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復凝聚法制備西番蓮果皮花色苷微膠囊及其性質分析

2021-09-14 00:49:50范方宇張雪春
食品工業科技 2021年17期

孫 雪,張 蕊,范方宇,郭 磊,張雪春

(西南林業大學生命科學學院,云南昆明 650224)

西番蓮是一種營養豐富的熱帶水果,其在加工中產生的大量果皮造成了一定的環境污染。西番蓮果皮富含花色苷,花色苷具有抗氧化、抗腫瘤,預防糖尿病和心血管疾病等功效[1],是一種優秀的天然可食用色素。以西番蓮果皮為原料利用其花色苷,不僅可開發優秀的天然色素,還可解決廢棄物的綜合利用難題。

目前對西番蓮果皮花色苷的研究以提取、分離純化及對其穩定性的研究為主。如陳旭丹等[2]研究了西番蓮果皮色素穩定性,揭示了西番蓮果皮花色苷的穩定性較差。微膠囊技術可保護芯材,防止其被外界環境破壞,控制芯材釋放[3],微膠囊技術可為西番蓮果皮花色苷的穩定性提供保障[4]。微膠囊的制備方法有原位聚合法、噴霧干燥法、復凝聚法、界面聚合法等[5]。其中復凝聚法是用兩種或多種水溶性高分子材料的溶液,在適當的條件下,電荷中和,材料在溶液中凝聚,并將芯材包埋形成微膠囊。復凝聚法制備微膠囊工藝簡單、條件溫和、成本低高產率等[6],在花色苷制備微膠囊技術中大量使用[7]。復凝聚法制備西番蓮果皮花色苷微膠囊,可保障花色苷的穩定性,且為花色苷產品的多樣化提供技術支撐。

基于此,以西番蓮果皮花色苷為芯材,明膠和阿拉伯膠為壁材,采用復凝聚法制備西番蓮果皮花色苷微膠囊,并分析了微膠囊的粒徑、水分含量、形態及熱穩定性等性質,以期為西番蓮花色苷的應用提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

西番蓮 云南省景洪市;乙醇(純度≥99.7%)分析純,廣東光華科技股份有限公司;明膠 化學純,國藥集團化學試劑有限公司;阿拉伯膠 生化試劑,國藥集團化學試劑有限公司;檸檬酸 分析純,天津市風船化學試劑科技有限公司;鹽酸 分析純,成都金山化學試劑有限公司;冰乙酸(純度≥99.5%) 分析純,廣東光華科技股份有限公司;100 U/g 的谷氨酰胺轉氨酶(TG 酶) 泰興市東圣食品科技有限公司。

HH-S4 磁力攪拌水浴鍋 常州朗越儀器制造有限公司;JRA-650 超聲波細胞破碎儀 無錫杰瑞安儀器設備有限公司;FJ200-SH 數顯高速分散均質機上海滬析實業有限公司;B-290 噴霧干燥機 瑞士Buchi 公司;760CRT 紫外分光光度計 上海精密科學儀器有限公司;Hydro 2000Mu 激光粒度儀 英國Malvern 儀器有限公司;SK2009 光學顯微鏡 深圳賽克數碼科技開發公司;SPX-150B 恒溫恒濕培養箱天津泰斯特儀器有限公司;SC-4800 掃描電鏡 日本日立;DSC204F1 差示量熱掃描儀 德國耐馳儀器制造有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 西番蓮果皮花色苷的制備 參考楊宗玲[8]的方法制備西番蓮果皮花色苷。選取新鮮、色澤一致的西番蓮果皮。50 ℃干燥12 h,干燥果皮粉碎,過60 目篩,取篩下樣品,4 ℃密封保存。取干燥西番蓮果皮粉,以液料比10 mL/g,加入86%酸性乙醇(0.054%鹽酸+0.100%檸檬酸),以提取溫度50 ℃、超聲時間37 min、超聲功率190 W 提取花色苷,提取液5000 r/min 離心10 min。取上層清液,濃縮,將濃縮液(即粗提物)于?18 ℃避光保存備用。

