飼料中添加月桂酸單甘酯對尖吻鱸脂質代謝與肝臟功能的影響

張 慧，董宏標，孫彩云,3，陳 健，黃聰靈，李 勇，段亞飛，張家松

(1.河北農業大學海洋學院，河北秦皇島，066000；2.中國水產科學研究院南海水產研究所，農業農村部南海漁業資源開發利用重點實驗室，廣州 510300；3.水產科學國家級實驗教學示范中心(上海海洋大學)，上海 201306；4.陽江市水產技術推廣站，廣東陽江 529500；5.珠海市現代農業發展中心，廣東珠海 519070)

尖吻鱸(Latescalcarifer)屬尖吻鱸科，尖吻鱸屬，又稱金目鱸、盲鰽，主要分布于太平洋西部和印度洋海域，因其廣鹽性、生長速度快、無肌間刺、味道鮮美、營養價值高等優點，深受養殖戶和消費者的喜愛，是我國南方沿海地區重要的養殖對象之一[1-2]。隨著養殖集約化程度的不斷提高，生產上愈發追求低成本高產出，由此帶來的過度投餌、飼料能量過高或質量下降以及水質惡化等問題，易導致魚體脂肪代謝障礙，造成脂肪過度累積，進而影響肝臟功能，誘發代謝性疾病。本項目組前期在珠海市斗門區多家養殖場隨機抽檢尖吻鱸養殖成品魚發現，多數樣品患有不同程度脂肪肝，比例高達90%以上。脂肪代謝障礙在養殖生產上表現為生長緩慢、飼料系數升高、抗應激能力下降，尤其高溫季節還會引起養殖魚類的大批死亡，給生產造成巨大的損失，嚴重制約尖吻鱸養殖業的健康發展[3]。

當飼料中脂肪被消化和水解后，循環脂蛋白和非酯化脂質會通過脂蛋白受體、脂肪酸轉運蛋白等被肝細胞吸收和氧化[4-5]。而當脂質積累和脂質消耗之間處于不平衡狀態時就會導致脂質的過度沉積，加劇肝臟負荷與氧化損傷，影響機體肝臟功能。而營養與代謝調控是改善養殖魚類脂肪沉積的根本途徑[6]。目前，已有多種功能性添加劑被用于改善魚體脂質代謝，常見的如中鏈脂肪酸(MCFAs)[7-9]，它是類C8-C12的飽和脂肪酸，以辛酸(C8H16O2)、癸酸(C10H20O2)和月桂酸(C12H24O2)為代表，相較于長鏈脂肪酸(LCFAs)碳鏈更短，更容易被腸道吸收，具有獨特的消化吸收、轉運、代謝途徑[10-11]。月桂酸單甘酯(glycerol monolaurate, GML)，又名十二酸單甘酯，主要從椰子油等天然植物提取，是一種中鏈脂肪酸酯[12]，GML安全性非常高且廉價，常用為食品添加劑。已有研究發現，GML飼喂對提高川藏黑豬(Susscrofadomesticus)、肉雞等禽畜生長性能、消化能力和肌肉營養品質具有積極的作用[13-14]。此外，GML具有優良的乳化性，可以促進脂肪的消化吸收，進而促進肌肉脂肪酸含量的增加[15-16]。在水產動物中，GML能促進花鱸(Lateolabraxmaculatus)[17]、中華鱉(Pelodiscussinensis)[18]、大黃魚(Larimichthyscrocea)[19]等的營養吸收，增加生長速度，調控腸道健康，而其對魚類肝臟功能的影響尚未見報道。

本研究以尖吻鱸為實驗對象，分析GML對其臟器系數、脂質代謝與消化酶活性以及肝臟組織形態、抗氧化酶活性和血清生化指標的影響，以期為GML在促進魚類脂質代謝和肝臟代謝性疾病防治中的應用提供實驗依據和數據參考。

1 材料與方法

1.1 飼料制備

實驗用GML獲贈于廣東省脂類科學與應用工程技術研究中心?；A飼料為市售鱸魚配合飼料(珠海海龍生物飼料有限公司)。將GML溶于乙醇溶液和蒸餾水配置成母液，按每公斤飼料0 g、1 g、2 g和4 g的GML設為4個梯度，高壓噴壺均勻噴涂于飼料表面，經自然風干后，4℃冰箱中冷藏備用。

