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黃芪對糖尿病視網膜病變小鼠的影響及機制研究

2023-04-17 07:06:46劉漢瀅季青璇彭美中馬盼牛藝婷徐藝宸韓靜
中國中醫藥信息雜志 2023年4期
關鍵詞:小鼠數據庫血糖

劉漢瀅 ,季青璇 ,彭美中 ,馬盼 ,牛藝婷 ,徐藝宸 ,韓靜

1.北京中醫藥大學中醫學院,北京 100029; 2.北京中醫藥大學北京中醫藥研究院,北京 100029

糖尿病視網膜病變(diabetic retinopathy,DR)是由糖尿病引起的微血管并發癥[1],是成年人失明最常見的原因[2]。在我國,隨著糖尿病患病人數增加,DR的致盲率日益升高[3]。目前,DR的治療方法有控制血糖、激光光凝手術、注射抗血管內皮生長因子藥物等。但目前的治療方法存在弊端,如經視網膜光凝手術治療后,患者出現視網膜受損性裂孔、虹膜受損、出血等不良反應[4];使用抗血管內皮生長因子藥物治療后,部分患者出現牽引性視網膜脫離、眼壓升高、黃斑孔形成及葡萄膜炎等不良反應[5]。因此,亟需尋找能夠有效治療DR的新方法。

黃芪味甘,性微溫,具有補氣升陽、固表止汗、斂瘡生肌等作用[6]。藥理研究表明,黃芪可降低糖尿病大鼠血糖[7]。臨床研究表明,黃芪注射液能提高DR患者視力,減少眼底出血,改善血液流變學指標[8]。此外,黃芪有效部位黃芪多糖能減少視網膜血管中白細胞黏附,降低DR大鼠視網膜腫瘤壞死因子-α(TNF-α)等蛋白表達[9]。黃芪主要成分黃芪甲苷可顯著抑制db/db小鼠視網膜神經節細胞凋亡[10]。雖然提示黃芪具有治療DR的潛力,但藥理機制尚未闡明。本實驗通過建立小鼠糖尿病模型,觀察黃芪對糖尿病小鼠視網膜病變的作用,并探討其潛在機制,為黃芪治療DR的臨床應用奠定基礎。

1 實驗材料

1.1 動物

SPF級雄性C57BL/6J小鼠18只,8周齡,體質量20~25 g,購于斯貝福(北京)生物技術有限公司,動物許可證號SYXK(京)2019-0030。飼養于北京中醫藥大學動物實驗中心,溫度22~27 ℃,濕度45%~55%,自然光照,適應性喂養1周。本實驗經北京中醫藥大學實驗動物倫理委員會審查批準(BUCM-4-2020102005-4193)。

1.2 藥物及制備

黃芪,購于南京同仁堂有限公司,批號6971133498764。稱取黃芪飲片50 g,加10倍量去離子水,煎煮2次,每次2 h,合并濾液,減壓濃縮至5 g/mL,于4 ℃保存。

1.3 主要試劑與儀器

鏈脲佐菌素(STZ),德國Sigma,貨號S0130;檸檬酸鈉緩沖液,江蘇凱基生物技術股份有限公司,貨號KGHC001;封閉用羊血清,北京中杉金橋,貨號ZLI-9056;小鼠內皮糖蛋白(Endoglin/CD105)抗體,英國Abcam,貨號ab156756;基質金屬蛋白酶2(MMP2)抗體,英國Abcam,貨號ab79781;糖原合成酶激酶-3β(GSK-3β)抗體,美國CST,貨號D5C5Z;含DAPI熒光封片劑,北京中杉金橋,貨號ZF-0311;山羊抗小鼠IgG,英國Abcam,貨號ab97018;羊抗兔IgG-Alexa Fluor 647,北京百瑞極生物,貨號BN20636;Triton X-100,北京百瑞極生物,貨號9002-93-1。光學顯微鏡(德國Leica,型號DM2500),激光共聚焦顯微鏡(德國Leica,型號TCS SP8),視網膜顯微成像系統(美國Phoenix Research Labs,型號Micron Ⅲ)。

