無籽刺梨渣膳食纖維的羧甲基化改性及性質

蘇靖程，李 晗，范方宇

（西南林業大學生命科學學院，云南昆明 650224）

無籽刺梨（Rosa sterilis）為薔薇科薔薇屬落葉灌木植物，具有重要的藥用價值與食用價值，含豐富的黃酮、維生素C、超氧化物歧化酶等營養物質[1-2]。但無籽刺梨加工過程會產生40%～50%的果渣，大部分果渣被當作廢棄物丟棄，造成嚴重的資源浪費和環境污染，如何利用無籽刺梨殘渣是無籽刺梨加工產業的一項重要課題。無籽刺梨殘渣中的膳食纖維（Dietary Fiber，DF）含量高，在食品和醫藥領域具有很好的應用價值，可降低機體低密度脂蛋白膽固醇含量[3]。高活性DF 更活躍，在功能性質方面有更好的應用，攝入高活性DF 對肥胖癥、高血壓、高血脂等疾病有預防和治療作用[4]。目前傳統方法提取的DF 活性不高，因此本文采用化學改性中的羧甲基化修飾增強DF 活性，以提高膳食纖維生物活性使其應用范圍更廣，其中，化學改性引入基團修飾DF 結構，改善DF 性能，以及能提高生物活性的優點使其成為研究熱點。羧甲基化修飾是將DF 置于堿性環境發生溶脹，再與一氯乙酸發生醚化反應，將羧甲基基團引入DF 的一種分子修飾方法，該法能有效改善DF的生物活性[5]。

不同比例的可溶/不溶性膳食纖維也優于單獨成分，如曾榮妹等[6]報道了刺梨中SDF 含量約為IDF的1/2。而研究普遍認為，可溶性膳食纖維（Soluble Dietary Fiber，SDF）與不溶性膳食纖維（Insoluble Dietary Fiber，IDF）混合后，SDF/IDF 比值接近1:2的總膳食纖維（Total Dietary Fiber，TDF）可作為良好的功能性食品添加劑使用。化學改性DF 在原有基礎上各項性質均有提高，混合后的羧甲基膳食纖維預期可以獲得良好的性能，目前尚未見此方面的研究。

基于此，本研究以無籽刺梨殘渣為原料制備了羧甲基化可溶性膳食纖維（Carboxymethylation Soluble Dietary Fiber，CSDF）和羧甲基化不溶性膳食纖維（Carboxymethylation Insoluble Dietary Fiber，CIDF），并將CSDF 與CIDF 按照不同比例混合，研究改性前后與改性后不同混合比例性能差異，旨在為無籽刺梨渣膳食纖維功能化提供參考依據。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

無籽刺梨 產自云南昆明阿子營；無水乙醇、亞硝酸鈉 天津市致遠化學試劑有限公司；氫氧化鈉、冰醋酸、鹽酸、硫酸 云南楊林工業開發區汕滇藥業有限公司；葡萄糖 天津市鼎盛鑫化工有限公司；以上試劑均為分析純。

UV-2600 型紫外可見分光光度計 日本島津儀器有限公司；5804R 型臺式冷凍離心機 德國艾本德股份公司；Brookfield 型旋轉式黏度計 美國博勒菲公司；TM-3000 型掃描電鏡 日本日立高新技術公司；IR Prestige-21 型傅立葉變換紅外光譜儀 日本島津儀器公司；200F3 型差示掃描量熱儀 德國耐馳儀器制造有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 無籽刺梨渣膳食纖維制備 參考李晗等[7]方法制備無籽刺梨可溶性膳食纖維（Rosa sterilisSoluble Dietary Fiber，RSDF）和無籽刺梨不溶性膳食纖維（Rosa sterilisInsoluble Dietary Fiber，RIDF）。

1.2.2 無籽刺梨渣膳食纖維羧甲基化改性條件 參照文獻[8]制備羧甲基化無籽刺梨可溶/不溶性膳食纖維，略有修改。其中CSDF 羧甲基化改性工藝條件：乙醇濃度55%、NaOH 濃度15%、堿化時間80 min、一氯乙酸濃度10%、醚化溫度60 ℃、醚化時間2.5 h，其取代度為0.60±0.02；CIDF 羧甲基化改性工藝條件：乙醇濃度35%、NaOH 濃度20%、堿化時間60 min、一氯乙酸濃度25%、醚化溫度80 ℃、醚化時間2.5 h，取代度為0.53±0.02。

