豆清飲料發酵過程中大豆異黃酮及風味物質變化規律

歐紅艷，趙良忠*，李明,3，周曉潔

1(邵陽學院 食品與化學工程學院，湖南 邵陽，422000)2(豆制品加工與安全控制湖南省重點實驗室，湖南 邵陽，422000) 3(廣州佳明食品科技有限公司，廣東 廣州，510000)

豆清液是指在傳統豆制品生產過程中蹲腦與壓榨時產生的上清液，俗稱黃漿水[1]。豆清液中含有豐富的大豆異黃酮、低聚糖、蛋白質、脂肪[2]，豆清飲料以豆清液為主要原料，通過添加輔料、菌種進行發酵而成[3]。傳統利用豆清液方法主要包括物理方法回收利用功能物質和微生物/酶法生產新化合物、功能性飲料生產和生物燃料等[4]。而豆清飲料既能解決豆清液排放引起的環境問題，又可以提高代謝產物，近年來被廣泛研究。

大豆異黃酮廣泛存在于豆科植物中，大豆種子中尤為豐富，在加工過程中，部分大豆異黃酮會流失到豆清液中[5]。大豆異黃酮具有多種生理功能，如抗氧化、抑制乳腺癌、前列腺癌、防治骨骼疏松癥、預防動脈硬化癥[6]等。其中染料木素是植物雌激素，除了具有上述功能特性之外，還能抑制脂肪細胞中脂肪的生成、降低膽固醇與甘油三酯、抗骨質疏松等[7]。限制豆清液廣泛利用的主要原因之一是豆清液具有豆腥味、蘑菇味與青草味等不良風味物質，普通人很難接受該風味，如果能夠將不良風味降低到痕量水平具有重要研究意義。

本研究以豆清液為主要原料，通過添加鼠李糖乳桿菌(Lactobacillusrhamnosus)、腸膜明串珠菌(Leuconostocmarxianus)、克魯維酵母(Kluyveromycesmarxianus)進行混菌發酵，探究豆清飲料發酵過程中大豆異黃酮、有機酸與風味物質的變化規律。對豆清液的綜合應用及實際生產有很大意義，為豆清液發酵制備新型飲料開發提供理論支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

豆清液、克魯維酵母、明串珠菌、鼠李糖乳桿菌，豆制品加工與安全控制湖南省重點實驗室提供；大麥芽、麥芽糖、低聚果糖、酒花，市售；L-乳酸、L-酒石酸、琥珀酸、檸檬酸、富馬酸、丙酮酸、黃豆黃素、大豆苷、大豆苷元、染料木素、染料木苷、黃豆黃素苷元，北京索萊寶科技有限公司；其他試劑均為國產分析純。

1.2 儀器與設備

IS-RDD3型臺式恒溫振蕩器，蘇州捷美電子有限公司；SB-5200 DTD型超聲清洗機，寧波新芝生物科技股份有限公司；RE-5299型旋轉蒸發器，鞏義市予華有限責任公司；VELOCITY 18R 型高速冷凍離心機，澳大利亞 Dynamica 公司；ULtiMate 3000型高效液相色譜儀，美國賽默飛有限公司；Agilent 7890A-5 975C型氣質聯用儀，安捷倫科技有限公司；HP-INNOWax色譜柱(60 mm×320 mm，0.25 μm)，手動固相微萃取進樣器50/30 μm DVB/CAR/PDMS萃取頭(57328-U)，美國Supelco公司；

1.3 實驗方法

1.3.1 生產工藝流程

豆清液過濾→添加配料→調節pH→滅菌→接種→發酵→離心→豆清飲料

豆清液過濾，添加低聚果糖質量分數為5%、麥芽汁質量分數為4%、酒花質量分數為0.02%，麥芽糖質量分數為6%，調節pH 6.0，105 ℃、8 min進行滅菌之后接種，接種量5%、菌液濃度108CFU/mL，菌液的制備：菌種分別在MRS培養基上進行活化，分別接種于5 mL滅菌的豆清液培養基中進行馴化，對已馴化的微生物分別先后以3%的接種量于28 ℃，24 h培養條件下進行100、500 mL兩級擴大培養，進行活菌計數，克魯維酵母、明串珠菌、鼠李糖乳桿菌按照1∶1∶1的比例進行復配。28 ℃條件下進行發酵，每隔2 h取樣測指標的變化情況，22 h結束發酵。

