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全反式維甲酸通過調(diào)控sFlt?1表達(dá)對滋養(yǎng)層細(xì)胞侵襲及促血管形成能力的影響

2021-08-25 02:53:10陽雙健鐘黎黎盛瑩郭江虹何宜靜
實用醫(yī)學(xué)雜志 2021年15期
關(guān)鍵詞:水平能力

陽雙健 鐘黎黎 盛瑩 郭江虹 何宜靜

1南華大學(xué)衡陽醫(yī)學(xué)院,附屬第一醫(yī)院產(chǎn)科(湖南衡陽421001);2南華大學(xué)衡陽醫(yī)學(xué)院,附屬第二醫(yī)院婦產(chǎn)科(湖南衡陽421001)

子癇前期(PE)屬于妊娠期特有疾病,指孕婦在懷孕20 周以后出現(xiàn)以高血壓、蛋白尿為主要臨床表現(xiàn)的一組臨床綜合征[1]。既往研究顯示[2?3],胎盤生長因子(PIGF)和血管內(nèi)皮細(xì)胞生長因子(VEGF)含量在子癇前期患者的胎盤組織及血清中降低,而可溶性血管內(nèi)皮生長因子受體1(sFlt?1)含量升高,表明胎盤血管發(fā)育異常與子癇前期形成有關(guān)。全反式維甲酸(ATRA)是維生素A 的生物活性衍生物,在體內(nèi)和體外均表現(xiàn)出調(diào)節(jié)細(xì)胞分化、增殖和凋亡的作用[4?5]。有研究[6]指出,ATRA 在子癇前期患者子宮脫膜組織中低表達(dá),胎盤中ATRA 異常表達(dá)可能影響到滋養(yǎng)細(xì)胞的浸潤過程,但ATRA 在此過程中是否參與胎盤滋養(yǎng)層細(xì)胞侵襲、遷移等過程的調(diào)控以及具體機(jī)制尚未明確。因此,本研究擬初步探討ATRA 對滋養(yǎng)細(xì)胞sFlt?1 表達(dá)的影響以及ATRA 通過調(diào)控sFlt?1 表達(dá)對滋養(yǎng)細(xì)胞侵襲及促血管形成能力產(chǎn)生影響,以期為ATRA 治療子癇前期提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料 人胎盤滋養(yǎng)細(xì)胞系HTR?8/SVneo 購自美國模式菌種收集中心(ATCC);ATRA 購自美國Sigma 公司;sFlt?1、基質(zhì)金屬蛋白酶?2(MMP?2)、基質(zhì)金屬蛋白酶?9(MMP?9)和GAPDH 抗體均購自美國Abcam 公司;RPMI1640 培養(yǎng)基購自美國Hy?Clone 公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒、實時定量PCR 試劑盒購自美國Thermo Fisher 公司;sFlt?1 過表達(dá)質(zhì)粒構(gòu)建及慢病毒包裝、濃縮及純化由漢恒生物科技(上海)公司完成;PIGF、sFlt?1 和VEGF ELISA 試劑盒購自上海卡努生物科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) HTR?8/SVneo 細(xì)胞復(fù)蘇后培養(yǎng)于含1%青霉素?鏈霉素溶液和5%胎牛血清的RP?MI1640 培養(yǎng)基中,置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)傳代。

1.2.2 ATRA 干預(yù)后細(xì)胞中sFlt?1 表達(dá)檢測 取對數(shù)生長期HTR?8/SVneo 細(xì)胞,按照1 × 106個/mL的細(xì)胞數(shù)接種于6 孔板,待細(xì)胞生長至60%融合度時,采用0.15 μmol/L ATRA 分別處理細(xì)胞0、12、24、48、72 h,然后采用qRT?PCR 和ELISA 法分別檢測細(xì)胞中sFlt?1 mRNA 表達(dá)水平及蛋白含量。

