汪燕,楊玉,胡玲榕,陳春林
(宜春學院化學與生物工程學院,宜春 336000)
近年來,精神類疾病發(fā)病率日益增長,抑郁癥患者人數(shù)逐年上升,患者的發(fā)病和自殺也出現(xiàn)低齡化趨勢[1]。采取安全、有效的方法緩解癥狀、改善患者生命質(zhì)量一直是研究熱點。氯胺酮(ketamine,Ket)是一種N-甲基-D-天冬氨酸(N-methyl-D-aspartic acid,NMDA)受體拮抗劑,能刺激腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)釋放,激活海馬組織中雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)的表達,發(fā)揮快速抗抑郁作用[2-3]。但Ket抗抑郁作用劑量與產(chǎn)生類似精神分裂癥狀劑量相當,且維持抗抑郁功效常需反復給藥,易導致藥物濫用,造成記憶缺陷[4]。丁基苯酞(n-butylphthalide,NBP)是從芹菜籽中提取的一種有效成分,能夠改善腦細胞能量代謝,保護腦神經(jīng),常用于治療急性缺血性腦卒中[5]。研究表明,NBP可調(diào)節(jié)AKT/CREB信號通路,改善能量代謝[6],且聯(lián)合用藥治療腦卒中后抑郁具有較好療效[7]。為了減少Ket用藥劑量,降低其不良反應,筆者在本實驗嘗試通過建立體內(nèi)、外急性抑郁模型,探究小劑量Ket聯(lián)合NBP抗抑郁效果,并采用蛋白免疫印跡法檢測細胞外信息調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)、BDNF等相關(guān)蛋白表達量的變化,考察聯(lián)合用藥的作用機制。
1.1材料
1.1.1細胞系 大鼠腎上腺嗜鉻瘤細胞(pheo-chromocytoma cell,PC12)購于上海泰然生物科技有限公司。置于10%牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)、青霉素和鏈霉素配置成的達爾伯克改良伊格爾培養(yǎng)基(Dulbecco's modified Eagle's medium,DMEM)中,在37 ℃、5%二氧化碳(CO2)孵箱中培養(yǎng)。
1.1.2動物 選用清潔級雄性的ICR小鼠,鼠齡6~8周,體質(zhì)量(22±2) g,購于湖南斯萊克景達實驗動物有限公司,實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(湘)2019-0004。隨機分籠飼養(yǎng),每籠10只。室溫( 23±2) ℃,相對濕度 50%~65%。光照遵循自然規(guī)律,自由飲水、進食。
1.1.3試劑 NBP(中國食品藥品檢定研究院,批號:201602,含量:99%),Ket(福建古田藥業(yè)有限公司,批號:1709291),皮質(zhì)酮(CORT)(阿拉丁生物科技有限公司,批號:11530027,含量:98%),CCK-8(橋生物有限公司,批號:BRI141105),Anti-BDNF Rabbit p Ab、Synapsin(成都正能生物技術(shù)有限責任公司,批號分別為:20200611,2020108),P44/42 MAPK(Erk1/2)、p-P44/42 MAPK(Erk1/2)、β-actin(美國 Cell Signaling Technology公司,貨號分別為:21,30,1)。山羊抗鼠二抗(美國Jackson ImmunoResearch公司)。
1.1.4儀器 Imark 酶標儀、Trans-Blot1703930 蛋白電泳儀,均購于美國Bio-Rad公司;Nikon ECLIPSE Ti2-U熒光倒置顯微鏡。
1.2分組給藥及抑郁模型的建立
1.2.1細胞分組給藥及建立CORT模型 參照文獻[8]。取對數(shù)生長的PC12細胞分成6組:空白對照組(細胞培養(yǎng)液)、模型對照組(CORT 400 μmol·L-1)、對照A組(CORT 400 μmol·L-1+NBP 1 μmol·L-1)、對照B組(CORT 400 μmol·L-1+Ket 0.01 μmol·L-1)、陽性對照組(CORT 400 μmol·L-1+Ket 0.1 μmol·L-1)、聯(lián)合組(CORT 400 μmol·L-1+Ket 0.01 μmol·L-1+NBP 1 μmol·L-1)。接種于96孔板中,待細胞貼壁,給予不同濃度(100,200,300,400,500 μmol·L-1)CORT溶液100 μL,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。
1.2.2小鼠分組給藥及急性造模 參照文獻[9]。將40只小鼠按照體質(zhì)量隨機分為4組:模型對照組、NBP 組(30 mg·kg-1NBP[10])、Ket組(1 mg·kg-1Ket[11])、聯(lián)合組(30 mg·kg-1NBP+1 mg·kg-1Ket ),隨機分組具體方法:將小鼠稱質(zhì)量并標記,按質(zhì)量大小分區(qū),再將各區(qū)組小鼠隨機平均分配到各組[11]。NBP采用油溶,灌胃給藥,Ket用0.9%氯化鈉溶液溶解,腹腔注射給藥。模型對照組給予等量食用油和0.9%氯化鈉溶液。
1.3細胞實驗觀察指標
1.3.1CCK-8法檢測細胞活力 細胞培養(yǎng)24 h后,每孔加入10 μmol·L-1CCK-8繼續(xù)培養(yǎng)1~4 h,用酶標儀在波長450 nm處測定其吸光度(A值),細胞存活率(%)=(A值實驗組-A值調(diào)零組)/(A值對照組-A值調(diào)零組)×100%。
1.3.2細胞突觸形態(tài)觀察 將細胞接種于6孔板中繼續(xù)培養(yǎng),于倒置顯微鏡(×20)下觀察細胞突觸生長形態(tài)并拍照。隨機取5個視野,選擇軸突大于胞體的細胞,測量軸突長度,取其平均值。
1.3.3細胞蛋白的收集 以每皿2×107個細胞接種到100 mm培養(yǎng)皿中,按照上述實驗步驟進行給藥,棄培養(yǎng)液,用預冷的 0.01 mol·L-1磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗3次,加入細胞裂解液,冰上裂解30 min后收集蛋白,離心10 min(12 000×g,4 ℃),取上清液于-80 ℃保存。
1.3.4Western blotting實驗檢測synapsin蛋白表達 采用 Bradford法進行蛋白定量,BSA檢測蛋白濃度,稀釋成統(tǒng)一濃度后置于100 ℃沸水中煮5 min。十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)電泳,將蛋白經(jīng)濕轉(zhuǎn)緩沖液轉(zhuǎn)至聚偏氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜上,在5%脫脂奶粉的 TBST 溶液中封閉1~1.5 h,一抗4 ℃孵育過夜,TBST 洗滌3次,二抗孵育1 h,TBST洗滌3次,取出滴加適量顯影液,用Alpha Fluor Chem 凝膠成像儀檢測。
1.4小鼠行為學檢測
1.4.1強迫游泳實驗測定不動時間 強迫游泳(forced swim experiment,F(xiàn)ST)實驗建立急性抑郁模型。FST裝置由內(nèi)徑為14 cm,高20 cm,水深15 cm燒杯組成,水溫(23±2 )℃[13]。實驗前24 h預游泳15 min。給藥30 min后,將小鼠置于燒杯中6 min,觀察后4 min累計不動時間(s)。
1.4.2曠場實驗測定水平爬格數(shù)和直立次數(shù) 曠場由四周均為黑色,且長、寬、高均為 50 cm敞箱構(gòu)成[14],實驗前將小鼠置于實驗環(huán)境中適應1~2 h。給藥30 min后置于敞箱中間。記錄小鼠在5 min內(nèi)的水平爬格數(shù)與直立次數(shù)。每只小鼠記錄完成后需用乙醇擦拭,防止留下氣味對實驗造成干擾。