實驗用尖吻鱸體質量(442.727±54.423)g、體長(28.438±1.493)cm，購自廣東省珠海市某養殖場，共計200尾，水車運輸至珠海德洋水產養殖有限公司養殖基地，于室內水泥池(4 m×2.5 m×1 m)暫養，暫養密度為20 尾·m-3。穩定1周后，選取192尾體表無損傷、規格均勻尖吻鱸隨機分到16個水泥池(2 m×1.5 m×1 m)中。按0 g·kg-1(G0組、對照組)、1 g·kg-1(G1組)、2 g·kg-1(G2組)和4 g·kg-1(G4組)設置4個試驗組，每組4個重復，每個重復12尾魚，分別投喂對應飼料。養殖實驗進行8周，每日8∶00和17∶00各飽食投喂一次，上午投喂前池底吸污一次，日換水20%。暫養和養殖期間水溫(28.00±0.22)℃，pH 7.8～8.2，溶解氧≥7.0 mg·L-1，鹽度1.0～1.5，自然光周期。

1.3 樣品采集

經飼喂8周后取樣，取樣前停喂24 h，每個重復取1尾魚，合計每個處理組4尾魚。樣品魚經200 mg·L-1MS-222浸泡麻醉后，測量魚體長、體質量，再經1.5 mL無菌注射器尾靜脈取血，3 000 r·min-1離心10 min后收集血清，4℃保存，用于血清生化指標分析，此后，于冰盤上剖離內臟團與沉積脂肪進行稱重，取部分肝臟組織用于組織形態學分析，取剩余部分肝臟和腸道組織置于2 mL離心管中，液氮速凍過夜后-80 ℃保存，用于相關酶學檢測。

1.4 指標測定及方法

1.4.1 臟器系數

根據以下公式計算肝體比(hepatosomatic index, HSI)、臟體比(viscerosomatic index, VSI)、肥滿度(condition factor, CF)和腹脂率(intraperitoneal fat ratio, IPF)。

HSI(%)=Wh/W×100%

VSI(%)=Wv/W×100%

CF(%)=W/L3×100%

IPF(%)=Wi/W×100%

式(1)～式(4)中，W為魚體總質量(g)；Wi為腹脂質量(g)；Wh為肝臟質量(g)；Wv為魚內臟團質量(g)；L為體長(cm)。

1.4.2 肝臟組織切片制備及觀察

肝臟組織切片的制作及測定參照區又君等[20]的方法進行：取1/3新鮮肝臟，用0.86%的生理鹽水沖洗干凈后，放入4%多聚甲醛溶液中固定24 h以上。逐級脫水之后，按次序進行透明、石蠟包埋、切片(厚度為5 μm)、HE染色、脫水、透明、中性樹脂等步驟。顯微鏡觀察肝臟切片，并進行拍照。每個試驗組隨機選取5張400倍鏡下的組織切片，每張隨機選取5個視野通過圖像統計軟件Image-Pro Plus 6.0 統計肝細胞面積、密度和直徑。

1.4.3 肝臟抗氧化酶、脂質代謝酶和腸道消化酶活性測定

酶學指標均采用南京建成生物工程研究所相關試劑盒測定。分別稱取肝臟和腸道組織樣品0.08～0.10 g，按照質量(g)∶體積(mL)=1∶9的比例加入預冷好的0.85%生理鹽水，冰浴勻漿，10 000 r·min-1離心10 min，取上清液進行活性測定。其中，肝臟抗氧化酶測定總抗氧化能力(T-AOC)、過氧化氫酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)和還原型谷胱甘肽(GSH)活性，脂質代謝酶測定肝臟中脂蛋白脂酶(LPL)、肝脂酶(HL)和總脂酶(LPL+HL)活性，腸道消化酶測量淀粉酶(AMS)、脂肪酶(LPS)和蛋白酶(PRS)活性。

1.4.4 血清生化指標測定

血清生化指標分析血清中總蛋白(TP)、甘油三酯(TG)、球蛋白(GLB)、白蛋白(ALB)、總膽固醇(TC)、低密度脂蛋白膽固醇(LDL-C)、高密度脂蛋白膽固醇(HDL-C)、谷丙轉氨酶(ALT)和谷草轉氨酶(AST)等指標。按照深圳邁瑞生物醫療電子股份有限公司商業試劑盒(深圳邁瑞生物醫療電子股份有限公司，中國)檢測方法，全自動生化分析儀(BS200)檢測。

1.5 數據統計與分析

數據以平均值±標準差(mean ± SD)表示，運用SPSS 23.0軟件進行單因素方差分析(one-way ANOVA)。數據間若存有顯著性差異，則采用Duncan’s法進行組間多重比較，顯著性水平設置為P<0.05。

2 結果與分析

2.1 飼料中添加GML對尖吻鱸臟器系數的影響

與對照組相比，添加GML組尖吻鱸VSI、HSI、CF、IPF均有所下降，且隨著添加量的增加呈現先降低后升高的趨勢，其中G2組VSI、HSI、IPF均顯著低于對照組(P<0.05)(表1)。