1.2.3 細(xì)胞感染及分組處理 待細(xì)胞生長至60%融合度時,分別取陰性對照慢病毒(Vector)和sFlt?1 過表達(dá)質(zhì)粒慢病毒(Lv?sFlt?1)感染HTR?8/SVneo細(xì)胞(感染比例為1∶50),另設(shè)未經(jīng)病毒感染的細(xì)胞作為空白對照組(blank),分別記為Lv?sFlt?1 組、Vector 組和blank 組。感染8 h 后吸除原培養(yǎng)基,更換為新鮮的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),72 h 后用嘌呤霉素篩選穩(wěn)定表達(dá)株,分別采用RT?PCR 和Western blot實驗驗證sFlt?1 過表達(dá)效果。而后將細(xì)胞分為4組:(1)對照組(Control):HTR?8/SVneo 細(xì)胞不經(jīng)任何處理;(2)ATRA 組:HTR?8/SVneo 細(xì)胞經(jīng)0.15 μmol/L ATRA 處理24 h;(3)Lv?sFlt?1 組:穩(wěn)定過表達(dá)sFlt?1 的HTR?8/SVneo 細(xì)胞不經(jīng)任何處理;(4)ATRA+Lv?sFlt?1 組:穩(wěn)定過表達(dá)sFlt?1 的HTR?8/SVneo 細(xì)胞經(jīng)0.15 μmol/L ATRA 處理24 h。

1.2.4 qRT?PCR 檢測細(xì)胞中sFlt?1 mRNA 表達(dá)水平 收集細(xì)胞,采用Trizol 法取總RNA,通過紫外分光光度計檢測總RNA 的含量及純度,按照逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物作為下一步PCR模版,sFlt?1 上游引物序列5′?GCAC CTTGGTTGTG?GCTGACT?3′,sFlt?1 下游引物序列5′?GGGC CC?GGGGGTCTCA TTATT?3;GAPDH 上游引物序列5′?ACTAG GCGCTCACTGTTCTC?3′,下游引物序列5′?AT CCGTTGACTCCGACCTTC?3′。按照試劑盒說明書進(jìn)行操作,4 倍梯度稀釋模板cDNA 制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,確認(rèn)各個基因的擴(kuò)增效率,確定cDNA 上樣濃度。根據(jù)反應(yīng)條件在每個循環(huán)延伸末端收集熒光信號,繪制擴(kuò)增曲線。PCR 擴(kuò)增儀按照95 ℃預(yù)變性30 s,95 ℃變性5 s,退火30 s,72 ℃延伸20 s的條件擴(kuò)增40 次。采用2?△△Ct法計算sFlt?1 mRNA相對表達(dá)量。

1.2.5 ELISA 檢測細(xì)胞上清中sFlt?1、PIGF 和VEGF 蛋白含量 收集細(xì)胞培養(yǎng)上清液,5 000 g離心10 min,收集上清,具體操作過程按照試劑盒說明書進(jìn)行,采用酶標(biāo)儀在450 nm 波長處測定各孔的OD值,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算細(xì)胞培養(yǎng)上清中sFlt?1、PIGF 和VEGF 蛋白含量。

1.2.6 Western blot 檢測細(xì)胞中相關(guān)蛋白表達(dá) 收集細(xì)胞并加入RIPA 細(xì)胞裂解液,置于冰上作用30 min,12 000 g 離心15 min,取上清液用BCA 法測定蛋白濃度并進(jìn)行蛋白定量,經(jīng)聚丙烯酰胺變性凝膠電泳分離蛋白,用濕轉(zhuǎn)法將蛋白轉(zhuǎn)移到聚偏氟乙烯膜,50 mol/L 脫脂牛奶封閉,加入一抗孵育過夜,稀釋比均為1∶500。4 ℃過夜,次日TBST 洗脫3 次,對應(yīng)加辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗,室溫孵育2 h,TBST 洗脫3 次,用ECL 發(fā)光液發(fā)光顯色,在自動凝膠成像分析系統(tǒng)成像,使用Image J 軟件進(jìn)行分析,以GAPDH 為內(nèi)參計算總蛋白相對表達(dá)量。

