大黃酸對偽中間葡萄球菌的抗菌活性及作用機制

宋 軍，周志新，付琳清，王晗晟，劉 夢，孫東波，鄭家三

(黑龍江八一農墾大學動物科技學院，大慶 163319)

偽中間葡萄球菌(Staphylococcuspseudintermedius)是一種凝固酶陽性條件致病菌[1]，經常引起犬的膿皮病。這種常見的條件致病菌還能夠引起犬、貓等動物的外耳道炎、傷口感染、尿道感染及其他一些感染[2]。耐甲氧西林偽中間葡萄球菌(methicillin-resistantStaphylococcuspseudintermedius，MRSP)及耐其他抗菌藥物菌株的出現，已經超出獸醫臨床抗生素用藥范圍[3]，引起了越來越多的關注。特別是近年來，在犬的主人和獸醫身上也發現了偽中間葡萄球菌的定植，并相繼出現偽中間葡萄球菌感染人的報道[4-5]。因此，偽中間葡萄球菌作為一種潛在的重要動物傳染性病原菌，將會對人類公共健康造成嚴重威脅。

遏制動物源細菌耐藥是人類控制細菌耐藥的重要組成部分。針對目前細菌耐藥性問題，包括抗菌肽、噬菌體、益生菌、中草藥等抗菌劑或抗生素替代產品的研發逐步開展，其中，中草藥來源廣泛、安全性好，是綠色、有效的抗生素替代品，具有廣泛的應用前景。大黃酸是一種活性蒽醌衍生物單體，主要從蓼科藥用植物大黃中提取。大黃酸廣泛存在于大黃、何首烏、虎杖等中藥中，具有多種藥理作用，如抗炎、抗腫瘤、抗氧化、抗菌、抗病毒和降血糖作用[6-11]。

前期國內外學者研究表明，大黃酸具有潛在的抗菌活性[12-14]，與抗生素聯用有增效或部分增效作用[15]，并且能夠抑制生物被膜形成，但對其作用機制研究較淺[16]。為此，本文以偽中間葡萄球菌為研究對象，探討大黃酸的抗菌活性及抗菌機制，為犬膿皮病及偽中間葡萄球菌感染的防治提供基礎。

1 材料與方法

1.1 菌株及藥品來源

偽中間葡萄球菌分離株來源于2018—2020年大慶市農大動物醫院膿皮癥患犬，偽中間葡萄球菌ATCC 49444購自上海北諾生物科技有限公司；大黃酸(純度>98%)購自中國食品藥品檢定研究院。

1.2 培養基與試劑盒

LB液體培養基、胰蛋白胨大豆肉湯(TSB)、Baird-Parker瓊脂培養基、亞碲酸鈉卵黃增菌液購自海博(青島)生物有限公司；β-半乳糖苷酶活性檢測試劑盒購自北京索萊寶科技有限公司；活性氧檢測試劑盒購自碧云天生物技術有限公司。

1.3 主要儀器

電熱恒溫培養箱(上海森信實驗儀器有限公司)；超聲波振蕩儀(寧波新芝生物科技有限公司)；低溫冷離心機(德國艾本德股份公司)；酶標儀Elx800(美國BioTek公司)；Infinite 200 pro多功能酶標儀(瑞士TECAN)；Hitachi S-4800 掃描電子顯微鏡(日本日立公司)；JEM-2100 Plus透射電子顯微鏡(日本電子株式會社)。

1.4 細菌分離鑒定

1.4.1 細菌分離 無菌采集膿皮病患犬皮屑或膿汁共計38份，分別接種于LB液體培養基，37 ℃增菌培養8 h后，接種于Baird-Parker瓊脂培養基中，培養24 h挑取平皿上黑色有透明帶或帶暈的單菌落接種于LB液體培養基，置于37 ℃，160 r·min-1純培養12 h，進行革蘭染色鏡檢。利用細菌DNA基因提取試劑盒提取分離株DNA，-20 ℃保存備用。