1.3.2 大豆異黃酮測定

參照GB/T 23788—2009《保健食品中大豆異黃酮的測定方法 高效液相色譜法》[8]，并做一定調整，取15 mL 樣品轉移到錐形瓶中，加入35 mL 80%(體積分數)甲醇，室溫超聲處理提取1 h。將樣品提取液在5 000 r/min下離心12 min，離心之后的樣品進行旋轉蒸發濃縮，用10%甲醇溶液定容至10 mL容量瓶，均勻取1 mL樣品提取液在10 000 r/min下離心10 min，吸取1 mL離心后的液體通過0.45 μm的濾膜，供高效液相色譜儀測定，每組實驗重復3次。色譜柱參數：流動相A為0.1%乙酸溶液、流動相B為0.1%乙酸乙腈溶液、波長260 nm、流速1 mL/min、柱溫40 ℃、進樣量20 μL。根據峰面積與標準樣品質量濃度的關系建立線性回歸方程，見表1。

表1 大豆異黃酮回歸方程Table 1 Regression equation of soybean isoflavones

1.3.3 有機酸測定

參考王容等[9]的方法，并稍作修改，取樣液5 mL，在10 000 r/min下離心20 min，取上清液1 mL，過0.22 μm濾膜，供高效液相色譜儀測定。液相色譜條件：色譜柱為CAPE-CELL PAK MG-C18柱(4.6 mm×250 mm，5 μm)，柱溫30 ℃，檢測波長210 nm，流動相V(甲醇)∶V(pH=2.65 0.01 mol/L KH2PO4溶液)=3∶97；流速1.0 mL/min；進樣量20 μL。根據峰面積與標準樣品質量濃度的關系建立線性回歸方程，見表2。

表2 有機酸回歸方程Table 2 Regression equation of organic acids

1.3.4 風味物質測定

樣品處理：均勻稱取2 g樣品放入萃取瓶內，在55 ℃恒溫水浴攪拌平衡30 min。用50/30 μm DVB/CAR/PDMS萃取纖維頭吸附30 min，將纖維頭于GC進樣口270 ℃解吸附5 min。

GC條件：色譜柱：HP-INNOWax色譜柱(60 mm×320 mm, 0.25 μm)；進樣方式：不分流進樣，載氣流速1.0 mL/min，進樣口250 ℃。升溫程序：60 ℃保持5 min，以8 ℃/min升至100 ℃，保持3 min，以8 ℃/min升至230 ℃，保持5 min。

動態電路總共會涉及滑動變阻器類型的串聯電路、滑動變阻器類型的并聯電路、開關類型的串聯電路、開關類型的并聯電路四個基本電路。本文采用從局部→整體→局部的分析方法，對四個基本電路進行完整、準確的分析，使學生能夠全面掌握動態電路中所遇到的問題，提高學生分析問題、解決問題的能力。