1.2.3 羧甲基取代度測定 參照江連洲等[9]方法測定。稱取0.300 g 羧甲基化樣品于150 mL 錐形瓶，加入2 mol/L 的HCl 溶液50 mL，37 ℃、120 r/min振蕩3 h 后過濾。70%甲醇溶液洗滌至無Cl-離子（滴加AgNO3檢測濾液）。將樣品溶于50 mL 0.5 mol/L的NaOH 溶液，沸水浴至溶液變透明，加入兩滴酚酞（10 g/L）為指示劑后，立即用0.1 mol/L HCl 標準溶液滴定剩余NaOH，紅色剛好褪去為滴定終點，按式（1）和式（2）計算羧甲基取代度：

式中：DS為樣品羧甲基取代度；X 為每克羧甲基膳食纖維所需HCl 摩爾數；CNaOH為NaOH 溶液濃度，0.5 mol/L；VNaOH為NaOH 溶液體積，50 mL；CHCl為HCl 溶液濃度，0.1 mol/L；VHCl為滴定用HCl溶液體積，mL。

1.2.4 理化性質測定 對RSDF、RIDF、CSDF、CIDF、RTDF1/2、 CTDF1/1、 CTDF1/2、 CTDF1/3、 CTDF1/4、CTDF1/5理化性質及結構表征進行測定和對比分析。其中RTDF1/2指可溶性膳食纖維與不溶性膳食纖維的混合物，CTDF1/2為羧甲基化可溶/不溶性膳食纖維的混合物，下標為兩者的比例1:2。

1.2.4.1 膨脹力 參照Rodríguez-Gutiérre 等[10]方法測定。取0.300 g（m1）樣品于10 mL 量筒中，讀取體積V1，加入8 mL 蒸餾水，振蕩均勻，室溫靜置12 h，讀取樣品自由膨脹體積V2。按公式（3）計算膨脹力。

1.2.4.2 持水力/持油力 參照Zhang 等[11]方法測定。取0.300 g（m1）樣品于50 mL 離心管中，加入8 mL蒸餾水/植物油，振蕩，室溫靜置12 h，5000 r/min 離心10 min，棄上清液/上層油，稱取剩余殘渣質量（m2）。按式（4）計算持水力/持油力。

1.2.4.3 溶解性 參照Cheng 等[12]方法測定。取0.300 g（m1）樣品于100 mL 燒杯中，加入30 mL 蒸餾水，攪拌，75 ℃水浴1 h，5500 r/min 離心15 min，收集上清液，105 ℃烘箱干燥至恒重，稱取殘留物質量（m3）。按式（5）計算溶解性。

1.2.4.4 黏度 稱取一定量樣品，配制質量分數2%的懸濁液，1500 r/min，25 ℃攪拌1 h 后用旋轉式黏度計測定黏度。

1.2.4.5 吸濕性 參照龔衛華等[13]方法測定。將一定量的干燥樣品置于恒重的稱量皿中，稱重（m4），放入溫度25 ℃、相對濕度75%的恒溫培養箱中，每隔1 h 對樣品（m5）進行稱重。按公式（6）計算吸濕率。

參照陶建明等[14]方法，對樣品吸濕率進行二項式回歸擬合得吸濕方程式（7）。對方程進行一階求導得吸濕速率方程式（8）。初始吸濕速率r（0）=b；r=0 時達到吸濕平衡，由式（8）得吸濕平衡時間，由式（7）得最大平衡吸濕率。

式中：W 為吸濕率，%；t 為時間，h；r 為t 時刻的吸濕速率，g/h；a、b、c 為吸濕常數。

1.2.4.6 陽離子交換力 參照齊慧等[15]方法測定。稱取0.500 g（m）樣品于150 mL 錐形瓶中，加入0.1 mol/L的HCl 溶液20 mL，混勻，4 ℃環境靜置過夜。用0.2 mol/L 的NaOH 溶液（V3）滴定，同時做試劑空白（V0）。記錄滴定時溶液pH 隨NaOH 溶液體積消耗產生的變化，作VNaOH–pH 關系圖。按式（9）計算陽離子交換力。