1.4.2 細菌分子生物學鑒定 參考Bannoehr等[17]偽中間葡萄球菌特異性引物16S rRNA、mecA(甲氧西林耐藥基因)和hsp60(熱休克蛋白)對分離菌株進行PCR擴增、鑒定。PCR擴增體系(總體積為25 μL)：RNase-free 2×Taq PCR Mix12.5 μL，上、下游引物(表1)各1 μL，基因組DNA模板1 μL，H2O 9.5 μL。PCR反應程序參考Bannoehr等[17]的方法。PCR擴增產物經1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定后，送吉林庫美生物科技有限公司進行測序、比對。

表1 16S rRNA, mecA和hsp60基因擴增引物[17]

1.5 大黃酸對偽中間葡萄球菌抗菌活性

1.5.1 最小抑菌濃度和最低殺菌濃度 最小抑菌濃度(minimum inhibitory concentration，MIC)的測定參考Song等[18]的方法略作修改。大黃酸以DMSO(二甲基亞砜)為溶劑，配制成5 mg·mL-1備用。用TSB培養基對大黃酸進行倍比稀釋，每孔100 μL加至96孔微量培養板中，同時每孔加入100 μL 濃度約為105CFU·mL-1對數生長期菌液，37 ℃培養24 h，每組3個重復。TSB培養基不加藥為陰性對照組。以沒有肉眼可見的細菌生長的最低濃度為大黃酸的MIC。最低殺菌濃度(minimum bactericidal concentration，MBC)是指將MIC以上各孔培養物，分別吸取100 μL 接種在Baird-Parker瓊脂基礎培養基上，37 ℃ 恒溫培養24 h，進行菌落計數，其菌落數少于5個的大黃酸濃度即為MBC[19]。

1.5.2 大黃酸對偽中間葡萄球菌生長的影響 將偽中間葡萄球菌培養至對數生長期，按1%接種不同濃度大黃酸(1/4×MIC、1/2×MIC、1×MIC與2×MIC)至無菌TSB培養基中，置于37 ℃，180 r·min-1搖床培養8 h，每間隔30 min取樣測600 nm處吸光度，繪制時間-抑菌曲線。以未添加大黃酸的菌液作為對照組，每組3次重復。

1.6 溶血活性

參考Song等[18]的方法，采集健康犬血液在4 ℃ 下1 000×g離心5 min，得到犬紅細胞(cRBCs)用阿氏液洗滌3次，用PBS (pH=7.4)稀釋10倍。然后，將50 μL cRBCs與等量不同濃度的大黃酸(1×MIC、2×MIC、4×MIC和8×MIC)加入到96孔細胞培養板中，37 ℃孵育60 min 后測定上清液在450 nm處的吸光度。未經處理cRBCs的分別用0.1% Triton X-100和阿氏液處理，分別作為陽性和陰性對照。每組3個重復，測試兩次。溶血活性按下式計算：溶血率(%)= [(樣品OD570-陰性OD570)/(陽性OD570-陰性OD570)]×100。

1.7 黏附試驗

參照李燕杰等[19]方法并進行適當修改，將對數生長期的ATCC 49444稀釋到1×106CFU·mL-1。取含有不同濃度(1/4×MIC、1/2×MIC、1×MIC與2×MIC) 大黃酸的細菌懸液1 000 μL加入到24孔細胞培養板中(每孔含有無菌載玻片)，37 ℃培養120 min。用PBS洗去未黏附的細菌細胞，將載玻片轉入裝有10 mL PBS溶液試管中，于20 kHz、25 ℃ 條件下超聲處理60 s，平板計數評估細菌細胞的黏附率[19]。

1.8 大黃酸對偽中間葡萄球菌作用機制研究

1.8.1 細胞膜通透性測定 內膜通透性通過測定細菌在ONPG(鄰硝基苯β-D-半乳吡喃糖苷)為底物的培養基中，細胞質β-半乳糖苷酶活性的釋放。將ATCC 49444培養至對數生長期，并接種至含不同終濃度(1×MIC和2×MIC)的大黃酸液體培養基中，使含菌濃度為108CFU·mL-1，同時用PBS代替大黃酸藥液作為對照組，37 ℃ 160 r·min-1搖床培養。每60 min各取1.0 mL，用0.22 μm無菌濾器過濾，取濾液，參照試劑盒說明書測定β-半乳糖苷酶活性。