2 實驗方法

2.1 造模、分組及給藥

小鼠隨機分為正常組、模型組和黃芪組,每組6只。除正常組外,其余各組參照文獻[11]方法制備DR小鼠模型。小鼠禁食12 h,模型組和黃芪組連續5 d腹腔注射鏈脲佐菌素溶液60 mg/kg(pH=4.4檸檬酸鈉緩沖液配制),正常組注射等體積檸檬酸鈉緩沖液。4周后小鼠尾靜脈采血測定空腹6 h血糖,剔除血糖<16.7 mmol/L小鼠。按60 kg成人臨床劑量與小鼠體表面積換算給藥劑量,黃芪組予黃芪水提物80 mg/kg灌胃[12-13],正常組和模型組予等體積羧甲基纖維素鈉灌胃,連續6周。

2.2 體質量與空腹血糖測定

每周稱量小鼠體質量,每2周檢測小鼠空腹血糖。

2.3 光學相干斷層掃描檢測視網膜厚度

小鼠腹腔注射0.5%戊巴比妥鈉麻醉,滴加復方托吡卡胺滴眼液散瞳,卡波姆眼膏潤滑角膜,將小鼠眼球緊貼于實驗儀器鏡面進行觀察并拍照。采用Image J軟件對圖片進行分析,統一標尺長度以測量視網膜厚度,以中央凹為起點,在左右各150、300 μm處測量視網膜全層厚度。

2.4 網絡藥理學分析

2.4.1 黃芪有效成分及靶點篩選

在 TCMSP(https://old.tcmsp-e.com/tcmsp.php)數據庫以“黃芪”為關鍵詞進行檢索,獲取黃芪有效成分,以口服生物利用度(OB)≥30%、類藥性(DL)≥0.18為條件進行篩選。通過SwissTargetPrediction數據庫檢索有效成分對應靶點信息,將篩選的靶點導入UniProt數據庫(http://www.uniprot.org/up-loadlists/),限定物種為“人類”,將靶點蛋白、基因信息標準化。

2.4.2 糖尿病視網膜病變相關靶點篩選

以“diabetic retinopathy”為關鍵詞在OMIM(https://www.omim.org/)、GAD(https://www.g6gsoftwaredirectory.com/)、TTD(http://db.idrblab.net/ttd/)數據庫進行檢索,獲得DR相關靶點。

2.4.3 黃芪治療糖尿病視網膜病變靶點預測

將黃芪有效成分靶點與DR相關靶點導入Venny 2.1(https://bioinfogp.cnb.csic.es/tools/venny/index.html)得到交集靶點,即黃芪治療DR的潛在靶點。

2.4.4 蛋白相互作用網絡構建

將獲得的交集靶點導入STRING(https://cn.stringdb.org/)數據庫,物種設置為“人類”,剔除孤立靶點,以TSV格式將數據導出,得到蛋白相互作用(PPI)網絡,并進行蛋白間相互作用分析。

2.4.5 黃芪治療糖尿病視網膜病變靶點生物功能注釋

將黃芪治療DR靶點上傳至DAVID(https://david.ncifcrf.gov/list.jsp)數據庫,對靶點進行GO功能和KEGG通路富集分析,將閾值P<0.01設定為篩選條件。

2.5 免疫熒光染色

干預結束后,取視網膜,制作視網膜組織切片,依次加入二甲苯Ⅰ、二甲苯Ⅱ、二甲苯Ⅲ浸泡20 min,梯度乙醇(100%、95%、90%、80%、70%、60%、50%)脫水5 min,流水沖洗10 min,甘氨酸溶液孵育10 min,PBS沖洗3次,羊血清封閉30 min,分別滴加CD105一抗(1∶50)、MMP2一抗(1∶200)、GSK-3β一抗(1∶250),4 ℃孵育過夜。PBS沖洗5 min×3次,滴加二抗(1∶400),37 ℃避光孵育60 min,加入適量含DAPI熒光封片劑,避光復染5 min,蓋玻片封片,激光共聚焦顯微鏡下觀察并拍照,采用Image J軟件分析蛋白平均光密度。