1.2.7 Transwell 法檢測細(xì)胞侵襲和遷移能力 取24 孔板Transwell 小室,使用無血清培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,以每孔2 × 105的細(xì)胞密度接種于PBS 提前濕潤的Transwell 小室上室聚碳酸酯微孔膜上,每孔加200 μL 無血清培養(yǎng)基。將600 μL 完全培養(yǎng)基加入下室,作為趨化因子,放至培養(yǎng)箱中培養(yǎng),顯微鏡下觀察穿過掉入下室5 個細(xì)胞時終止培養(yǎng),PBS 洗3 次,甲醛固定15 min,0.1%結(jié)晶紫溶液染色15 min,晾干后取出聚碳酸酯微孔膜。于顯微鏡下隨機(jī)計數(shù)5 個視野膜上的細(xì)胞數(shù)目,取其均值,代表細(xì)胞轉(zhuǎn)移能力。細(xì)胞侵襲實驗時Tran?swell 小室上室提前加入Matrigel 膠后接種細(xì)胞,剩下操作同遷移實驗。

1.2.8 小管形成實驗檢測細(xì)胞體外促血管形成能力 將Matrigel 基質(zhì)膠提前放入4 ℃冰箱過夜,融化后加入到96 孔板中凝膠。取各組HUVEC 細(xì)胞上清液,2 000 g 離心5min,收集上清后重懸細(xì)胞并調(diào)整細(xì)胞濃度為2×105個/mL,隨后向鋪好基質(zhì)膠的96 孔板中每孔加入100 μL 細(xì)胞懸液,置于37 ℃5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h,顯微鏡下觀察細(xì)胞成管情況并拍照,并隨機(jī)取5 個視野統(tǒng)計小管形成數(shù)量取均值。

1.3 統(tǒng)計學(xué)方法 所有實驗均重復(fù)3 次,采用SPSS 22 軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,計量資料用(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析或連續(xù)測量數(shù)據(jù)的方差分析,兩兩比較采用LSD?t檢驗。以P<0.05 表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 ATRA 抑制HTR?8/SVneo 細(xì)胞中sFlt?1 的表達(dá) 見圖1,隨著0.15 μmol/L ATRA 處理時間的延長,HTR?8/SVneo 細(xì)胞中sFlt?1 mRNA 表達(dá)水平及上清液中sFlt?1 蛋白含量逐漸降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(FsFlt?1mRNA=11.20,F(xiàn)sFlt?1蛋白=49.66,P<0.001)。與0 h 時間點比較,0.15 μmol/L ATRA 處理24、48、72 h 時,HTR?8/SVneo 細(xì)胞中sFlt?1 mRNA 表達(dá)水平及上清液中sFlt?1 蛋白含量顯著降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.001),根據(jù)該結(jié)果選擇24 h 作為后續(xù)實驗時間點。

圖1 ATRA 對HTR?8/SVneo 細(xì)胞中sFlt?1 表達(dá)的影響Fig.1 Effect of ATRA on the expression of sFlt?1 in HTR?8/SVneo cells

2.2 過表達(dá)sFlt?1 后HTR?8/SVneo 細(xì)胞中sFlt?1的表達(dá)水平 見圖2,與blank 組或Vector 組比較,Lv?sFlt?1 組細(xì)胞中sFlt?1 mRNA 和蛋白表達(dá)水平均顯著增加(P<0.001),表明成功構(gòu)建sFlt?1 過表達(dá)的HTR?8/SVneo 細(xì)胞。

圖2 各組細(xì)胞中sFlt?1 mRNA 和蛋白表達(dá)水平Fig.2 The mRNA and protein expression levels of sFlt?1 in each group

