謝三都,林芳,馮詩影,宋嘉豪,唐藝穎,莊培榮
(1.閩南科技學院 生命科學與化學學院,福建 泉州 362332;2.泉州輕工職業學院,福建 泉州 362200;3.福建省休閑食品加工應用協同創新中心,福建 泉州 362200)
鼠曲草,又稱水牛花、清明草,屬于菊科植物草本植物[1],富含多酚、黃酮苷、氨基酸等物質[2],具有止痰去咳[3]、抗菌消炎[4]、降血糖降血脂[5]等功能,有利于治療呼吸系統疾病[6]和改善慢性阻塞性肺疾病[7]。植物多酚又稱為植物單寧,主要通過莽草酸和丙二酸途徑合成,是植物生物反應中產生的重要次生代謝物,主要是一些引起澀味的多酚類物質[8],其對植物的生長發育、基因的誘導表達、信號傳導等都具有一定的影響[9]。大量多酚研究表明,多酚對腫瘤細胞的不同階段,如癌細胞的增殖、凋亡、信號通路等有顯著的調節作用[10]。
本文以鼠曲草為原料,采用熱水浸提方法,以鼠曲草多酚提取率為指標,研究料液比、提取溫度、提取時間、提取次數等制備條件及制備條件交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響,旨在探清制備條件間相互作用對制備鼠曲草多酚的影響,進而優化其制備工藝條件,為充分利用鼠曲草資源提供技術支持。
材料:鼠曲草,產地為四川宜賓,購于四川宜賓川江美食店。
試劑:硫酸亞鐵、酒石酸鉀鈉、十二水磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀、無水磷酸二氫鈉、無水乙醇等,由西隴科學股份有限公司供給;茶多酚,由上海泰坦科技股份有限公司供給;沒食子酸標準品,由國藥集團化學試劑有限公司供給。
N4S型紫外分光光度計,由上海儀電分析儀器有限公司提供;G-100S超聲波清洗儀,由深圳市歌能清洗設備有限公司提供;HWS-28恒溫水浴鍋,由上海齊欣科學儀器有限公司提供;FA2004電子天平,由上海衡平儀器儀表廠提供;721型可見分光光度計,由上海光譜儀器有限公司提供;SHB-Ⅲ 循環水式多用真空泵,由鄭州長城科工貿有限公司提供。
1.3.1 鼠曲草多酚制備工藝流程
鼠曲草多酚制備工藝流程為鼠曲草→粉碎→過80目標準樣篩→熱水浸提→過濾除渣→鼠曲草多酚提取液。
1.3.2 鼠曲草多酚提取率的測定
(1)沒食子酸標準曲線的制備。以沒食子酸為標準品,采用酒石酸亞鐵法[11-12]制作標準曲線,獲得標準曲線方程和相關性系數(如圖1所示)。

圖1 沒食子酸標準曲線
如圖1所示,沒食子酸標準曲線的線性回歸方程為y=20.758x+0.004 2,相關系數R2=0.999 9,說明沒食子酸標準液在質量濃度為0~0.05 mg/mL范圍內具有較好的線性關系。
(2)鼠曲草多酚提取率的測定。吸取2 mL鼠曲草提取液于10 mL規定刻度試管中,按照上文規定方法進行實驗操作,以空白試劑作為對比,在波長為545 nm時進行測量,根據沒食子酸標準曲線方程計算鼠曲草多酚濃度,鼠曲草多酚提取率計算公式如下:

上式中,C為鼠曲草提取液中鼠曲草多酚濃度,mg/mL,V為鼠曲草提取液體積,mL;M為鼠曲草質量,g;1 000為單位換算系數。
1.3.3 制備條件交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響
(1)料水比和溫度交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響。精確稱取0.50 g鼠曲草30份,分別配制料水比為1∶50 g/mL、1∶70 g/mL、1∶90 g/mL、1∶110 g/mL、1∶130 g/mL、1∶150 g/mL且分別于60 ℃、70 ℃、80 ℃、90 ℃、100 ℃提取10 min后,抽濾、冷卻,所得鼠曲草提取液定容至100 mL,按沒食子酸標準曲線實驗方法測定鼠曲草提取液中鼠曲草多酚含量,進而計算鼠曲草多酚提取率,平行測定3次。
(2)料水比和時間交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響。精確稱取0.50 g鼠曲草30份,分別配制料水比為1∶50 g/mL、1∶70 g/mL、1∶90 g/mL、1∶110 g/mL、1∶130 g/mL、1∶150 g/mL且在90 ℃水浴條件下分別提取4 min、7 min、10 min、13 min、16 min,抽濾、冷卻,所得鼠曲草提取液定容至100 mL,按沒食子酸標準曲線實驗方法測定鼠曲草提取液中鼠曲草多酚含量,進而計算鼠曲草多酚提取率,平行測定3次。
(3)溫度和時間交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響。準確稱取0.50 g鼠曲草25份,配制料水比為1∶130 g/mL,分別放入60 ℃、70、80 ℃、90 ℃、100 ℃中分別浸提4 min、7 min、10 min、13 min、16 min后,抽濾、冷卻,所得鼠曲草提取液定容至100 mL,按沒食子酸標準曲線實驗方法測定鼠曲草提取液中鼠曲草多酚含量,進而計算鼠曲草多酚提取率,平行測定3次。
(4)料水比和提取次數交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響。準確稱取0.50 g鼠曲草24份,分別配制料水比為1∶50 g/mL、1∶70 g/mL、1∶90 g/mL、1∶110 g/mL、1∶130 g/mL、1∶150 g/mL,在90 ℃水浴條件下提取10 min,分別提取1、2、3、4次后,抽濾、冷卻,所得鼠曲草提取液定容至100 mL,按沒食子酸標準曲線實驗方法測定鼠曲草提取液中鼠曲草多酚含量,進而計算鼠曲草多酚提取率,平行測定3次。
1.3.4 數據分析
用Excel數據處理軟件對實驗所得數據進行整理、方差分析和多重比較。
由表1可知,料水比、溫度及料水比和溫度交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響均極顯著,P<0.01。在提取時間為10 min且僅提取1次的條件下,當料水比為1∶130 g/mL且提取溫度為100 ℃時,鼠曲草多酚提取率為(0.388±0.001 7)%,極顯著高于其他交互條件下鼠曲草多酚的提取率,P<0.01。