1.2.4.7 亞硝酸鹽吸附力 參照GB 5009.33-2016《食品中亞硝酸鹽與硝酸鹽的測定》中分光光度法測定，略有修改。稱取0.400 g 樣品于150 mL 錐形瓶中，加入200 μg/mL 的NaNO2溶液50 mL。以1 mol/L的HCl 和0.1 mol/L 的NaOH 分 別 調pH 至2.0 和7.0（模擬胃環境與小腸環境），混勻。37 ℃、120 r/min振蕩吸附120 min，過濾。取0.1 mL 濾液于具塞刻度試管中，加入1 mL 的0.4%對氨基苯磺酸溶液，混勻，靜置5 min 后加入0.2%的鹽酸萘乙二胺溶液0.5 mL，加蒸餾水至刻度，混勻，靜置15 min。波長538 nm 處測吸光度，由標準曲線y=0.0278x+0.0021，R2=0.9997，吸光值為縱坐標，NO2-含量（mg）為橫坐標計算NO2-含量，按式（10）計算NO2-吸附力[12]。

1.2.4.8 葡萄糖吸附力 采用蒽酮比色法[16]測定。稱取0.500 g 樣品于150 mL 錐形瓶中，加入1 mg/mL的葡萄糖溶液50 mL，混勻。37 ℃、120 r/min 振蕩吸附6 h，過濾。取0.1 mL 濾液于具塞刻度試管中，加蒸餾水至2 mL，混勻后加入6 mL 蒽酮-硫酸溶液（0.100 g 蒽酮用80%硫酸溶解，并定容至100 mL棕色瓶），混勻，沸水浴15 min，冷卻至室溫。波長625 nm 處測定吸光度，由標準曲線y=0.0052x–0.0101，R2=0.9998。吸光值為縱坐標，葡萄糖含量（mg）為橫坐標計算得濾液中葡萄糖含量。按公式（11）計算葡萄糖吸附力。

1.2.5 結構表征

1.2.5.1 傅里葉紅外光譜（Fourier Transform Infrared，FTIR）分析 采用溴化鉀壓片法[9]，掃描范圍4000～500 cm-1。

1.2.5.2 掃描電鏡（Scanning Electron Microscopy，SEM）分析 采用掃描電鏡對樣品的顯微結構進行分析，用5000 倍放大的15.0 kV 加速電壓對樣品進行檢測。

1.2.5.3 差示掃描量熱法（Differential Scanning Calorimetry，DSC）分析 參考龔衛華等[13]方法，稱取5～10 mg 樣品于鋁制坩堝中，以空坩堝為空白對照，掃描溫度范圍35～250 °C，升溫速度10 °C/min，氮氣流速20 mL/min。

1.3 數據處理

每組試驗重復3次，結果以（平均值±標準差）表示。采用軟件SPSS 20.0 進行Tukey 顯著性檢驗，軟件Origin 2018 作圖。

2 結果與分析

2.1 羧甲基化無籽刺梨渣膳食纖維性質

由表1可知，CSDF 的膨脹力、持水力、持油力較改性前分別顯著提高了8.15、4.74、0.69 倍（P＜0.05），CIDF 則分別顯著提高了14.64、4.75、0.82 倍（P＜0.05）。與Park 等[17]報道相符，這與羧甲基親水功能有關，膨脹力、持水力、持油力的提高可改善膳食纖維功能性質。RSDF、CSDF 溶解性無顯著性差別（P＞0.05），因為改性前溶解性已經很高，羧甲基化對溶解性無影響；RIDF 羧甲基化后溶解性提高了1.25 倍（P＜0.05），與這是由于羧甲基化過程中，不溶性的部分多糖通過醚化作用，親水性得到改善，提高了溶解性[11,18]。隨CSDF/CIDF 混合比例增加，CTDF膨脹力、持水力、持油力均為先增大后減小。CTDF1/2膨脹力、持水力最高，但與CTDF1/3相比僅高了3.48%（P＞0.05）、5.89%（P＜0.05）。持油力越高，其油脂、膽固醇、膽酸鹽吸附力越好，表中CTDF1/4持油力最高，為4.85±0.14 g/g，但與CTDF1/3相差不大（P＞0.05）；與CTDF1/3相比時溶解性和黏度均下降。要使膳食纖維的功能特性得到綜合利用，CSDF/CIDF 混合比例為1:2、1:3 時效果較好。