2.3 ATRA 對HTR?8/SVneo 細(xì)胞中sFlt?1、PIGF和VEGF 蛋白分泌的影響 見圖3,與Control 組比較,ATRA 組細(xì)胞上清液中sFlt?1 蛋白水平顯著降低(P<0.05),PIGF 和VEGF 蛋白含量顯著升高(P均<0.01);而Lv?sFlt?1 組細(xì)胞上清液中sFlt?1 蛋白含量顯著升高(P<0.01),PIGF 和VEGF 蛋白含量顯著降低(均P<0.05);與ATRA 組比較,ATRA+Lv?sFlt?1 組細(xì)胞上清液中sFlt?1 蛋白含量顯著升高(P<0.01),而PIGF 和VEGF 蛋白含量顯著降低(均P<0.01)。2.4 ATRA 對HTR?8/SVneo 細(xì)胞侵襲和遷移能力的影響 見圖4、5,與Control 組比較,ATRA 組遷移和侵襲細(xì)胞數(shù)目顯著增加(P<0.001),而Lv?sFlt?1 組遷移和侵襲細(xì)胞數(shù)目顯著減少(P<0.001);與ATRA 組比較,ATRA+Lv?sFlt?1 組侵襲和遷移細(xì)胞數(shù)目顯著減少(P<0.001)。見圖6,與Control 組比較,ATRA 組細(xì)胞中MMP?9 和MMP?2蛋白水平均顯著上調(diào)(P<0.001),而Lv?sFlt?1 組細(xì)胞中MMP?9 和MMP?2 蛋白水平均顯著下調(diào)(P<0.001);與ATRA 組比較,ATRA+Lv?sFlt?1 組細(xì)胞中MMP?9 和MMP?2 蛋白水平均顯著下調(diào)(P<0.001)。

圖3 各組細(xì)胞上清液中sFlt?1、PIGF 和VEGF 蛋白含量比較Fig.3 Comparison of the protein contents of sFlt?1,PIGF and VEGF in the supernatant of each group

圖4 各組細(xì)胞遷移能力比較(×200)Fig.4 Comparison of the migration ability of cell in each group(×200)

圖5 各組細(xì)胞侵襲能力比較(×200)Fig.5 Comparison of the invasion ability of cell in each group(×200)

圖6 各組細(xì)胞中MMP?2 和MMP?9 蛋白表達(dá)水平Fig.6 Comparison of the protein expression levels of MMP?2 and MMP?9 in each group

2.5 ATRA 對HTR?8/SVneo 細(xì)胞促血管形成能力的影響 見圖7,與Control 組比較,ATRA 組細(xì)胞培養(yǎng)上清誘導(dǎo)的HUVEC 細(xì)胞血管成管數(shù)量顯著增加(P<0.001),而Lv?sFlt?1 組細(xì)胞培養(yǎng)上清誘導(dǎo)的HUVEC 細(xì)胞血管成管數(shù)量顯著減少(P<0.001);與ATRA 組比較,ATRA+Lv?sFlt?1 組細(xì)胞培養(yǎng)上清誘導(dǎo)的HUVEC 細(xì)胞血管成管數(shù)量顯著減少(P<0.001)。

圖7 各組細(xì)胞的促血管形成能力比較(×100)Fig.7 Comparison of the angiogenesis ability of the cells in each group(×100)

3 討論

ATRA 是維生素A 在體內(nèi)的重要活性代謝產(chǎn)物,在胚胎發(fā)育、組織器官形成、細(xì)胞增殖、分化、代謝及腫瘤的發(fā)生發(fā)展中均發(fā)揮重要作用[7?9],但過量的ATRA 會導(dǎo)致胎兒畸形,包括消化道畸形、先天性馬蹄內(nèi)翻足等。有研究顯示[6],ATRA 在子癇前期患者子宮脫膜組織中含量較低,采用ATRA干預(yù)可導(dǎo)致子癇前期胎盤基底脫膜細(xì)胞中sFlt?1低表達(dá),而采用ATRA 拮抗劑BMS493 干預(yù)可上調(diào)sFlt?1 表達(dá),推測ATRA 有可能通過抑制sFlt?1 表達(dá)改善子癇前期胎盤血管發(fā)育異常。本研究結(jié)果顯示,ATRA 可能通過抑制sFlt?1 的表達(dá)促進(jìn)滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲和血管生成,從而可能影響子癇前期的病理過程。