1.8.2 活性氧測定 使用活性氧(ROS)檢測試劑盒測定偽中間葡萄球菌內ROS的水平。將對數生長期的ATCC 49444稀釋到OD600nm= 0.4和10 μmol·L-1DCFH-DA孵育20 min，PBS(pH 7.4)清洗和重懸菌體。100 μL細菌懸液與等體積不同濃度的大黃酸(1×MIC和2×MIC)混合后加入96孔熒光酶標板中，37 ℃條件下，每隔10 min，利用Infinite 200 pro多功能酶標儀(帝肯，中國)進行測定，其中激發波長為488 nm，發射波長為525 nm。 每個樣品3個重復，測試兩次。

1.8.3 掃描電子顯微鏡觀察大黃酸對偽中間葡萄球菌細胞形態的影響 參照Wang等[20]方法處理掃描電鏡樣品，將培養至對數生長期濃度為108CFU·mL-1菌懸液與大黃酸(終濃度1×MIC)混合，37 ℃作用6 h后，4 000 r·min-1離心10 min，用PBS清洗3遍，菌體用2.5% (w/v)戊二醛4 ℃條件下固定過夜。隨后，用乙醇(30%、50%、70%、85%、90%和100%)進行梯度脫水，用叔丁醇代替乙醇脫水2次，干燥樣品，噴金制樣，采用日立S-4800掃描電子顯微鏡觀察。

1.8.4 透射電子顯微鏡觀察大黃酸對偽中間葡萄球菌細胞超微結構的影響 前期菌體固定與掃描電鏡樣品制備方法一致，戊二醛固定后的菌體用1%鋨酸溶液固定1 h，用PBS清洗菌體3遍，丙酮梯度脫水。環氧樹脂包埋過夜，50 ℃烘干48 h。1%乙酸雙氧鈾染色，切片制樣后采用JEM-2100 Plus透射電子顯微鏡觀察。

1.9 數據處理

試驗結果以“平均數±標準偏差”表示，采用GraphPad Prism 8統計學軟件分析，組間的差異比較采用t檢驗，差異性檢驗水準設為P<0.05(*)差異顯著，P<0.01(**)差異極顯著。

2 結 果

2.1 革蘭染色和生物學特性檢測

分離菌株在Baird-Parker瓊脂培養基中，培養24 h后，菌落呈黑色、濕潤、隆起、光亮、表面光滑，外層有明顯渾濁帶(圖1A)；革蘭染色鏡檢為陽性球菌(圖1B)，菌呈球形，大小均勻，葡萄串狀，革蘭染色呈藍紫色。

A. Baird-Parker瓊脂生長特征； B.革蘭染色結果(100×)A. Growth characteristics of Baird Parker Agar; B. Results of Gram staining(100×)圖1 分離菌株生物特征的檢測結果Fig.1 Detection results of biological characteristics of isolated bacteria

2.2 分子生物學鑒定

分離菌株16S rRNA，mecA和hsp60基因均擴增出特異性條帶，與圖2所示基因片段大小相一致。利用Blast程序對測序結果進行分析比對，共分離到20株偽中間葡萄球菌，分離率為52.63%(各菌株同源性均達98%以上)。

2.3 大黃酸對偽中間葡萄球菌的抗菌活性

通過測定大黃酸對偽中間葡萄球菌標準株和分離株(20株)的抗菌活性，表明大黃酸對偽中間葡萄球菌最小抑菌濃度(MIC)為12.5 μg·mL-1，最小殺菌濃度(MBC)為25 μg·mL-1或50 μg·mL-1。

2.4 抑菌動力學曲線

向對數生長期菌液中加入不同濃度大黃酸后，偽中間葡萄球菌呈不同程度的抑制(圖3)。加入大黃酸的終濃度為2×MIC時，8 h內偽中間葡萄球菌被完全抑制，菌液澄清；當大黃酸在亞抑菌濃度(1/2×MIC)時，細菌生長緩慢，3 h內能夠抑制細菌生長，但隨著作用時間延長，細菌逐漸增長。上述結果說明，大黃酸能明顯抑制偽中間葡萄球菌的生長。

