李浩楠,楊奕帥,長孫東亭,朱曉鵬,羅素蘭
(1.上海兒童醫學中心 三亞市婦女兒童醫院 藥學部,海南 三亞 572000;2.海南大學 熱帶生物資源教育部重點實驗室/海口市海洋藥物重點實驗室/生命科學與藥學院,海口 570228)
芋螺(Cone snail)是一種肉食性海洋軟體動物[1],其分泌的芋螺毒液包含許多不同化合物的混合物,包括小分子、肽和酶。其中,含有很多種不同成分的神經活性毒素肽-芋螺毒素(Conotoxin,CTx)具有廣泛的多樣性,這些具有高活性和靶點選擇性的神經小肽大多由6~50個氨基酸殘基構成,富含二硫鍵,以特定的離子通道和受體為靶標,作為藥理學工具和探針,具有較好的開發前景[2-4]。α-芋螺毒素 (α-conotoxin,α-CTx) 是目前研究最廣泛和深入的CTxs。α-CTx分子質量較小,由12~20個氨基酸殘基連接構成,是各種乙酰膽堿受體(nicotinic acetylcholine receptor,nAChR)亞型的選擇性拮抗劑[5-6]。α-CTx一般含有4個半胱氨酸(Cys),根據二硫鍵的不同連接方式,可組成3種異構體,其中,大部分α-CTxs的活性形式為球型。另外,根據α-CTx半胱氨酸間氨基酸數量的不同將α-CTx分為:α-3/5、α-4/4、α-4/6、α-4/7等多種亞家族。α-CTx不僅作為分子探針,用以鑒別不同亞型的nAChR,在治療與nAChR相關疾病時有著至關重要的作用[7-9],并且在成癮、鎮痛等神經生理、藥理研究方面也扮演重要角色[10]。
羅素蘭研究團隊從疣縞芋螺中分離得到了一種α-4/7型CTx LvIA,它由15個氨基酸殘基組成,能夠作用于nAChRs,對α3β2 nAChR具有較好的的活性(IC50為8.7 nmol·L-1),但是LvIA對α6/α3β2β3,α3β4和α6/α3β4 3種nAChRs亞型保持一定的高親和力[11-13]。為了提高LvIA的選擇專一性,前期實驗室基于LvIA進行了設計和改造,獲得了對應的共晶結構,同時也利用受體突變技術解析了它與α3β2 nAChR相互作用的分子機制[14-15]。研究發現,當第11位天冬氨酸(Asp,D)突變成丙氨酸(Ala,A)后對α3β2 nAChR的活性保持不變,共晶實驗表明,第11位氨基酸影響著LvIA與α3β2 nAChR的結合作用[16-19]。第11位是否是LvIA的關鍵氨基酸位點,今后能否基于該位點對LvIA進行改造,有待深入研究。
本研究基于LvIA前期研究發現的關鍵氨基酸信息[20-22],主要是針對第11位氨基酸,對LvIA進行進一步設計改造,分別用精氨酸(Arg,R)和組氨酸(His,H)對Asp進行取代,設計了2種新型突變體,考察第11位氨基酸電性和側鏈基團對LvIA活性的影響,旨在為LvIA的設計和開發提供依據。
1.1 試驗材料與儀器α-CTx LvIA及其所有突變體線性肽粗品(吉爾生化上海有限公司),色譜級三氟乙酸(Trifluoroacetic acid,TFA)(上海阿拉丁生化科技股份有限公司),色譜級乙腈(Acetonitrile,ACN)(ThermoFisher Scientific公司),N,N-二甲基甲酰胺(DMF)、碘(I2)、鐵氰化鉀(K3[Fe(CN)6])、甲酸等分析純試劑(廣州化學試劑廠),質粒提取試劑盒(Omega),膠原酶(Collagenase)、乙酰膽堿(ACh)、阿托品(Atropine)(Sigma公司),DNA純化試劑盒(TaKaRa大連有限公司),體外轉錄試劑盒(Fisher