1.2.2 花色苷微膠囊制備 參考紀秀鳳[9]的研究方法,略有修改。分別配制一定濃度的明膠和阿拉伯膠溶液,按比例將明膠溶液與西番蓮果皮花色苷混勻,10000 r/min 高速分散1 min,40 ℃水浴,加入一定比例阿拉伯膠溶液,混勻;10%冰乙酸調節反應pH,在一定反應溫度下,200 r/min 攪拌30 min;將溶液迅速冷卻至15 °C,加入一定量TG 酶固化3 h 即得復凝聚微膠囊。取反應后底部微膠囊溶液進行噴霧干燥,得西番蓮果皮花色苷微膠囊樣品。噴霧干燥條件:進風溫度180 °C,出風溫度90 ℃,進料流速9 mL/min。

1.2.3 花色苷含量測定 微膠囊中總花色苷測定[10]:取0.50 g 微膠囊樣品溶于15.0 mL 蒸餾水,振蕩溶解;濾液分別用pH 1.00 鹽酸-檸檬酸緩沖液和pH 4.50 檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液稀釋4 倍[11];置于暗處平衡30 min,510 nm 和700 nm 測吸光值,利用公式(1)計算微膠囊中總花色苷含量。

微膠囊表面花色苷含量測定[12]:取0.50 g 微膠囊樣品,用15.0 mL 振蕩洗滌、過濾;濾液分別用pH1.00 的鹽酸-檸檬酸緩沖液和pH4.50 的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液稀釋4 倍;置于暗處平衡30 min,510 nm和700 nm 測定吸光值,利用公式(1)計算微膠囊表面花色苷含量。

采用pH 示差法[13?14]測定花色苷含量,以式(1)計算:

式中:ΔA-吸光度值之差,(A510–A700)pH1.00–(A510–A700)pH4.50;V-稀釋最終體積,L;DF-稀釋倍數,4;M-矢車菊素-3-葡萄糖苷相對分子質量,449.2;ε-矢車菊素-3-葡萄糖苷摩爾消光系數,26900;m-樣品質量,g。

1.2.4 單因素實驗 以包埋率為指標,固定條件為:芯壁比1:4、壁材質量比(明膠:阿拉伯膠質量比)1:1、壁材濃度1.5%、復凝聚pH 3.50、反應溫度40 °C、反應時間30 min、TG 酶25 U/g 明膠。分別研究芯壁比1:2、1:3、1:4、1:5、1:6,壁材質量比2:1、3:2、1:1、2:3、1:2,壁材濃度0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%,pH 2.50、3.00、3.50、4.00、4.50,反應溫度20、30、40、50、60 ℃,反應時間15、30、45、60、75 min,TG 酶添加量15、20、25、30、35 U/g 明膠對西番蓮果皮花色苷微膠囊包埋率的影響。

1.2.5 Box-behnken 響應面優化試驗 根據單因素實驗結果,選擇對微膠囊包埋率影響顯著的芯壁比、壁材質量比和復凝聚pH 為自變量,以包埋率為響應值,設計三因素三水平的響應面分析實驗,優化工藝參數。因素和水平見表1。

表1 Box-Behnken 實驗設計Table 1 Experiment design of Box-Behnken

1.2.6 性質的測定

1.2.6.1 包埋率 參考唐璐等[15]的方法,測定微膠囊包埋率,以式(2)計算:

1.2.6.2 粒徑測定 將花色苷微膠囊在乙醇介質中分散均勻,采用激光粒度儀測定樣品粒徑。

1.2.6.3 水分含量 參考GB5009.3-2016《食品中水分的測定》直接干燥法測含水量。

1.2.6.4 形貌分析 將樣品粘結在含導電膠的觀測臺,噴金,采用掃描電鏡(SEM)在放大倍數3000 倍條件下觀察微膠囊形態。加速電壓設定10 kV。

1.2.6.5 熱穩定性 利用差示掃描量熱儀(DSC)分析微膠囊的熱穩定性。取5~10 mg 微膠囊樣品于鋁制坩堝中,空坩堝為空白對照,掃描溫度25~200 ℃,升溫速度10 ℃/min,氮氣流速20 mL/min[16]。

1.3 數據分析

實驗數據均進行3 次平行。利用軟件Design-Expert.V8.0.6.1 進行設計,軟件IBM SPSS Statistics 20 對數據進行顯著性分析,軟件Origin 2017 對實驗數據進行繪圖。

2 結果與分析

2.1 單因素實驗

2.1.1 芯壁比對微膠囊包埋率影響 圖1 可見,隨壁材增加,微膠囊包埋率呈先上升后下降趨勢。芯壁比為1:5 時,微膠囊包埋率達到最大,為96.00%,芯壁比為1:6 時微膠囊包埋率顯著(P<0.05)下降。原因為壁材用量較低時,溶液中壁材含量較少,復凝聚反應時形成的凝聚物較少[17],芯材未被完全包裹,造成芯材泄露附著在微膠囊表面,包埋率下降;當壁材過多時,微膠囊芯材相對較少,形成部分空囊,造成壁材浪費[18]。為確定適宜的芯壁比,選擇1:4、1:5、1:6為響應面三水平。

圖1 芯壁比對微膠囊包埋率的影響Fig.1 Effects of core/wall ratio on embedding efficiency of microcapsules

2.1.2 壁材質量比對微膠囊包埋率影響 圖2 可見,隨著阿拉伯膠用量增加,微膠囊包埋率呈先上升后下降的趨勢。明膠:阿拉伯膠=1:1 時,包埋率上升至最高,為94.25%;當壁材比小于1:1 時,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)下降,在明膠與阿拉伯膠質量比為1:2 時,包埋率下降到75.54%,下降了19.85%。明膠含量逐漸增加時,溶液中正電荷增多,正電荷與負電荷結合形成的復合物增加,當明膠:阿拉伯膠為1:1 時,溶液中凈電荷含量最低,故包埋率最大,明膠含量逐漸減少,體系正電荷減少,包埋率降低[19]。為確定適宜的壁材質量比,選擇3:2、1:1、2:3 為響應面三水平。

圖2 壁材質量比對微膠囊包埋率的影響Fig.2 Effect of gelatin/gum Arabi ratio on embedding efficiency of microcapsules

2.1.3 壁材濃度對微膠囊包埋率的影響 圖3 可見,壁材濃度0.5%~1.5%時,隨壁材濃度的增加,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)增加,壁材濃度在1.5%時,出現峰值,包埋率為94.18%。因為壁材濃度過低,未能形成足夠包裹芯材的微膠囊,存在空白復聚物,因此包埋率低。當壁材濃度大于1.5%時,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)下降。因為壁材濃度過大,囊壁變厚,離子濃度增加,壁材自身形成大塊凝膠,使包埋率下降[20]。故壁材濃度1.5%為宜。

圖3 壁材濃度對微膠囊包埋率的影響Fig.3 Effects of the wall material concentration on embedding efficiency of microcapsules

2.1.4 pH 對微膠囊包埋率的影響 圖4 可見,當pH為3.50 時,包埋率最大,為94.23%。pH<3.5 時,與pH為3.5 相比,微膠囊包埋率差異不顯著(P>0.05)。因為阿拉伯膠分子結構上帶有的-COOH 使其水溶液呈弱酸性,在水溶液中帶負電[21]。明膠屬于兩性天然高分子材料,適當降低pH,可以使明膠分子電離正離子,加入與其電荷相反的阿拉伯膠,使明膠溶解度下降,形成微膠囊[20]。pH>3.50 時,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)下降,因為明膠所帶凈電荷較少,難以與阿拉伯膠反應,微膠囊難以形成[22],包埋率降低。為確定適宜的復凝聚pH,選擇3.00、3.50、4.00 為響應面三水平。