MS條件：電離方式：EI;色譜-質譜接口溫度250 ℃；離子化能量70 eV；離子源溫度250 ℃；四級桿溫度180 ℃；MS掃描范圍m/z20～550。

數據處理：檢測的化合物與NIST.11 library相匹配，匹配度大于80(最大值為100)的鑒定結果予以確認；采用峰面積歸一化法對各化合物進行相對定量。

1.3.5 數據處理

實驗結果每組重復3次，數據采用Excel 2017、Origin 2018和IBM SPSS Statistics 22.0進行圖像繪制及處理。

2 結果與分析

2.1 大豆異黃酮的變化分析

由圖1可知，發酵0 h的豆清飲料中大豆苷、黃豆黃苷、染料木苷含量分別為(41.921±1.01)、(3.24±0.01)、(54.187±0) mg/kg，隨著發酵時間的延長，整體呈下降趨勢，經過微生物發酵22 h之后，大豆苷、黃豆黃苷、染料木苷含量減少至(17.613±1.00)、(0.039±0.07)、(21.983±0.07) mg/kg，下降率分別達到57.98%、98.79%、59.43%。發酵0 h的豆清飲料中大豆苷元、黃豆黃素、染料木素的含量為(10.643±0.30)、(3.273±0.01)、(6.945±1.01) mg/kg，隨著時間的延長，含量呈直線上升。發酵22 h大豆苷元、黃豆黃素、染料木素的含量增加為(22.552±1.02)、(8.842±0.07)、(33.013±0.21) mg/kg，上升率達到52.81%、62.98%、78.96%。從整體看，黃酮苷下降率為60.10%、黃酮苷元上升率為67.61%。本研究結果表明可以得到富含染料木素的豆清飲料。黃酮類化合物清除自由基能力和螯合活性的能力與其化學結構直接相關，染料木素比大豆苷元和黃豆黃素具有更高的抗氧化活性[10]。發酵可以將黃酮苷轉化為黃酮苷元，可能是乳酸菌產β-葡萄糖苷酶，MARAZZA等[11]研究發現鼠李糖乳桿菌CRL981產β-葡萄糖苷酶，能夠在豆奶發酵過程中增加生物活性異黃酮，發酵12 h時黃酮苷轉化為黃酮苷元的生物轉化率達到100%。ZHU等[12]發現產β-葡萄糖苷酶的鼠李糖乳桿菌和副干酪乳桿菌對大豆異黃酮苷元的富集具有很大的潛力，大豆苷元和染料木素的含量發酵后從4.6%提高到93.78%。在微生物發酵過程中，與不溶性纖維結合的黃酮類化合物被釋放出來，可以導致黃酮苷元含量的增加[13]。黃酮苷轉化為黃酮苷元不是單一的轉化方式，ZHU等[12]發現僅以β-葡萄糖苷酶活性作為轉化率篩選指標是不可靠的。在發酵過程中，大豆異黃酮總含量呈遞減的趨勢，主要是大部分黃酮在離解條件下，容易與氧氣結合，發生氧化反應，所以在過程中，出現含量的降低[14]。

a-大豆苷、染料木苷、黃豆黃苷；b-大豆苷元、黃豆黃素、染料木素；c-黃酮苷、黃酮苷元、總大豆異黃酮圖1 發酵過程中大豆異黃酮的含量Fig.1 Contents of soybean isoflavones at different fermentation time

2.2 大豆異黃酮的變化曲線擬合

用Origin 2018對豆清飲料中的大豆異黃酮與發酵時間進行曲線擬合，擬合結果見表3。根據以上擬合曲線，可以得到黃酮苷元達到的最高值的理論發酵時間。黃酮苷元含量與發酵時間之間的關系為：y=0.021 56x2+1.464 68x+21.030 53，對函數求導數得：y′=0.043 12x+1.464 68，隨著發酵時間的延長，黃酮苷元含量呈現一次函數的變化。同理，可以得到大豆苷、染料木苷、黃豆黃苷、大豆苷元、黃豆黃素、染料木素、黃酮苷的變化趨勢。

表3 發酵過程中大豆異黃酮含量變化擬合曲線Table 3 Fitting curve of soybean isoflavone content during fermentation

2.3 有機酸的變化分析

如圖2所示，發酵22 h時，丙酮酸的含量為0.000 g/L、乳酸(0.63±0.008) g/L、無水檸檬酸(2.672±0.002) g/L、富馬酸(0.12±0.02) g/L、琥珀酸(0.231±0.01) g/L。無水檸檬酸的含量占比約64%、乳酸占比約18%、琥珀酸12%、富馬酸占比約5%。無水檸檬酸占比重高存在以下原因，pH值的調節采用無水檸檬酸。乳酸占比重高主要是植物乳桿菌進行了檸檬酸代謝，自身通過2-羥基羧酸鹽轉運蛋白運輸檸檬酸鹽，檸檬酸鹽在檸檬酸裂解酶復合物催化下轉化為草酰乙酸鹽，再經草酰乙酸脫羧酶脫羧產生丙酮酸最后生成乳酸及芳香化合物。喬明武等[15]運用乳酸菌、酵母菌發酵豆清液，有機酸含量均有顯著性提高，檸檬酸達(1.207±0.005) g/L、乳酸(1.044±0.004) g/L。TU等[16]發現檸檬酸在發酵過程中變化不大，基本保持在1.1～1.3 g/L。FEI等[17]發酵豆清液36 h，酒石酸、乳酸、檸檬酸分別達到(1.03±0.04)、(6.21±0.01)、(0.52±0.0) g/L，與本研究結果一致。