Scientific公司),膠原蛋白酶A(美國Sigma-Aldrich公司),圓二色譜檢測涉及的試劑由華中科技大學分析測試中心提供;Waters 2695制備型高效液相色譜儀,Waters e2695分析型高效液相色譜儀(美國Waters公司),島津電噴霧電離質譜(Electrospray ionization-mass spectrometer,ESIMS)(美國格雷斯公司),雙電極電壓鉗系統Axon 900A和Digidata 1550B數模轉換器(美國Molecular Device公司),ELGA超純水系統(英國ELGA公司);分光光度計(Smart SpecTM plus)(美國Bio-RAD公司),AlphaImager HP凝膠成像系統(美國Protein Simple公司);實驗用非洲爪蟾(美國Nasco公司)。
1.2 [D11R]LvIA和[D11H]LvIA的合成和氧化折疊設計2種LvIA第11位突變體序列送至上海吉爾生化有限公司,使用固相合成法(Fmoc法)進行合成(純度為80%~85%)。然后使用制備型RP-HPLC對合成好的線性肽進行純化,使產物的純度達到95%以上。純化得到的線形肽采用兩步法氧化的方法進行氧化折疊,保證形成I-III,IIIV的二硫鍵連接結構。第1步氧化,將純化后的線性肽凍干粉溶于B60(60%乙腈),緩慢地滴加到鐵氰化鉀反應液(K3[Fe(CN)6]10 mmol·L-1,Tris 0.1 mol·L-1,pH7.5)中,室溫充分反應45 min,促使其形成第1對二硫鍵(Cys-2和Cys-8),線性肽濃度不高于50 g·L-1。利用RP-HPLC純化反應后得到單環產物。將第1步純化后的多肽進行第2步氧化。在氮氣保護的條件下,逐滴加入到碘(I2)反應液中(7.5 mmol·L-1I2溶液;V水∶VTFA∶VACN=73∶3∶24),反應時間8~12 min,促使其 連接Cys-3和Cys-16形成第2對二硫鍵,反應完畢滴加VC飽和溶液至溶液顏色從紫黑色變成無色,終止I2氧化反應,至此,得到包含2對二硫鍵的LvIA突變體的最終產物。使用RP-HPLC對氧化折疊產物進行純化(溶劑A為0.075%TFA水溶液,溶劑 B為0.05% TFA、90% ACN,梯度洗脫條件:5%~35%),使其純度大于95%,純化得到的氧化折疊產物利用ESI-MS鑒定其分子質量,確定LvIA及其突變體是否形成正確的二硫鍵連接方式。凍干保存,用于后續電生理活性實驗。
1.3 乙酰膽堿受體模型的建立從載入了含(rat,r)α3、β2 2種亞基基因質粒的DH5α感受態細胞中提質粒,將獲取的質粒酶切成線性質粒,然后純化此線性化DNA模板,利用0.8%的瓊脂糖凝膠電泳檢驗純度,并使用Nanodrop測定濃度。使用T7 RNA polymerase體外轉錄試劑盒將DNA模板轉錄,轉錄后的RNA使用純化試劑盒進行純化,純化的產物cRNA,再使用分光光度計測定濃度,并使用0.8%的瓊脂糖凝膠進行純度鑒定。選取1只腹部沒有斑點的非洲爪蟾,冰凍1 h麻醉,使用手術刀將爪蟾的腹部下側切開,用剪刀將肌肉剪開,取2片蛙卵置于OR-2溶液中,再用胰蛋白酶酶解成單個蛙卵,至大部分卵母細胞表面無膜,挑選其中個體均勻,無血絲,黑白分明的爪蟾卵母細胞。按照1∶1的比例混合成所需的亞型,保證每個細胞的注射量為50.6 nL,注射后的蛙卵置于含抗生素的ND96培養液中(96 mmol·L-1NaCl,2 mmol·L-1KCl,1.8 mmol·L-1CaCl2,1 mmol·L-1MgCl2,5 mmol·L-1HEPES,pH7.1~7.7;抗生素:青霉素、10 mg·L-1鏈霉素和100 mg·L-1慶大霉素),17 ℃培養2~3 d,表達α3β2受體亞型。