表1 料水比和溫度交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響
由表2可知,料水比、時間及料水比和時間交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響均極顯著,P<0.01。在提取溫度為90℃且僅提取1次的條件下,當料水比為1∶150 g/mL且提取時間為16 min時,鼠曲草多酚提取率為(0.342±0.003 6)%,顯著高于其他交互條件下鼠曲草多酚的提取率,P<0.01。

表2 料水比和時間交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響
由表3可知,溫度、時間及溫度和時間交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響均極顯著,P<0.01。在料水比為1∶130 g/mL且僅提取1次的條件下,提取溫度與提取時間在以下4種交互情況時對鼠曲草多酚提取率無顯著性差異:提取溫度為90 ℃、提取時間為10 min,提取溫度為90 ℃、提取時間為16 min,提取溫度為100 ℃、提取時間為7 min,提取溫度為100 ℃、提取時間為13 min,但極顯著高于其他交互條件下鼠曲草多酚的提取率,P<0.01。

表3 溫度和時間交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響
綜上所述,各步驟所涉及鼠曲草多酚提取率最高的制備條件交互作用組合分別為料水比為1∶130g/mL、提取溫度為100 ℃、提取時間為10 min、提取1次,料水比為1∶150 g/mL、提取溫度為90 ℃、提取時間為16 min、提取1次,料水比為1∶130 g/mL、提取溫度為90 ℃、提取時間為16 min、提取1次。經驗證,3個組合對鼠曲草多酚提取率無顯著性差異(P>0.05),在考慮經濟效益且高溫長時間熱處理可能對鼠曲草多酚可能產生破壞的情況下,采用提取溫度為90 ℃、提取時間為10 min的條件下,研究料水比與提取次數之間的交互作用。
由表4、表5可知,料水比與提取次數對鼠曲草多酚提取率有極顯著性影響,P<0.01,但二者交互作用對鼠曲草多酚提取率無顯著性影響,P>0.05。在此情況下,采用新復極差法(SSR法)分別對料水比和提取次數進行多重比較,結果表明,料水比為1∶90 g/mL時的鼠曲草多酚提取率極顯著高于其他料水比,而提取次數為3次時的鼠曲草多酚提取率與提取次數為4次時的鼠曲草多酚提取率無顯著差異,P>0.05,并且與提取次數為2次時的鼠曲草多酚提取率有顯著性差異,P<0.05,但極顯著高于提取次數為1次時的鼠曲草多酚提取率。因此,在提取溫度為90 ℃、提取時間為10 min的條件下,鼠曲草多酚提取條件為料水比1∶90 g/mL,提取次數為3次,此時鼠曲草多酚提取率為(0.438±0.008 02)%。

表4 料水比與提取次數交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響

表5 料水比與提取次數交互作用對鼠曲草多酚提取率影響的方差分析
采用熱水浸提法提取鼠曲草多酚的工藝條件為料水比1∶90 g/mL、提取溫度為90 ℃、提取時間為10 min的條件下提取3次,所提鼠曲草多酚提取率為(0.438±0.008 02)%。其中,制備條件中料水比、時間、溫度、提取次數對鼠曲草多酚提取率的影響極顯著,P<0.01,并且料水比與時間、料水比與溫度、溫度與時間的交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響極顯著,P<0.01,但料水比與提取次數的交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響不顯著,P>0.05。
在交互作用方面,仍需研究提取溫度與提取次數、提取時間與提取次數的交互作用對鼠曲草多酚提取率的影響,從而進一步優化其提取工藝條件。同時,在熱水浸提法基礎上,可進一步研究輔助其他提取技術或多種提取技術聯合以進一步提升鼠曲草多酚提取率,如超聲波[13]、酶法[14]、微波[15]等。在優化鼠曲草多酚提取工藝條件基礎上,可進一步研究鼠曲草多酚的功能特性,如抗氧化性能[16]、抗炎[17]、抗病原體感染[18]等功效。