表1 飼料中添加GML對尖吻鱸臟器系數的影響

2.2 飼料中添加GML對尖吻鱸肝臟組織學形態的影響

與對照組肝細胞相比，各試驗組肝細胞面積分別降低了10.70%、68.35%、60.13%，肝細胞直徑分別降低了27.60%、38.22%、6.91%，而肝細胞密度(單位面積內的細胞數)則相反，分別增加了3.10%、13.92%、0.79%(P<0.05)(表2)。肝臟組織學觀察發現(圖1)，各處理組肝細胞內均有不同程度空泡化現象。對照組中細胞核發生明顯偏移，呈現出較多細胞透明空泡化的現象。添加GML組肝細胞雖仍存在空泡化現象，但空泡化現象得到緩解，其中G2組改善效果最為明顯。

表2 飼料中添加GML對尖吻鱸肝細胞密度、面積和直徑的影響

圖1 飼料中添加GML對尖吻鱸肝臟組織結構的影響(HE，×400)

2.3 GML對尖吻鱸肝臟抗氧化能力的影響

拌喂GML后，各試驗組肝臟中CAT、SOD的活性及GSH含量和T-AOC較對照組均有顯著上升(P<0.05)(圖2)，其中G2組最高，且隨著GML添加量的增加，呈先增加后下降的趨勢；相反的，對照組MDA濃度顯著高于試驗組(P<0.05)，隨著GML添加劑量的提升MDA逐漸降低，但各試驗組間無顯著性差異(P>0.05)。

2.4 GML對尖吻鱸腸道消化酶活性的影響

腸道消化酶活性結果如圖3所示，與對照組相比，各試驗組腸道AMS、LPS和PRS活性均呈上升趨勢，其中G2組顯著高于其他組(P<0.05)。

圖3 飼料中添加GML對尖吻鱸腸道消化酶活性的影響

2.5 GML對尖吻鱸肝臟脂質代謝酶活性的影響

肝臟脂質代謝酶活性結果如圖4所示，飼料中添加GML后，尖吻鱸肝臟中LPL、HL和LPL+HL活性均顯著高于對照組(P<0.05)，其中G2組最高，且隨著GML添加量的增加，呈先增加后下降的趨勢。

圖4 飼料中添加GML對尖吻鱸脂質代謝酶活性的影響

2.6 GML對尖吻鱸血清生化指標的影響

如表3所示，對照組血清中TP、GLB、TG、TC、和LDL-C含量顯著高于試驗組(P<0.05)，ALT活性則相反，而ALB、AST活性各處理組無顯著性差異。各試驗組間，G2組HDL-C顯著高于其他組(P<0.05)，其他組別差異不顯著。

表3 飼料中添加GML對尖吻鱸血清生化指標的影響

3 討論

研究發現，魚類脂質代謝過程會受到多方面因素的影響，如養殖條件、養殖模式和飼料營養水平等[23]。近幾年尖吻鱸高密度集約化養殖常發生代謝性疾病，養殖魚類脂質代謝過程受阻造成脂肪過度累積，進而影響肝臟健康。而研究表明，通過拌喂中短鏈脂肪酸可以調節機體脂質代謝機能，且在畜禽養殖中已有相關報道[10,14,21-22]。本研究發現，與對照組相比，飼料中添加不同水平的GML可以顯著降低魚體VSI、HSI、IPF比率。臟器系數是反映機體臟器濕重與單位體質量的比值，其數值變化從側面反映了臟器內脂肪含量的變化，因此VSI、HSI、IPF數值的減少有利于緩解魚體內脂肪堆積，改善魚體健康。已有研究也有類似結果，如拌喂GML可降低蛋雞、肉雞和真鯛(Pagrusmajor)中VSI、CF的比率，減少體內過剩的脂肪沉積[21,24-25]。