1.4 LvIA突變體活性的檢測將表達了特定受體的卵母細胞放置于細胞槽內,將雙電極電壓鉗裝好holder,再把灌注約1/23 mol·L-1KCl溶液的電極針安裝到holder上,將電極針浸入液面,調零,使其鉗制電壓為70 V,基準電流低于100 nA,將電壓膜片鉗打開到ON的模式,鉗住細胞,調節程序,每個Sweep(1 min)的第2秒的時候灌流系統給予蛙卵細胞100 μmol·L-1濃度的ACh刺激,其余時刻持續使用ND96溶液灌流。使用雙電極電壓鉗系統檢測和記錄蛙卵細胞的電流,待電流大小穩定以后,逐次加入經過梯度稀釋的待測定活性的LvIA突變體,孵育時間為5 min,再一次開啟程序,比較蛙卵細胞加藥前后2次產生電流的的大小差異,計算反應率(Response)。通過非線性擬合方程:Response=100/[1+([toxin]/IC50)nH]×100%進行擬合分析,獲取藥物作用的劑量反應曲線(IC50值),其中,nH代表Hill系數。
2.1 LvIA突變體合成純化線性肽,使其純度高于95%,用于后續的氧化折疊反應,連接2對二硫鍵,將所得產物通過HPLC和MS鑒定,具體結果見圖1-A、B。[D11H]LvIA在乙腈濃度23%時洗脫,洗脫時間為14.8 min;而[D11R]LvIA在乙腈濃度為25%時洗脫,洗脫時間是14.9 min。通過質譜確定了[D11H]LvIA和[D11R]LvIA的相對分子質量,分別為1702.95和1721.99Du,與理論值一致,且均比其線性肽的相對分子量少了4 Du,說明成功連接了2對二硫鍵并且末端酰胺化,見圖1-C、圖1-D。

圖1 LvIA突變體的HPLC和MS結果
2.2 乙酰膽堿受體模型建立提取包含鼠源α3、β2這2種亞基的質粒,使用0.8%的瓊脂糖凝膠電泳進行純度檢測。從圖2-A可知,質粒條帶清晰,未發生拖尾情況,超螺旋結構大小在2500 bp左右,符合理論值大小。從圖2-B可知,條帶清晰可見,無彌散現象,超螺旋結構的大小在5000~7500 bp范圍內。使用紫外分光光度計測定線性質粒的質量濃度,質量濃度皆大于0.2 g·L-1,可以保證后續試驗的濃度要求。制備α3、β2這2種亞基的cRNA,所得RNA的凝膠電泳結果如圖2-C,圖中有1條明顯的亮帶,大小在750~1 000 bp之間,符合理論值,α3亞基的濃度為0.4 g·L-1,β2亞基的濃度為0.49 g·L-1。將2種亞基按照1∶1的比例混合,顯微注射到酶解好的爪蟾卵母細胞中(圖2-D),表達2~3 d,使用激動劑ACh刺激,可以在細胞膜上檢測到內向電流,電流大小在200~2000 nA范圍內,如圖2-E。

圖2 α3β2 nAChR模型的建立
2.3 LvIA突變體活性檢測分別將LvIA和2種11位的LvIA突變體在表達α3β2 nAChR的非洲爪蟾卵母細胞上進行電生理活性檢測。在終濃度為10 μmol·L-1的孵育條件下,LvIA、 [D11R]LvIA和[D11H]LvIA對α3β2nAChR的 阻 斷率分別為(95.8±2.8)%(n=6)、(9.8±2.5)%(n=7)和(12.4±3.1)%(n=5)(圖3),與野生型LvIA相比,2種11位突變體對α3β2 nAChR活性幾乎完全喪失。