2.1CORT對PC12細胞存活率的影響 細胞存活率隨CORT濃度增大逐漸降低,見表1,當CORT濃度為400 μmol·L-1時,細胞活性損傷相對穩(wěn)定,且均能導致約半數(shù)細胞死亡,可用于建立細胞損傷體外抑郁模型。

表1 不同濃度皮質(zhì)酮對PC12細胞存活率的影響

濃度/(μmol·L-1)細胞存活率/%0100.00±0.0010084.82±8.63①20070.27±1.45①30060.74±1.92①40053.63±2.25①50052.66±1.77①
2.2PC12細胞存活率 與模型對照組比較,對照A組、對照B組對細胞存活率無明顯作用,差異無統(tǒng)計學意義(均P>0.05),兩者聯(lián)用能夠顯著改善細胞存活率,且差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),見表2。

表2 不同給藥方式對CORT誘導的PC12細胞損傷作用的影響
2.3PC12細胞神經(jīng)元損傷情況 各組細胞形態(tài)見圖1。與模型對照組比較,對照A組、對照B組對細胞神經(jīng)元均無明顯作用,兩者比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),兩者聯(lián)用逆轉(zhuǎn)細胞神經(jīng)元損傷,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),見表3。
2.4PC12損傷細胞蛋白表達
2.4.1PC12損傷細胞p-ERK/ERK表達 與對照組比較,模型對照組損傷細胞p-ERK/ERK的表達明顯下調(diào)。與模型對照組比較,對照A組、對照B組單藥組對p-ERK/ERK表達均無明顯作用(P>0.05),兩者聯(lián)用能夠提高p-ERK/ERK蛋白表達,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖2。
2.4.2PC12損傷細胞BDNF蛋白的表達 與對照組比較,模型對照組損傷細胞BDNF的表達明顯下調(diào)。與模型對照組比較,對照A組、對照B組單藥組對BDNF表達均無明顯作用,兩者聯(lián)用能夠抑制BDNF蛋白表達的減少,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),見圖3。
2.4.3PC12損傷細胞synapsin蛋白的表達 與對照組比較,模型對照組損傷細胞synapsin的表達明顯下調(diào)。與模型對照組比較,對照A組、對照B組單藥組對synapsin表達均無明顯作用,兩者聯(lián)用能夠緩解synapsin蛋白的下調(diào),但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),見圖4。