表1 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的性質Table 1 Properties of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

2.2 羧甲基化無籽刺梨渣膳食纖維吸濕性

圖1、表2 分別為無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的吸濕曲線和吸濕特性。圖1 可見，隨時間增加，改性前后的膳食纖維吸濕率均呈先增加后趨于平衡，吸濕速率則隨時間增加逐漸減小。圖1（a）中經羧甲基化改性后的CSDF、CIDF 吸濕率均得到不同程度的提高。這是因羧甲基化過程引入了親水基團，樣品更容易與空氣中的水分子結合，增大了吸濕率[19]。

圖1 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的吸濕率Fig.1 Hygroscopic curve of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

表2可知，CSDF、CIDF 初始吸濕速率分別為2.58、1.77 g/h，較RSDF、RIDF 分別提高了1 倍、1.39倍。根據陶建明等[14]報道，吸濕率能直接影響膳食纖維在環境中的吸潮性能，對功能性質及存放時間造成影響。CTDF 初始吸濕速率、吸濕平衡時間和最大吸濕率隨CSDF/CIDF 比例增加而逐漸減小。與CTDF1/1相比，CSDF/CIDF 比例1:2～1:5 時，最大吸濕率分別降低了3.43%、5.36%、7.03%、8.70%。表明吸濕率與CSDF 含量有關。CSDF 含量減少，能與水分子結合的極性基團數量減少，導致吸濕率下降。

表2 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的吸濕特性Table 2 Hygroscopic properties of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

2.3 羧甲基化無籽刺梨渣膳食纖維陽離子交換性質

圖2為VNaOH–pH 關系圖，圖3 為無籽刺梨渣膳食纖維改性前后陽離子交換力。圖2（a）中，pH 達到12 后，變化趨于平衡。此時CSDF、CIDF 陽離子交換力分別為1.00、0.79 mmol/g，較改性前分別提高了0.25 倍、0.98 倍。Zhang 等[11]研究發現，羧基和羥基酚基是影響陽離子交換力的主要官能團，能與Na+、K+、Ca2+等發生可逆交換，起到降血壓的作用。膳食纖維具有較強的陽離子交換功能，能與腸道中的Na+和K+進行交換，促進其從尿液和糞便中排出，從而降低血液中的Na+/K+，產生降血壓效果。因此，羧甲基含量增加，CSDF、CIDF 的陽離子交換力增強，降血壓能力得以提高。

圖2 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的陽離子交換力VNaOH–pH 關系圖Fig.2 VNaOH – pH relationship between cation exchange capacity of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

圖3 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的陽離子交換力Fig.3 Cation exchange capacity of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

圖2與圖3 可見，隨NaOH 體積增加，CSDF、CIDF、CTDF1/1～1/5的pH 上升速度分別低于RSDF、RIDF、RTDF1/2。CSDF/CIDF 混合比例增加至1:3時，陽離子交換力最大，為1.20 mmol/g，比CTDF1/2高了20%。表明CSDF/CIDF 混合比例1:3 時，陽離子交換力最好。

2.4 羧甲基化無籽刺梨渣膳食纖維亞硝酸鹽吸附性

圖4為無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的NO2-吸附力。據Song 等[20]報道，膳食纖維的攝入能吸附人體內NO2-，防止過量NO2-損傷人體機能。圖4可見，模擬胃腸環境中，CSDF、CIDF 的NO2-吸附力均增強。CSDF、CIDF 在胃中的NO2-吸附力分別為22.33±0.13、20.31±0.12 mg/g，較改性前分別顯著提高了11.09%、12.27%（P＜0.05）；CSDF、CIDF 在腸中的NO2-吸附力分別為8.03±0.14、7.28±0.14 mg/g，較改性前分別顯著提高了56.84%、68.52%（P＜0.05），腸環境NO2-吸附力低于胃，這與Zheng 等[21]的研究結果類似。這是因腸環境中pH 高于胃環境，膳食纖維表面負電荷密度更多，與NO2-排斥反應增大。改性后的膳食纖維較改性前具有結構蓬松，孔隙更大和更多的羧甲基基團[12]，該結構特點增強了CSDF、CIDF 與NO2-之間的作用，提高對NO2-吸附量。圖4（b）可見，隨CSDF/CIDF 混合比例增加至1:3，胃腸環境中CTDF 對NO2-的吸附力增加；比例高于1:3 后，吸附力顯著下降（P＜0.05）。CTDF1/3的NO2-吸附力最高（P＜0.05），胃中為23.62±0.15 mg/g，腸中為10.08±0.22 mg/g。表明CSDF/CIDF 混合比例1:3時，對NO2-吸附力最好。