在發酵過程中，乳酸菌經糖酵解途徑將原料中的還原糖降解成丙酮酸，丙酮酸在乳酸脫氫酶的作用下，直接被還原為乳酸，所以在發酵過程中，乳酸含量不斷增加，丙酮酸作為中間代謝產物，發酵過程中呈現動態變化，如圖2所示，在0～14 h時，丙酮酸含量檢測不到。檸檬酸是三羧酸循環的中間代謝產物，含量處于動態變化中，由于蘋果酸-乳酸發酵過程中乳酸菌將檸檬酸分解成丙酮酸、乙酸或者乳酸。琥珀酸在蘋果酸-乳酸途徑中，可通過部分丙酮酸氧化為乙酸和H+，H+再將延胡索酸還原得到琥珀酸[18]，處于動態平衡。

圖2 不同發酵時間有機酸含量變化Fig.2 Changes of organic acid content in different fermentation time

2.4 豆清飲料品質相關性分析

根據表4的品質指標之間的相關性分析表明，乳酸與琥珀酸、大豆苷、黃豆黃苷、染料木苷、黃酮苷、大豆苷元、染料木素、黃豆黃素、黃酮苷元呈顯著關系(r為0.848、-0.809、-0.628、-0.785、-0.794、0.718、0.671、0.802、0.781)，檸檬酸與富馬酸、琥珀酸、黃豆黃苷、黃豆黃素呈顯著關系(r為0.637、0.689、-0.803、0.760)，其中，染料木素與各種有機酸中的乳酸之間的相關性最高(r為0.802)。有機酸可以促進黃酮苷水解為黃酮苷元，乳酸可以促進染料木素的生成。研究發現乳酸水溶液濃度2.0 mol/L，黃酮苷水解率可達100%[19]。乳酸與檸檬酸的濃度相對比較高，所以其他有機酸的相關性比較小。

表4 豆清飲料品質指標之間的相關性分析Table 4 Correlation analysis of quality index of soybean whey beverage

大豆苷、黃豆黃苷、染料木苷、黃酮苷相互之間呈現極顯著正相關性(P<0.01)，大豆苷元、染料木素、黃豆黃素、黃酮苷元相互之間呈極顯著正相關(P<0.01)。黃酮苷與黃酮苷元呈現極顯著負相關(r為-0.987)。大豆異黃酮苷的變化與其組成的各個物質的變化呈顯著正相關，與黃酮苷元呈顯著負相關，可以得出黃酮苷元主要是由黃酮苷水解得到。

2.5 風味物質的變化分析

由表5可知，豆清液和豆清飲料共鑒定出37種化合物，包括醇類8種、烯烴類7種、酯類6種、醛類5種、酮類2種、酸類2種、芳香化合物2種、烷烴1種、其他類4種。由表6和圖3可知，不同發酵時間檢測的揮發性化合物有差別且總揮發性物質含量存在顯著差異(P<0.05)，隨著發酵時間的延長，其揮發性物質種類數量檢出呈先增加、后減少、再增加的趨勢。表6分析了不同時間中鑒定出不同化合物的種類與數量。從統計結果來看，豆清液中檢測出11種揮發性風味物質，主要是醇類與醛類[20]，大部分醇類和醛類物質是在大豆脂氧合酶的催化作用下，由亞油酸和亞麻酸氧化而形成的[21]。發酵至6 h時，烯烴類物質和酯類物質種類增加，發酵12 h時總計檢出24種揮發性物質，其中醇類、烯烴類、醛類和酯類物質占主要比例，發酵至22 h時檢出17種風味物質。

圖3 豆清飲料不同發酵時間風味物質含量變化Fig.3 Variation of flavor substance content in soybean whey beverage with different fermentation time

表5 豆清飲料的風味物質 單位：%Table 5 Flavor substance of soybean whey beverage

續表5

表6 豆清飲料揮發性化合物數量統計Table 6 Statistical analysis of volatile compounds in soybean whey beverage