3 統計學方法

采用SPSS20.0統計軟件進行分析。計量資料以±s表示,符合正態分布,多組間比較采用方差分析,方差齊組間兩兩比較采用LSD法,方差不齊用T2檢驗。P<0.05表示差異有統計學意義。

4 結果

4.1 黃芪對模型小鼠體質量及空腹血糖的影響

與正常組比較,模型組小鼠體質量明顯減少(P<0.05),空腹血糖明顯升高(P<0.05);與模型組比較,黃芪組小鼠體質量明顯增加(P<0.05),空腹血糖水平無明顯變化(P>0.05)。結果見表1。

表1 各組小鼠體質量和空腹血糖比較(±s)

表1 各組小鼠體質量和空腹血糖比較(±s)

注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

組別正常組模型組黃芪組只數6 6 6體質量/g 32.25±1.47 20.34±1.15*22.34±1.51#空腹血糖/(mmol/L)8.57±0.73 25.83±2.86*23.17±9.95

4.2 黃芪對模型小鼠視網膜厚度的影響

光學相干斷層掃描前麻醉過程中,黃芪組小鼠死亡2只。對視網膜厚度測量后發現,與正常組比較,模型組小鼠距中央凹150、300 μm處視網膜厚度明顯減少(P<0.05);與模型組比較,黃芪組小鼠距中央凹150、300 μm處視網膜厚度明顯增加(P<0.05)。結果見圖1、表2。

圖1 各組小鼠視網膜光學相干斷層掃描圖像

表2 各組小鼠視網膜厚度比較(±s,μm)

表2 各組小鼠視網膜厚度比較(±s,μm)

注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

距中央凹300 μm厚度組別 只數 距中央凹150 μm厚度163.00±4.46 153.52±7.63*158.12±7.53#正常組模型組黃芪組6 6 4 160.67±3.89 151.79±6.81*156.12±7.05#

4.3 黃芪對模型小鼠視網膜組織CD105蛋白表達的影響

與正常組比較,模型組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達明顯升高(P<0.05);與模型組比較,黃芪組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達明顯降低(P<0.05)。結果見圖2、表3。

圖2 各組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達(免疫熒光染色,×400)

表3 各組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達比較(±s,%)

表3 各組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達比較(±s,%)

注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

組別正常組模型組黃芪組只數6 6 4平均光密度0.033±0.001 0.039±0.002*0.035±0.001#

4.4 網絡藥理學分析結果

4.4.1 黃芪有效成分及靶點

通過TCMSP數據庫檢索,并根據OB≥30%、DL≥0.18篩選,得到黃芪有效成分6個,見表4。通過SwissTargetPrediction數據庫檢索6個有效成分對應的靶點信息,剔除重復靶點后,得到127個靶點。

表4 黃芪有效成分信息(OB≥30%、DL≥0.18)

4.4.2 糖尿病視網膜病變相關靶點及交集靶點

在OMIM、GAD、TTD 3個數據庫檢索DR相關靶點,剔除重復靶點后,共獲得650個靶點。采用Venny 2.1將有效成分靶點與DR相關靶點取交集,共獲得58個交集靶點,韋恩圖見圖3。

圖3 黃芪治療DR相關靶點韋恩圖

4.4.3 蛋白相互作用網絡與核心靶點

將58個交集靶點導入STRING數據庫,得到PPI網絡(見圖4)。該網絡由58個節點、30條邊構成,平均節點數10.6。節點數靠前的靶點包括MMP2、GSK3B、EGFR、IL2、PPARG等。