肝臟脂肪變性與沉積極易造成肝損傷與炎癥[4]。肝細胞會因細胞內脂肪滴存在，導致細胞核發生偏移，進而造成肝細胞腫脹，因此呈現出較多細胞透明空泡化的現象。肝臟組織形態學分析顯示，拌喂GML組中空泡化現象較對照組有明顯緩解。結合肝臟的脂質代謝酶活性分析及血清肝功能相關指標變化亦可表明，拌喂GML可改善肝臟功能。本研究表明，試驗組肝臟脂質代謝酶包括HL、LPL、HL+LPL活性均顯著高于對照組，血清中TG、TC、LDL-C低于對照組。普遍認為，血清中TC和TG是機體儲存能量的主要形式，是反映機體脂質代謝水平的重要指標[26]。而LPS可以催化TG的水解，改善機體脂質沉積[27]。LDL-C和HDL-C是肝臟中TC轉運到其他組織的載體，其含量的變化可以反映機體脂質代謝狀況[28]。脂肪酸合成酶(FAS)是機體脂肪酸生物合成的關鍵酶，是催化脂肪合成的最后一步，而LPL和HL可以分解TG，并水解為甘油及游離脂肪酸(FFA)，從腸道進入肝臟后，無需肉堿棕櫚?；D移酶轉運便可直接進入細胞線粒體進行β-氧化，進而為機體提供能量[27]。因此LPL是TG分解FFA和甘油的限速酶，當LPL活性升高時機體內TG的含量會相應的減少，而相應的試驗組中血清TG較對照組含量顯著減少。這些結果與對黃顙魚(Pelteobagrusfulvidraco)[28]和小鼠(Musmusculus)[29]的研究結果一致。研究表明，黃顙魚飼料中添加富含GML的黑水虻(Hermetiaillucens)油脂后，肝臟中LPL mRNA的相對表達量呈現先升后降的趨勢，小鼠高脂飼料中添加GML顯著降低了血清中TG和TC的含量。這些結果都證明了GML作為一種新型生長促進劑提高飼料水平的潛力。原因可能是GML的添加可以有效地影響肝臟中中鏈脂肪酸的合成和代謝，導致肝臟中過氧化物酶體增殖劑激活受體(pparγ)和3-羥基-3-甲基-戊二酰輔酶A還原酶(hmgcr)的基因表達水平顯著降低[30-31]。同時SHINOHARA等[32]發現，中鏈脂肪酸也可以通過促進長鏈脂肪酸的內源性氧化，調節肝臟脂質代謝，抑制肥胖。綜合各研究表明，飼料中添加GML可以有效地促進脂肪酸氧化、調節TG平衡、緩解尖吻鱸肝細胞空泡化、抑制脂肪的堆積。GML可以顯著改善機體脂質沉積，緩解肝臟損傷，但是具體的調節機制仍未完全明確，有待進一步研究分析。

血清肝功能水平和肝臟抗氧化能力均反應了魚體肝臟健康狀況[33]。本實驗結果顯示，試驗組血清內ALT活性顯著高于對照組，GLB含量變化則與之相反，而AST活性在各組之間無顯著性差異。ALT和AST是肝臟中重要的氨基轉移酶，當肝臟受到損傷時，其會滲透入血液中，所以其活性的變化反映了機體的肝臟健康狀況[34]。GLB則是反映機體免疫水平高低的代表性指標之一[35]。研究發現，拌喂GML 8周后，相對于對照組，G2組尖吻鱸肝臟的T-AOC、SOD、CAT的活性和GSH含量顯著提高，且MDA濃度明顯降低。T-AOC、SOD、CAT、MDA、GSH是抗氧化體系中酶體系的主要組成成分，其中SOD、CAT、GSH可以通過清除機體內的自由基，保護重要的細胞大分子和細胞器免受氧化損傷的影響，維持魚體正常的新陳代謝過程。MDA作為過氧化脂質經過降解之后的產物，對細胞的組織有一定的損害作用，其含量的變化反映了機體的細胞損傷程度[36]。實驗結果表明，GML有改善肝臟損傷，提高抗氧化能力的作用。這一結果與孫彩云等[17]和劉夢蕓等[21]的結果類似，說明GML可以有效地緩解魚體應激狀態，減少肝組織損傷，提高尖吻鱸的抗炎能力。

除此之外，中鏈脂肪酸還可以改善魚體的消化能力[37]。最新研究表明，飼料中添加GML可以顯著提高斑馬魚腸道中LPS、AMS的活性，同時也有報道GML對肉雞的腸道健康有益，有利于其從日糧中吸收能量和營養[37-39]。在本研究中，拌喂2 g·kg-1GML可顯著提高尖吻鱸腸道中AMS、LPS和PRS的活性，與上述結果相符。此外，在對大西洋鮭(Salmosalar)[40]、豬[41]和大鼠(Rattusnorvegicus)[42]等的研究報道發現，當飼料中添加中鏈脂肪酸和相應的甘油時，也會使其消化率和營養利用率提高。原因可能與中鏈脂肪酸被吸收后會刺激膽囊收縮素的產生有關，而膽囊收縮素正是位于胃腸組織中能夠引起脂肪酶和蛋白酶分泌的一種多肽激素[37]。GML作為中鏈脂肪酸單甘油酯，可以在酯鍵的保護下深入到胃腸內部[43]，使得GML能有效促進魚體腸道的消化功能。