圖3 LvIA及突變體對于α3β2 nAChR的電流軌跡圖
為了進一步確定2種LvIA 的11位突變體對于α3β2 nAChR的阻斷活性,筆者做了劑量反應曲線(圖4),分別測定了[D11R]LvIA和[D11H]LvIA對α3β2 nAChR的IC50值,2種突變體對于α3β2 nAChR的IC50值分別為8976 nmol·L-1和6390 nmol·L-1(表1),活性與比本體的活性相比,分別降低了574.38%和408.62%。證明當第11位的Asp變化后,LvIA的活性大大降低。

圖4 LvIA及其突變體對于α3β2 nAChR的濃度反應曲線

表1 LvIA 及11位突變體在α3β2 nAChR上的IC50
α3β2 nAChR 是一種十分重要的受體,與疼痛、成癮等生理學作用密切相關。LvIA是一種十分重要的α-CTx,作用于α3β2 nAChR,是從疣縞芋螺中發現并且克隆得到的,對LvIA構效關系的研究將有益于獲得靶向α3β2 nAChR的相關分子探針,有助于對與α3β2 nAChR相關的藥理學研究。目前,發現能夠作用于α3β2 nAChR的α-CTx的有很多,其中,GIC、MII、OmIA和PeIA等具有較強的靶向作用,針對這些芋螺毒素的突變改造對于本實驗具有借鑒作用[23-24]。如:在對α-CTx MII的研究中發現,MII第11位的谷氨酸(Glu)與α3-β2亞基上帶正電荷的殘基如:(+) K153和(-)K163形成相互作用,促進MII與α3β2 nAChR的結合,11位對保證MII的活性至關重要[25]。利用共結晶技術對α-CTx GIC的研究發現其第7位的Ala、11位的Asn和12位的Asn對于GIC與受體的結合具有十分重要的作用,特別是11位的Asn可以通過形成氫鍵與Ac-AChBP相互作用,如果改變11位的氨基酸,會影響GIC與受體的結合,11位氨基酸對于α-4/7型CTxs與受體的結合起到至關重要的作用[26];在PeIA的相關研究中,也發現11位氨基酸分別突變為Arg和Lys之后,對α3β2 nAChRs的IC50分別變為30.9μmol·L-1和45.4 μmol·L-1,基本喪失了活性[27],上述結果都證明了11位氨基酸對于α-4/7型CTx活性影響顯著。
根據前期研究,發現β2亞基上的3個位點:T59K、V111I、F119Q對α-CTx LvIA的敏感性有顯著影響,受體突變加電生理結果表明受體上59、111和119的3個位置,是與LvIA結合的關鍵位點。羅素蘭研究團隊對LvIA前期研究中,獲得了LvIA與Ac-AChBP的共晶結構。借助共晶結構和分子動力學模擬發現α3亞基中的Lys-155可以與LvIA中帶負電荷的Asp-11形成鹽橋,增加相互作用,說明第11位的Asp對于LvIA與α3β2 nAChRs的相互作用影響較大,但是將第11位突變成Ala之后活性保持不變,所以本研究希望在前期基礎上進一步深入探究第11位如何影響LvIA對于α3β2 nAChRs的活性,針對11位所設計的兩個突變體[D11R]LvIA和[D11H]LvIA,當第11位氨基酸突變成堿性氨基酸Arg和His之后,2個突變體的活性都極大的降低。結合前期共晶結構和分子動力學模擬分析,當11位突變為堿性氨基酸后,與α3亞基中的Lys-155都為堿性氨基酸,同性相斥,結合力減弱,造成了LvIA活性的降低。該研究探究了11位的重要作用,為今后基于LvIA的分子設計和改造提供了基礎。