A. 16S rRNA擴增結果； B. mecA擴增結果； C. hsp60擴增結果。 M.DNA分子量標準(100～2 000 bp)；1.陰性對照；2.目的條帶A. Results of 16S rRNA amplification; B. Results of mecA amplification; C. Results of hsp60 amplification. M. DNA molecular weight standard (100-2 000 bp); 1. Negative control; 2. Target band圖2 標準株16S rRNA, mecA和hsp60基因PCR擴增結果Fig.2 PCR amplification results of 16S rRNA, mecA and hsp60 of standard strain

圖3 不同濃度大黃酸對偽中間葡萄球菌的抑菌活性曲線Fig.3 Antibacterial activity curve of different concentrations rhein against Staphylococcus pseudintermedius

2.5 溶血活性

為了進一步了解大黃酸對哺乳動物細胞膜的毒性，檢測了不同濃度大黃酸對犬血紅細胞的溶血活性。當大黃酸濃度為1×MIC、2×MIC、4×MIC和8×MIC時，溶血活性分別為1.21%、1.86%、3.14%和5.14%。

2.6 黏附試驗

為觀察大黃酸對偽中間葡萄球菌早期生物膜形成的影響，評價生物膜形成的初始階段——黏附。結果如圖4，1/4×MIC的大黃酸能夠抑制偽中間葡萄球菌的黏附，和對照組相比，抑制率為18.91%。隨著大黃酸濃度的增加，大黃酸濃度為2× MIC時，抑制率為87.13%。說明大黃酸對黏附的抑制作用具有劑量依賴性。

圖4 大黃酸處理可減少偽中間葡萄球菌的黏附Fig.4 Rhein treatment reduces adhesion of Staphylococcus pseudintermedius

2.7 細胞膜通透性測定

在細胞遭受損傷通透性改變的情況下，β-半乳糖苷酶會泄漏至胞外，通過檢測胞外β-半乳糖苷酶活力的變化，也可反映細菌細胞膜的損傷情況[21]。在培養期間，對照組胞外β-半乳糖苷酶活性變化不顯著，大黃酸(1×MIC和2×MIC)處理組胞外β-半乳糖苷酶活性隨著時間延長而增加(圖5)。

2.8 大黃酸對偽中間葡萄球菌ROS的影響

如圖6所示，大黃酸對偽中間葡萄球菌產生的ROS具有濃度依賴性作用。在濃度為1×MIC時產生的ROS是空白對照組的3.9倍。在濃度為2×MIC時，熒光強度比空白對照組增加了6.4倍。總之，和對照組(大黃酸未處理組)相比，大黃酸處理后使偽中間葡萄球菌細胞產生大量ROS。

圖5 大黃酸作用前后偽中間葡萄球菌懸液中β-半乳糖苷酶活力變化Fig.5 Effect of rhein on β-galactosidase activity of Staphylococcus pseudintermedius

圖6 大黃酸對偽中間葡萄球菌ROS的影響Fig.6 Effect of rhein on ROS of Staphylococcus pseudintermedius

2.9 大黃酸對偽中間葡萄球菌細胞形態和超微結構的影響

通過掃描電子顯微鏡和透射電子顯微鏡直接的觀察偽中間葡萄球菌的外部形態和內部結構的變化[18,21]。SEM觀察結果顯示，未加大黃酸空白對照組(圖7A)偽中間葡萄球菌形態飽滿圓潤、表面光滑。大黃酸(1×MIC)處理組(圖7B)大部分細胞呈黏連狀態，細胞表面存在大量分泌物、細胞皺縮。TEM觀察結果(圖7C)顯示，未經大黃酸處理的偽中間葡萄球菌細菌細胞壁和細胞膜完整，內容物致密，分布均勻。大黃酸(1×MIC)處理的細胞，電子密度降低、細胞壁破裂、內容物泄漏(圖7D)。說明大黃酸對偽中間葡萄球菌的內部結構及外部形態均造成了破壞性影響。

3 討 論

寵物源耐藥細菌的出現被認為是潛在的公共衛生問題，嚴重威脅著寵物主人和獸醫的健康[22]。偽中間葡萄球菌就是其中之一。偽中間葡萄球菌是一種凝固酶陽性條件致病菌，具有多重耐藥性，是引起犬膿皮病最主要的致病菌[23]。因此，迫切需要天然、安全、效果好的抗生素替代物，控制寵物源耐藥細菌的感染。