由表5可知，豆清液中正己醇、1-辛烯-3-醇、正己醛、壬醛占主要比例，占比分別為18.79%、10.49%、9.40%、2.29%。這些都被描述為產生令人不快的味道、香氣，在乳酸菌的代謝作用下，不愉快的風味都被代謝到較低或檢測不到的水平，形成了新的風味酯類和醛類。豆清液中檢測到的呋喃物質2-戊基呋喃，它有一種豆類味，會導致豆制品的油脂味和豆類味，經過發酵之后，被微生物完全代謝。醛類由于其閾值低，且具有類脂肪香味及清新果香，是構成特征性風味的主要成分。壬醛有橘子和玫瑰的氣味，發酵22 h時，增長到0.64%。正辛醇、苯乙醇這些高級醇在酵母的氨基酸合成途徑中形成，適量的高級醇可以提高香氣的層次感和濃郁度。苯乙醇具有新鮮面包香、清甜的玫瑰樣花香，發酵6 h時，相對含量達到10.88%，發酵后期，相對含量減少至4.35%。主要是在發酵過程中，醛類物質可以被氧化或還原為各自的酸或醇。醇類物質與酸類物質形成酯類物質，隨著發酵時間的變化，苯乙醇反應生成丙酸-2-苯乙酯、丁酸苯乙酯、乙酸苯乙酯的含量也隨著增加。2-乙烯基-雙環-2-己烯在豆清飲料中占主要風味物質，從0.00%增加到23.48%，為豆清飲料提供香甜風味。酯類化合物是構成香氣的重要物質，酯類具有花、果香，對主體香型及風格具有重要的影響，乙酸苯乙酯會提供果香、花香、蜜糖及熱帶水果香氣、帶有酵母香的味道[22]，發酵6 h時達到14.67%，在整體風味中具有重要貢獻值。β-石竹烯具有淡的似丁香香味，主要用于配制精仿制品和定香劑，屬于天然等同香料和人造香料，可從丁香葉油、丁香莖油、肉桂葉油等物質中分離。環氧化蛇麻烯II是植物啤酒花球果提取精油中的成分之一，主要是原料中攜帶；酮類的風味通常是令人滿意的風味，例如，2-十一酮有油脂氣息，具有特有的類似蕓香的香氣，濃度低時具有類似桃子的香氣。1-辛烯-3-酮具有強烈的壤香、蘑菇香。發酵6、12 h時產生了丁烯酮，丁烯酮具有臭味，但是發酵完成時被微生物代謝。長葉松香芹醇、別香橙烯氧化物、喇叭烯氧化物、β-芹子烯、石竹素一般常見于植物提取物中，具有保濕，抗氧化、抑菌等功能特性。

3 結論

本研究以豆清液為原料，接種克魯維酵母、腸膜明串珠菌、鼠李糖乳桿菌發酵成豆清飲料，發酵22 h之后，大豆苷、黃豆黃苷、染料木苷含量減少至(17.613±1.00)、(0.039±0.07)、(21.983±0.07) mg/kg，大豆苷元、黃豆黃素、染料木素的含量增加為(22.552±1.02)、(8.842±0.07)、(33.013±0.21) mg/kg，在整個發酵過程中，黃酮苷下降率為60.10%、黃酮苷元上升率為67.61%，大豆異黃酮苷的變化與其組成的各個物質的變化呈顯著正相關，與黃酮苷元呈顯著負相關，黃酮苷元與之相反，可以得出黃酮苷元主要是由黃酮苷水解得到。發酵22 h時，丙酮酸的含量為0.000 g/L、乳酸(0.63±0.008) g/L、無水檸檬酸(2.672±0.002) g/L、富馬酸(0.12±0.02) g/L、琥珀酸(0.231±0.01) g/L，進行相關性分析，發現一定濃度的有機酸可以促進黃酮苷水解為黃酮苷元。豆清液發酵形成豆清飲料的過程中，共鑒定出37種化合物。在微生物的代謝作用下，豆清液中令人不快的味道、香氣正己醇、1-辛烯-3-醇、正己醛、壬醛被代謝到較低或檢測不到的水平，形成了新的具有花、果香風味酯類和醛類，生成具有抗氧化、抑菌等功能特性的風味物質。該研究可以為豆清飲料提供理論依據。