圖4 pH 對微膠囊包埋率的影響Fig.4 Effects of pH value on the embedding efficiency of microcapsules

2.1.5 反應溫度對微膠囊包埋率的影響 圖5 可見,在20~40 ℃時,隨著反應溫度的升高,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)上升。當反應溫度在40 ℃時,包埋率最大,為94.18%。原因為較低溫度使壁材分子運動減弱[23],不能形成完整微囊,芯材流出,包埋率下降。當溫度大于40 ℃時,包埋率顯著(P<0.05)下降,原因為溫度過高,壁材穩定性下降,更易溶于溶液中,使壁材更易被破壞[24],造成包埋率下降。故反應溫度選擇40 ℃為宜。

圖5 反應溫度對微膠囊包埋率的影響Fig.5 Effects of temperature on the embedding efficiency of microcapsules

2.1.6 反應時間對微膠囊包埋率的影響 圖6 可見,在15~30 min 時,隨著反應時間的延長,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)上升,在30 min 時包埋率最大為94.23%,當時間超過30 min 時,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)下降,在反應溫度在75 min 時,包埋率下降為79.87%,下降了14.36%。原因為適當延長反應時間有利于微膠囊形成,但時間過長,已形成微膠囊黏連聚集,導致囊壁有破裂[25],包埋率下降。故反應時間選擇30 min 為宜。

圖6 反應時間對微膠囊包埋率的影響Fig.6 Effects of time on the embedding efficiency of microcapsules

2.1.7 TG 酶添加量對微膠囊包埋率的影響 圖7可見,TG 酶添加量在15~25 U/g 明膠時,隨著TG 酶添加量增大,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)上升,當TG 酶添加25 U/g 明膠時,包埋率最高為94.19%。因為酶與蛋白質的作用位點充分結合,發生共價交聯,微膠囊結構穩定[26],包埋率達到最高;TG 酶添加量大于25 U/g 明膠時,微膠囊包埋率顯著(P<0.05)下降,因為TG 酶添加量持續增加,酶添加量過高,使蛋白質交聯過度,微膠囊粘連[27],包埋率降低。故TG 酶添加量選擇25 U/g 明膠為宜。

圖7 TG 酶添加量對微膠囊包埋率的影響Fig.7 Effects of transglutaminase dosage on the embedding efficiency of microcapsules

2.2 響應面試驗設計結果分析

2.2.1 模型建立與顯著性分析 西番蓮果皮花色苷微膠囊包埋率的響應分析實驗根據Box-behnken 設計得到17 組實驗,設計方案及結果見表2。利用軟件Design-Expert.V8.0.6.1 進行回歸擬合,得出以包埋率為響應值的回歸方程(3):

表2 響應面設計方案及結果Table 2 Experimental design and results for response surface analysis

式中,A 為芯壁比,B 為壁材比,C 為復凝聚pH。

對模型進行方差分析,結果見表3。由表3 可以看出,實驗選用模型具有高度的顯著性(P<0.0001),失擬項=0.1817>0.05,失擬項不顯著,表明回歸方程對實驗擬合較好,無失擬因素存在,各因素之間存在較強的交互作用;決定系數R2=0.9858,實驗誤差非常小,表明該模型擬合程度好,可對復凝聚法制備西番蓮果皮花色苷微膠囊工藝過程的分析及預測。