A.空白對照組;B.模型對照組;C.對照A組;D.對照B組;E.陽性對照組;F.聯(lián)合組

表3 不同給藥方法對CORT誘導的PC12細胞損傷神經(jīng)元突觸長度的影響
2.5小鼠行為學變化 ①對小鼠FST累計不動時間的影響:與模型對照組比較,NBP 組、Ket組單劑量給藥緩解小鼠在FST中的累計不動時間,但差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),兩者聯(lián)用降低小鼠在FST中累計不動時間療效顯著,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01),見表4。②對小鼠水平爬格次數(shù)和直立次數(shù)的影響:各組之間小鼠水平爬格數(shù)與直立次數(shù)差異無統(tǒng)計學意義(均P>0.05),見表4,說明急性給藥后對于小鼠自主活動能力無顯著影響。
PC12細胞來源大鼠腎上腺髓質(zhì)嗜鉻細胞瘤,廣泛用于神經(jīng)系統(tǒng)疾病的體外研究[15]。CORT 作為一種腎上腺皮質(zhì)激素,經(jīng)實驗檢測,慢性應激誘導的抑郁大鼠體內(nèi)CORT水平升高,BDNF合成障礙[16]。本實驗以CORT誘導PC12細胞損傷建立體外抑郁模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn),當CORT濃度為400 μmol· L-1時,細胞損傷均約為50%,可產(chǎn)生神經(jīng)毒性,用于后續(xù)造模。FST是經(jīng)典的評價抗抑郁藥效的急性應激造模方法,小鼠累計不動時間常作為評價抑郁癥行為的指標[17]。本項研究嘗試通過體內(nèi)外實驗探討NBP對小劑量Ket抗抑郁作用及機制的影響,結(jié)果證明NBP(1 μmol· L-1)聯(lián)合小劑量Ket(0.01 μmol·L-1)能夠顯著改善CORT誘導PC12細胞損傷的存活率,促進神經(jīng)元增長,顯著降低小鼠在FST累計不動時間,提高小劑量Ket的抗抑郁活性。

A.空白對照組;B.模型對照組;C.對照A組;D.對照B組;E.陽性對照組;F.聯(lián)合組;①與空白對照組比較,t=10.011,P<0.05;②與模型對照組比較,t=-2.368,-2.298,P<0.05。

A.空白對照組;B.模型對照組;C.對照A組;D.對照B組;E.陽性對照組;F.聯(lián)合組;①與空白對照組比較,t=6.576,P<0.05;②與模型對照組比較,t=-3.709,-1.713,P<0.05。
BDNF是中樞神經(jīng)重要的神經(jīng)營養(yǎng)因子,能夠調(diào)節(jié)機體情緒和認知功能[18]。研究表明,BDNF及其他神經(jīng)營養(yǎng)因子缺乏導致的神經(jīng)損傷是抑郁癥發(fā)病的病理基礎[19]。因此,調(diào)節(jié)中樞神經(jīng)BDNF水平常作為抗抑郁活性指標[20]。ERK是BDNF上游的信號通路,可通過調(diào)節(jié)cAMP反應元件結(jié)合蛋白(CAMP-response element binding protein,CREB)的磷酸化,影響B(tài)DNF水平[21]。因Ket能夠刺激BDNF的釋放,激活mTOR的表達,且NBP能夠調(diào)節(jié)AKT/CREB信號通路。由此可推測NBP與Ket的抗抑郁作用均可通過ERK-BDNF通路產(chǎn)生協(xié)同作用。本實驗為探究聯(lián)合作用機制,經(jīng)Western blotting法檢測NBP對小劑量Ket在PC12損傷細胞中p-ERK/ERK、BDNF和synapsin蛋白表達的影響。結(jié)果證實,NBP聯(lián)合小劑量Ket能夠促進CORT誘導損傷細胞中p-ERK/ERK、BDNF、synapsin蛋白的表達。
綜上所述,NBP能夠提高小劑量Ket的抗抑郁活性,探究作用機制可能與ERK-BDNF信號通路相關(guān)。本次實驗雖從體內(nèi)外考察NBP對小劑量Ket抗抑郁作用及機制的影響,但實驗仍存在不足,后續(xù)實驗應采取相關(guān)蛋白質(zhì)抑制劑驗證其作用機制。

A.空白對照組;B.模型對照組;C.對照A組;D.對照B組;E.陽性對照組;F.聯(lián)合組;①與空白對照組比較,t=7.543,P<0.05。

表4 4組小鼠累計不動時間

分組劑量/(mg·kg-1·d-1)FST/s水平爬格次數(shù)直立次數(shù)模型對照組-177.6±17.33192.00±44.0356.88±12.17NBP組30145.40±17.50183.40±33.6369.00±15.59Ket組1147.90±31.70185.10±56.2866.50±13.97聯(lián)合組30+1119.90±41.45①161.50±39.1772.50±21.97