塞尼卡病毒A在BHK-21細胞中培養條件探索

陳麗萍 兆豐華生物科技（福州）有限公司 福州 350014

塞尼卡病毒A（Senecavirus A，SVA），原名塞尼卡谷病毒（Seneca valley virus，SVV）是引發豬原發性水皰病（PIVD）的主要原因，可導致感染豬的鼻吻、蹄冠部出現水皰性病變，新生仔豬死亡。近年來，SVA已經波及美國、加拿大、巴西、泰國、中國等，危害養豬業健康發展[1-6]。目前，國內外仍沒有可以推廣使用的商品化SVA疫苗，疫苗制備方法的報道最早出自中國農業科學院蘭州獸醫研究所[7]。本文通過試驗從接種方法、細胞濃度、血清含量及收毒時間等因素對SVA在BHK-21細胞中培養的影響，從而了解SVA在BHK-21細胞中增殖的最適條件，為疫苗生產提供數據參考。

1 試驗材料

1.1 儀器設備 細胞培養瓶，CO2培養箱，倒置顯微鏡，恒溫水浴鍋，96孔板。

1.2 試驗試劑MEM培養基（購自Gibco），新生牛血清（購自潤生生物），BHK-21細胞，SVA（公司自主分離毒株），胰酶-EDTA溶液（自配）。

2 試驗方法

2.1 兩種接種方法對比試驗 用MEM培養基(含8%新生牛血清)作為BHK-21細胞的營養液，按常規方法培養細胞[8]。將長滿致密單層的BHK-21細胞用胰酶-EDTA消化傳代（比例為1:3），隨機將細胞分成2組，一組同步接種1% SVA；另一組待細胞生長約90%時，棄去營養液，異步接種1% SVA，加入MEM維持液（含2%新生牛血清）；設健康細胞作對照。接毒后細胞放37℃、5% CO2培養箱中培養。培養12 h后每3 h觀察一次，18 h后每3 h、每組隨機收獲2瓶，直至30 h，收獲后反復凍融2次，測定TCID50。

2.2 不同細胞濃度培養同時收獲對比試驗 將長滿致密單層的BHK-21細胞消化后，按1:2、1:3、1:4和1:5的比例稀釋傳代，待細胞生長至90%時，棄去營養液，加入MEM維持液，接種1%SVA；設健康細胞作對照。接毒24 h后同時收獲細胞，反復凍融2次后測定TCID50。

2.3 不同細胞濃度相同病變程度收獲病毒對比試驗 按2.2中的條件培養SVA，當CPE達80%以上時收獲細胞，反復凍融2次后測定TCID50。

2.4 不同時間收獲對SVA增殖的影響 將長滿致密單層的BHK-21細胞消化后，按1:3、1:4比例傳代，每組18瓶，待細胞生長約90%時，棄去營養液，加入MEM維持液，接種1%SVA；設健康細胞作對照。從15 h起每3 h、每組隨機收獲2瓶觀察病變情況，觀察至39 h。反復凍融2次，測定TCID50。

2.5 不同血清含量培養的細胞接種SVA比較試驗將長滿致密單層的BHK-21細胞消化后，按1:3、1:4比例傳代，分別用血清含量為5%、8%、10%的MEM培養，細胞生長至90%時，棄去營養液，加入MEM維持液，接種1%SVA；設健康細胞作對照。當CPE達80%以上收獲病毒，反復凍融2次后測定TCID50。

2.6病毒TCID50測定 將BHK-21細胞按一定比例消化后鋪于96孔板中，0.1 mL/孔，放CO2培養箱中培養24 h后接毒。將待檢病毒液進行10倍倍比稀釋，取10-7、10-8、10-9三個稀釋度分別接種到培養板，每個稀釋度6孔，0.1 mL/孔；設6孔無病毒空白對照，加入MEM維持液，0.1 mL/孔，置于37℃、5%CO2培養箱中培養，每天觀察并記錄每孔細胞的CPE，采用Reed-Muench法計算TCID50。