表3 回歸模型方差分析Table 3 Analysis of variance for the fitted regression equation

該模型可以看出A、B、C、A2、B2、C2對西番蓮果皮花色苷微膠囊包埋率影響極顯著(P<0.01),BC影響顯著(P<0.05),AB、AC 不顯著。

2.2.2 響應面交互作用分析 通過Design-Expert.V8.0.6.1 軟件分析,各因素對西番蓮果皮花色苷微膠囊包埋率影響的大小可通過響應面3D 圖曲面圖陡峭程度判斷,曲面越陡峭,影響越大,反之則越小。由圖8(a)響應面最為平滑,說明A、B 交互作用最小;圖8(b)響應面較平滑,說明A、C 交互作用較弱;圖8(c)響應面較陡峭,說明B、C 之間的交互作用最大。響應面結果與表3 中方差分析結果相吻合。根據表3 的分析結果,各交互因素對西番蓮果皮花色苷微膠囊包埋率影響程度排序為:BC>AC>AB。

圖8 各因素交互作用的響應面圖Fig.8 Response surface plots for the interaction of various factors

2.2.3 驗證試驗 在壁材濃度1.5%、反應溫度40 °C、反應時間30 min、 TG 酶25 U/g 明膠時,響應面實驗結果表明,復凝聚法制備西番蓮果皮花色苷微膠囊優化工藝參數為:芯壁比1:4.7,壁材質量比6:7,復凝聚pH 3.31,微膠囊預測包埋率為97.43%。

驗證實驗中,pH 取3.30 作為較佳的工藝參數。三次驗證實驗的微膠囊包埋率為96.83%±0.21%,與預測值相比,包埋率減小0.6%,結果基本一致,表明采用響應面法優化工藝獲得的參數可靠,具有一定的實用價值。

2.3 西番蓮果皮花色苷微膠囊的性質

2.3.1 微膠囊的基本性質 研究中西番蓮果皮花色苷微膠囊的包埋率為96.83%±0.21%。微膠囊平均粒徑為12.15±0.85 μm。Mahdavi 等[28]研究指出,微膠囊產品的水分對微膠囊的流動性、黏性及貯存期都有較大影響,本實驗測得微膠囊水分含量僅為2.69%±0.35%,低于食品應用中粉末最低要求(4.00%)[29]。低水分能有效防止產品結塊,使其具有良好的儲藏穩定性。

2.3.2 表面形態分析 圖9 可見,西番蓮果皮花色苷微膠囊呈球形和橢圓球形,表面存在凹陷,褶皺較多,因為噴霧干燥過程中,水分快速蒸發,壁材不均勻收縮[30]。從圖9 中分散的微膠囊可以看出,表面無裂痕、孔洞,結構完整,表明壁材對西番蓮果皮花色苷具有良好的保護作用。

圖9 微膠囊SEM 照片Fig.9 The SEM pictures of microcapsules

2.3.3 熱穩定性分析 溫度對微膠囊的穩定性有重要的影響。有研究表明西番蓮果皮花色苷適宜在50 ℃以下保存[8]。圖10 可見,微膠囊熔融溫度為82.51 ℃,高于普通儲藏溫度(25 ℃),也高于西番蓮果皮花色苷的適宜儲藏溫度(50 ℃)。研究表明微膠囊技術可以保護芯材,確保花色苷貯藏過程中的熱穩定性,對西番蓮果皮花色苷起到更好的保護作用。

圖10 微膠囊DSC 曲線Fig.10 DSC curves of microcapsules

3 結論

本文通過Box-Behnken 響應面法優化西番蓮果皮花色苷微膠囊的制備工藝,以包埋率為指標,建立的工藝為:芯壁比1:4.7,壁材質量比6:7,壁材濃度1.5%,復凝聚pH3.30,反應溫度40 ℃,反應時間30 min,TG 酶25 U/g 明膠,此條件下,微膠囊的包埋率為96.83%。其粒徑為12.15 μm、水分含量為2.69%,掃描電鏡分析顯示該微膠囊的表面光滑且呈球形結構、其熔融溫度為82.51 ℃,常溫下利于保存。

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