圖4 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的亞硝酸鹽吸附力Fig.4 Nitrite adsorption capacity of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

2.5 羧甲基化無籽刺梨渣膳食纖維葡萄糖吸附性

圖5為無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的葡萄糖吸附力比較。據Luo 等[22]報道，膳食纖維對葡萄糖的吸附可有效控制餐后體內血糖水平，間接調控機體脂質代謝過程，對預防和輔助治療糖尿病具有一定作用。據林良美[16]研究，SDF 與水溶后形成黏膜，延緩小腸對食物中營養成分的吸收速率從而有效降低餐后血糖；IDF 則利用其特殊的網狀結構吸附葡萄糖，降低葡萄糖被小腸消化吸收的速度，達到降低血糖的目的，但效果不及SDF；而TDF 中包括了SDF 和IDF所具備的功能力，因而CTDF1/3的吸附葡萄糖的能力最好。圖5 可見，CSDF、CIDF 葡萄糖吸附力較改性前顯著提高（P＜0.05），幾種混合比例的CTDF 吸附力均顯著高于RTDF1/2（P＜0.05）。表明羧甲基的引入增強了膳食纖維對葡萄糖吸附力。此外，隨CSDF/CIDF 混合比例增加至1:3，葡萄糖吸附力顯著增加（P＜0.05），為52.54±0.51 mg/g；其次是CTDF1/2，為47.59±0.80 mg/g，較CTDF1/3顯著降低了9.42%（P＜0.05）。混合比例不同，樣品結構有差異，對吸附力的影響也不同。CSDF/CIDF 混合比例1:3 時，葡萄糖吸附力最好。

圖5 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的葡萄糖吸附力Fig.5 Glucose adsorption capacity of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

2.6 FTIR 分析

圖6為無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的紅外光譜圖。圖6（a）可見，3426 cm-1處表現出較寬的拉伸強烈特征峰，與N-H 或O-H 的伸縮振動有關[23]，CSDF、CIDF 在3426 cm-1處峰的強度分別高于RSDF、RIDF，表明CSDF 和CIDF 中-OH 含量更多。2921 cm-1處是由C-H 伸縮振動引起的吸收峰，RIDF、CIDF 在此處的峰強分別略高于RSDF、CSDF，這是因為RIDF、CIDF 中含有較多木質素、纖維素[24]。1614 cm-1附近為羧甲基中C=O 的非對稱振動吸收峰，1415 cm-1處為C=O 的對稱振動吸收峰，1323 cm-1處為O-H的面內變角振動吸收峰[25]。這幾個峰是羧甲基的特征吸收峰，圖6（a）中，CSDF、CIDF 在這幾個峰的強度明顯增大，表明羧甲基基團被成功引入，CSDF、CIDF 羧甲基化成功。圖6（b）可見，CSDF/CIDF混合比例不同，羧甲基特征吸收峰強度也有所不同。1614 cm-1處峰強度大小為CTDF1/2＞CTDF1/3＞CTDF1/4＞CTDF1/1＞CTDF1/5，表明了混合膳食纖維羧甲基取代度的大小。

圖6 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的紅外光譜圖Fig.6 Infrared spectra of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