本研究從38份臨床樣本中分離得到20株耐甲氧西林偽中間葡萄球菌，說明偽中間葡萄球菌是犬膿皮癥最主要的致病菌之一。測得大黃酸對耐甲氧西林偽中間葡萄球菌最小抑菌濃度(MIC)為12.5 μg·mL-1。不同抗菌藥物、抗菌肽、天然產物等抑制細菌生長的機制較為復雜，包括針對細菌細胞壁、細胞膜的合成，核酸和蛋白質的合成和抑制，干擾細菌代謝等[24]。本研究中，亞抑菌濃度的大黃酸能夠在3 h內抑制偽中間葡萄球菌的生長，之后隨培養時間的延長緩慢增長(圖3)。說明大黃酸可能弱化了細胞壁對維持細胞形態的作用[25]，導致細菌被抑制。為評估藥物的安全性，本研究測定了大黃酸對犬紅細胞的毒性，當大黃酸濃度高達8×MIC 時，對犬紅細胞幾乎沒有溶血活性，說明大黃酸具有治療犬膿皮病的潛力。黏附是細菌定植入侵及形成生物被膜的關鍵步驟[26]。本研究通過測定不同濃度的大黃酸對偽中間葡萄球菌黏附的影響，評價其抗生物膜作用，結果表明，在體外亞抑菌濃度下，大黃酸可以阻止偽中間葡萄球菌的黏附，減少細菌定植和影響生物被膜的形成。

A、C 空白對照組；B、D. 1×MIC大黃酸處理組A,C Blank control group; B,D. 1×MIC rhein treated group圖7 電鏡觀察大黃酸對偽中間葡萄球菌細胞形態和超微結構的影響Fig.7 The effect of rhein on the cell morphology and ultrastructure of Staphylococus pseudintermedius by electron microscope

細菌的保護屏障細胞膜，在防御系統中發揮著重要作用[27]。同時，細胞膜也是許多藥物、抗菌肽等作用的靶點之一[28]。前期，關于大黃酸抗菌機制的研究較少，國內學者證明了大黃酸通過損傷細菌的細胞膜，從而抑制細菌的生長和繁殖[16]。本研究通過測定大黃酸作用后偽中間葡萄球菌細胞膜通透性和完整性，評價大黃酸的抑菌作用機制。結果顯示，大黃酸處理后，胞外β-半乳糖苷酶活性隨著時間延長而增加，表明大黃酸能改變偽中間葡萄球菌細胞膜通透性，而且能破壞細胞膜，使存在于細胞漿內的核酸和酶等生物大分子外流，細胞營養物質丟失，從而發揮抑菌抗菌作用，與覃靜等[16]報道的大黃酸對金黃色葡萄球菌的作用結果相似。此外，有研究表明，抗菌藥物能夠通過刺激細菌細胞產生高水ROS，發揮抗菌作用[29-30]。因此，本研究探討了不同濃度的大黃酸對偽中間葡萄球菌的ROS水平。當大黃酸終濃度為1×MIC和2×MIC時，細菌細胞內ROS水平顯著高于對照組。過量ROS的產生會導致細菌氧化損傷，影響細菌活性，甚至導致細菌死亡[31]。最后，本研究結合掃描電鏡和透射電鏡觀察，發現大黃酸處理后，細菌細胞表面存在大量分泌物呈黏連狀態，細胞表面褶皺、內部電子密度降低、細胞壁破裂、內容物外流，說明大黃酸對偽中間葡萄球菌的外部形態及內部結構均造成破壞性影響，與上述結果相吻合。

綜上所述，大黃酸通過多種途徑對偽中間葡萄球菌發揮抑菌和殺菌作用，為犬膿皮病及偽中間葡萄球菌感染的防治提供基礎。

4 結 論

大黃酸通過弱化偽中間葡萄球菌細胞壁對細胞形態的維持，破壞細胞膜的通透性、完整性，并誘導細菌細胞產生大量ROS，從而發揮抑菌和殺菌作用。這為研究中藥單體作為抗菌藥物治療犬膿皮病提供了理論基礎和科學依據。