時，雖有假囊殼產生，但無子囊孢子形成。MS-6-1-1（MAT1-1）與 8個 MAT1-2菌株雜交時，有7對組合僅能形成空的假囊殼。

表7 低育性菌株間對峙雜交假囊殼的產生情況Table 7 Reciprocal crossing between low fertile isolates of C.heterostrophus

比較高育性菌株群體間和低育性菌株群體間雜交有性世代的產生情況，可見，高育性菌株群體整體保持了較高的假囊殼和子囊孢子產生能力，而低育性菌株群體整體有性生殖能力較低，說明通過與標準菌株對峙雜交的方法來判斷菌株群體的育性是可行的。但在低育性群體中也會出現高配合力的雜交組合，表明有性生殖是一個復雜的過程，菌株間可能會存在互補效應。

3 討論

交配型和育性是真菌群體遺傳結構研究的重要組成部分。由交配型基因控制的交配型種類及其分布影響著真菌有性生殖的策略，但交配型偏離現象在異宗配合真菌中普遍存在，如稻瘟病菌[18-21,29]、玉米大斑病菌[30-31]、球孢白僵菌（Beauveriabassianasensu lato）[32]等，意味著有性生殖在這些群體中發生的概率很低。有研究表明，異宗配合的子囊菌失去有性生殖能力的原因可能在于失去了某種特定的交配型，或因生境發生重大變化造成的定向選擇對某一交配型群體的無性型特別有利，導致這一交配型比例的猛增，從而改變交配型結構，進而導致有性生殖策略發生改變[15,33]。本研究結果表明，四川、云南玉米小斑病菌自然群體中MAT1-1和MAT1-2兩種交配型的菌株普遍存在，沒有出現某一種交配型缺失或占絕對優勢的現象，不同年份間交配型的結構也保持一致。在同一病葉上能夠分離到兩種交配型的菌株，意味著在自然條件下這些地區玉米小斑病菌極有可能存在有性生殖，有性重組可能是玉米小斑病菌遺傳多樣性形成的一種潛在機制。但各個地區小斑病菌兩種交配型的比例稍有不同，因而小斑病菌在各地通過有性雜交而出現變異的機率是不同的。

本試驗中交配型測定的結果表明自然條件下未見小斑病菌的有性態并不是由某些地域范圍內某一種交配型類型的缺失造成的，因而進一步探索菌株群體的育性結構對小斑病菌有性生殖發生的影響。胡旭章等開展的55對小斑病菌的種內雜交，僅有一對產生了成熟的子囊孢子，表現出低育性的特征[34]。本研究中544株玉米小斑病菌與標準菌株對峙雜交，88.79%的菌株能夠產生成熟的子囊孢子，保持了較高的可育率，說明四川、云南的小斑病菌有較強的有性生殖能力。但菌株群體內出現育性的分化，不同地理來源的菌株育性結構稍有不同，推測菌株的育性水平可能與地理來源有關。育性結構的差異進一步說明病菌在不同地區發生有性生殖的機率不同。試驗中部分采樣點和菌株分布存在不均勻的現象，菌株的育性結構后續仍需進一步研究驗證。

在育性分析中，一個菌株的育性能力是由標準菌株和測試菌株互作決定的，測試菌株與標準菌株的配合力強弱是關鍵，因此需要選擇合適的標準菌株。在稻瘟病菌群體育性分析中，發現由于標準菌株的不同造成同一組稻瘟病菌株的育性結果差異很大[35]。造成這些差異的原因可能有兩種：一是不同標準菌株和待測菌株之間的親和力不同，二是由所選用的標準菌株的交配能力強弱差異。本研究中表現為低育性或不育的菌株可能只是與標準菌株之間弱的親和性反映。因此，利用多對不同遺傳背景的高育性的標準菌株進行育性測定，更能反映菌株群體的育性水平。在小斑病菌的研究中發現，高育性的菌株間配對易形成假囊殼，高育性和低育性的菌株配對不一定形成假囊殼，低育性的菌株配對一般不形成假囊殼[36]。本研究中也發現小斑病菌中普遍存在菌株的親和性差異。高育性菌株在與標準菌株配對時均產生了較多的假囊殼和子囊孢子，但高育性菌株之間相互雜交時不一定都能產生較多的有性世代；相反一些低育性菌株之間雜交，也會出現產生較多假囊殼和子囊孢子的情況。高育性菌株間雜交不能形成豐富的有性世代，推斷是某些因素抑制了有性世代的發生，而低育性菌株之間的雜交大量產生有性世代可能是兩菌株之間的互補效應。小斑病菌假囊殼形成、子囊孢子的發育過程觀察發現當親本都含有Tox1時會導致子囊孢子發育中斷[37-38]，說明小斑病菌有性生殖是一個復雜的過程，除受到交配型基因調控外，菌株間的親和性還受到眾多其他基因的調控[39-44]。

生殖模式影響植物病原菌種群遺傳動態和進化格局，進而影響防控策略。交配型和育性是玉米小斑病菌重要的群體特征，明確玉米小斑病菌群體的交配型和育性情況，對深入探討玉米小斑病菌有性態在自然界中的發生機制及解析異宗配合真菌遺傳變異具有重要意義。四川省目前大力推廣的秸稈還田，為玉米小斑病菌提供了良好的生存和越冬條件，在兩種交配型菌株普遍存在的情況下，田間有性生殖可能正在發生。后續應開展更大范圍的玉米小斑病菌的交配型檢測和育性分析，一方面分析小斑病菌發生有性重組的可能性，另一方面可以篩選高育性菌株，組建用于分析特定無毒基因的有性雜交組合，為開展小斑病菌的遺傳研究提供試驗材料，為研究小斑病菌的無毒性遺傳規律打下基礎。

4 結論

四川玉米小斑病菌自然群體中 MAT1-1和MAT1-2兩種交配型的菌株普遍存在且均衡分布，多數為可育菌株，室內誘導能夠獲得大量的有性世代，有性重組可能是玉米小斑病菌遺傳多樣性形成的一種潛在機制。盡管未見自然條件下小斑病菌有性世代的報道，但有性生殖可能正在發生，并在小斑病菌遺傳變異中起著重要作用。