2.7 SEM 分析

圖7（a）、圖7（b）、圖7（e）可見，RSDF、RIDF、RTDF1/2結構緊密，表面較為平整，呈塊狀分布，顆粒較少。而CSDF、CIDF 經羧甲基化改性后，其形態結構發生變化，結構變疏松，孔隙變大；表面粗糙且觀察到有大量褶皺和片狀物質。羧甲基引入CSDF、CIDF 內部的堿化過程中，纖維素和半纖維素被破壞，引起表觀形態發生的變化[26]。圖7（e）～圖7（j）可見，CSDF/CIDF混合比例1:2～1:4 時，CTDF 表面的褶皺、孔洞和片狀物質更多，結構完整性被破壞，物質本身孔隙增加，表面積增大，利于吸附，對樣品活性和性能產生積極影響[27]。

2.8 DSC 分析

圖8（a）可見，經羧甲基化改性的膳食纖維貯藏穩定性更好。CSDF 熱溶解溫度較RSDF 提高了3.52%，為147 ℃；CIDF 熱溶解溫度較RIDF 提高了51.43%，為159 ℃，表明羧甲基的引入提高了熱穩定性。這是因為CSDF、CIDF 中游離的羥基被羧甲基取代[23]，引入羧甲基基團，內部結構發生改變，這與DSC 分析結果相符。圖8（b）可見，RTDF1/2、CTDF1/2的熱溶解溫度分別為123 和140 ℃，CTDF1/2比RTDF1/2提高了13.82%。此外，CSDF/CIDF 混合比例為1:1～1:3 時，CTDF 熱溶解溫度隨混合比例的增加逐漸升高；混合比例1:3 時，CTDF1/3熱溶解溫度達到最高，為145 ℃。與CTDF1/3相比，CTDF1/4和CTDF1/5熱溶解溫度分別降低了12.41%、16.55%。推測這是因CSDF、CIDF 本身組成結構不同，CSDF 包括了羧甲基化后果膠、寡糖、可溶性半纖維素等物質，CIDF包括羧甲基后的纖維素、半纖維素和木質素等物質，所以各自發揮的功能存在差異，CSDF/CIDF 按不同比例混合時，對兩者產生的協同作用有一定影響，隨著CIDF 量的增加，CSDF 占比逐漸減小，致使熱溶解溫度在CSDF/CIDF 比例高于1:3 后降低，該現象說明CTDF1/3熱穩定性最強，貯藏穩定性及應用范圍更好。

圖8 無籽刺梨渣膳食纖維改性前后的DSC 曲線Fig.8 DSC curves of Rosa sterilis pomace dietary fiber before and after carboxymethylation modification

3 結論

通過羧甲基法對RSDF 與RIDF 改性，研究改性前后及CTDF 以1:1～1:5 混合比例的性質，主要結論如下：

a.對比改性前，CSDF、CIDF 膨脹力、持水力、持油力、溶解性、黏度、吸濕性均顯著提高（P＜0.05）。改性后CSDF、CIDF 陽離子交換力提高了1.25 倍、1.98 倍。CSDF、CIDF 對NO2-的吸附力在胃中顯著提高了11.09%、12.27%（P＜0.05）；在腸環境中對NO2-的吸附力較改性前顯著提高了56.84%、68.52%（P＜0.05）。CSDF、CIDF 葡萄糖吸附力較改性前顯著提高了65.28%、115.55%（P＜0.05）。由FTIR 分析可知CSDF、CIDF 羧甲基化成功，COO—基團被成功引入；SEM 分析可見，羧甲基化后，改性后兩種膳食纖維均呈現多孔結構、表面粗糙；由DSC可知CSDF、CIDF 熱穩定性進一步提高。綜上，羧甲基化改性能有效改善膳食纖維的理化性質與功能特性。

b.由CTDF 混合比例的研究可知，混合比例1:3時發揮的功能作用更好。此時，CTDF1/3取代度為0.53±0.02，吸濕率為10.77%。CTDF1/3陽離子交換力和葡萄糖吸附力均最高（P＜0.05）。CTDF1/3的NO2-吸附力在胃環境與腸環境中皆為最高（P＜0.05）。由FTIR 分析可知，CTDF1/3在紅外光譜中羧甲基特征峰最為明顯，SEM 分析可見，CTDF1/3結構疏松多孔，有利于吸附的進行，由DSC可知CTDF1/3熱溶解溫度最高，為145 °C，具有較好的熱穩定性。綜上，要綜合發揮改性后混合膳食纖維的功能作用，CSDF/CIDF 混合比例1:3 時CTDF 功能作用能得到最大程度的發揮和利用。