sFlt?1 是血管內(nèi)皮生長因子受體?1(Flt?1)的稀有剪接形式,可與Flt?1 競爭性結(jié)合VEGF 和PIGF,使VEGF 和PIGF 生物學(xué)功能被抑制,造成胎盤血管生成障礙[10-11]。有研究利用不同藥物抑制sFlt?1水平達(dá)到了治療子癇前期的目的,例如硫酸鎂[12]、拉貝洛爾[13]、烏拉地爾和香丹注射液[14]等。本研究中首先采用ATRA 處理HTR?8/SVneo 細(xì)胞不同時間,發(fā)現(xiàn)ATRA 可抑制HTR?8/SVneo 細(xì)胞sFlt?1 mRNA 的表達(dá)及其蛋白的分泌,且呈時間依賴性,由此推測ATRA 可能抑制sFlt?1 表達(dá)。

本研究結(jié)果顯示,ATRA 處理可抑制HTR?8/SVneo 細(xì)胞分泌sFlt?1 蛋白,促進(jìn)PIGF 和VEGF 蛋白分泌,同時可提高細(xì)胞的侵襲、遷移以及促血管形成能力;而sFlt?1 過表達(dá)可促進(jìn)HTR?8/SVneo 細(xì)胞分泌sFlt?1 蛋白,抑制PIGF 和VEGF 蛋白分泌,并降低細(xì)胞促血管形成等能力;為了進(jìn)一步探討ATRA 通過抑制sFlt?1 表達(dá)而發(fā)揮作用,本研究采用ATRA 干預(yù)sFlt?1 過表達(dá)的HTR?8/SVneo 細(xì)胞,結(jié)果顯示sFlt?1 過表達(dá)可逆轉(zhuǎn)ATRA 對HTR?8/SV?neo 細(xì)胞的干預(yù)效果,表明ATRA 是通過抑制sFlt?1表達(dá),促進(jìn)PIGF 和VEGF 的分泌,進(jìn)而增強(qiáng)滋養(yǎng)層細(xì)胞促血管形成能力。此外,MMP?9 和MMP?2 是一類基質(zhì)金屬蛋白酶,表達(dá)異常可影響滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲能力,導(dǎo)致血管重鑄不全[15]。研究表明[16-17],子癇前期患者胎盤組織中MMP?2 和MMP?9 蛋白表達(dá)水平顯著降低。本研究結(jié)果顯示,ATRA 處理可促進(jìn)HTR?8/SVneo 細(xì)胞中MMP?9 和MMP?2 蛋白表達(dá),而sFlt?1 過表達(dá)可顯著下調(diào)MMP?9 和MMP?2 蛋白表達(dá)水平;然而,sFlt?1 過表達(dá)又可抑制ATRA 干預(yù)對HTR?8/SVneo 細(xì)胞中MMP?9 和MMP?2 蛋白表達(dá)的上調(diào)作用。因此,ATRA 可能通過抑制sFlt?1表達(dá),促進(jìn)MMP9 和MMP2 蛋白的表達(dá),進(jìn)而提高滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲與遷移能力。

綜上所述,ATRA 可能通過抑制sFlt?1 調(diào)控PIGF 和VEGF 的表達(dá),促進(jìn)滋養(yǎng)細(xì)胞的侵襲及促血管形成能力,因而ATRA 可能具有改善子癇前期的效果。本研究的新穎之處是首次探討了ATRA對滋養(yǎng)細(xì)胞sFlt?1表達(dá)以及對其侵襲和促血管形成能力的影響,但不足之處是未在動物水平進(jìn)行驗證,因此下一步的研究方向?qū)M(jìn)行動物體內(nèi)探究。

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