3 結 果

3.1 兩種接種方法對SVA的影響 從病變來看，異步接毒在接毒15 h病變較輕，18 h病變明顯，24 h病變達80%以上；同步接毒在接毒15 h病變已經很明顯，18 h大量細胞已經脫落，病變達80%以上。可見，異步接毒收獲病毒液的TCID50明顯比同步接種的高（見圖1）。

圖1 兩種接種方法對比試驗結果

3.2 不同細胞濃度同時收獲對SVA增殖的影響細胞接種SVA后，培養24 h同時收獲病毒。由圖2可見，1:2、1:3比例傳代時，收獲病毒液的TCID50都相對較高；1:4、1:5比例傳代時，收獲病毒液的TCID50都相對較低。1:3比例傳代細胞培養的病毒液的TCID50最高。

圖2 不同細胞濃度對SVA增殖的影響

3.3 不同細胞濃度相同病變收獲對SVA增殖的影響 細胞以不同比例傳代后接種病毒，從CPE來看，1:5比例傳代時最早出現病變，接種后18 h CPE已達80%以上；1:4比例傳代時，接種后21 h CPE已達80%以上；1:3比例傳代時，則在接種后24 h CPE達80%以上；1:2比例傳代時，30 h CPE達到80%以上。從圖2可見，1:5比例傳代時，收獲病毒液的TCID50都相對較低，1:2、1:3、1:4比例傳代細胞培養的病毒液的TCID50都比較高。

3.4 不同時間收獲對SVA增殖的影響 從CPE來看，1:4傳代時，接毒后15 h已經出現明顯病變，21 h、24 h CPE達80%以上，33 h細胞大部分都已脫落；1:3傳代時，接毒后18 h出現明顯病變，24 h、27 h CPE達80%以上，36 h細胞大部分都已脫落。由圖3可見，1:4傳代時，在CPE達80%以上且TCID50最高的時間段為21~27 h；1:3傳 代 時，CPE達80%以上且TCID50最高的時間段為24~30 h。

圖3 不同收獲時間對SVA增殖的影響

3.5 不同血清含量培養的細胞對SVA增殖的影響從圖4可知，傳代比例為1:4時，8%血清培養病毒液的TCID50最高；傳代比例為1:3時，8%、10%血清培養病毒液的TCID50都比較高，血清含量增加收獲病毒液的TCID50也增加。總的來說，培養液的營養水平與收獲病毒液的TCID50呈正相關。

圖4 不同血清含量比對試驗

4 討 論

體外培養細胞增殖病毒時，接種時間是病毒增殖效果的重要因素[8-9]。本試驗將SVA以不同接種方法接種BHK-21細胞，結果表明異步接毒收獲病毒液的TCID50高于同步接毒收獲病毒液。細胞濃度會影響病毒的繁殖，從而影響收獲病毒的TCID50。以1:5傳代的細胞，培養病毒的含量較低，而細胞傳代比例為1:2～1:4的，培養病毒的含量較高，而1:2傳代影響生產效率且成本高，整體來看，1:3比例傳代培養SVA病毒，效價較高。

營養液中的血清含量不僅是培養液營養水平的重要體現，還對細胞生長、病毒增殖至關重要。營養水平會影響細胞的長速、周期、狀態，從而影響病毒增殖。試驗結果顯示，采用5%血清培養，病毒含量都偏低，用8%、10%血清培養，TCID50都比較高，但考慮到血清成本較高，用8%血清含量比較適宜。

病毒的收獲時間是病毒液能否在TCID50高點收獲的關鍵因素，直接影響病毒的效價。試驗結果顯示，同等條件下，CPE達80%以上時收獲病毒液的TCID50高于接種病毒后24 h同時收獲病毒液的TCID50。

因此，根據對SVA培養試驗結果，SVA在BHK-21細胞上的適宜培養條件為細胞1:3比例傳代、添加8%新生牛血清培養，待細胞生長至90%比例時接種SVA，接種后培養至CPE達到80%以上收獲病毒。