圖4 黃芪治療DR靶點PPI網絡

4.4.4 GO功能和KEGG通路富集分析

將58個交集靶點導入DAVID數據庫進行GO富集分析,以P<0.01為篩選條件,選取前20條基因信息繪制條圖(見圖5)。對交集靶點進行KEGG通路富集分析,共獲得81條通路富集結果。根據P值由小到大選取前20條通路繪制氣泡圖(見圖6)。

圖5 黃芪治療DR靶點GO富集分析

圖6 黃芪治療DR靶點KEGG通路富集分析

4.5 黃芪對模型小鼠視網膜組織基質金屬蛋白酶2、糖原合成酶激酶-3β蛋白表達的影響

與正常組比較,模型組小鼠視網膜組織MMP2、GSK-3β蛋白表達明顯升高(P<0.05);與模型組比較,黃芪組小鼠視網膜組織MMP2、GSK-3β蛋白表達明顯降低(P<0.05)。結果見圖7、圖8、表5。

圖7 各組小鼠視網膜組織MMP2蛋白表達(免疫熒光染色,×400)

圖8 各組小鼠視網膜組織GSK-3β蛋白表達(免疫熒光染色,×400)

表5 各組小鼠視網膜組織MMP2、GSK-3β蛋白表達比較(±s)

表5 各組小鼠視網膜組織MMP2、GSK-3β蛋白表達比較(±s)

注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,#P<0.05

組別正常組模型組黃芪組只數6 6 4 MMP2 0.037 5±0.004 0.049 5±0.003*0.038 0±0.001#GSK-3β 0.037 5±0.004 0.045 1±0.002*0.037 7±0.001#

5 討論

DR屬中醫學“消渴目病”范疇[14]。劉完素指出,消渴可“變為雀目或內障”(《宣明論方·消渴總論》),《證治要訣》有“三清久之,精血既虧,或目無視”。其基本病機為本虛標實,以氣陰兩虛為本,瘀血阻絡為標,臨床上多用益氣養陰、活血化瘀法治療,效果顯著[15-16]。黃芪是臨床常用補氣藥,具有補氣升陽、生津養血等功效,對糖尿病及DR有一定作用。

CD105是細胞表面跨膜糖蛋白,在增殖的內皮細胞上表達[17]。有研究表明,CD105可參與血管發育,是新生血管形成的主要標志物[18]。新血管生成是DR的臨床特征之一,在DR的各階段,患者血漿CD105水平均明顯升高[19]。通過玻璃體注射DL-α-氨基己二酸建立視網膜新生血管疾病模型發現,模型組視網膜CD105表達較正常組明顯升高[20]。本研究采用免疫熒光染色檢測DR小鼠視網膜組織CD105表達,結果表明,模型組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達較正常組明顯升高,黃芪組小鼠視網膜組織CD105蛋白表達較模型組明顯降低,說明黃芪能抑制新血管生成。

DR早期特征為血-視網膜屏障破壞,這與內皮細胞緊密連接結構破壞密切相關。MMP2是MMPs家族的一員[21],由內皮細胞分泌[22],并通過調節細胞外基質Ⅳ型膠原以平衡基質合成與降解,進而在維持細胞完整性和細胞存活之間發揮關鍵作用[23]。研究表明,抑制MMP2過表達可抑制視網膜毛細血管內皮細胞凋亡[24]。在DR晚期階段,MMP2能促進新生血管生成[25],與非糖尿病組比較,患病12周的糖尿病大鼠視網膜MMP2 mRNA水平顯著升高[26]。本研究采用網絡藥理學分析發現,黃芪多個有效成分對應靶點MMP2,采用免疫熒光染色進一步驗證,結果表明,模型組小鼠視網膜組織MMP2表達較正常組明顯升高,黃芪組小鼠視網膜組織MMP2表達較模型組明顯降低,說明黃芪可能通過抑制MMP2表達抑制新血管生成。

DR發病機制與炎癥密切相關,GSK-3β被認為是治療炎癥相關疾病的潛在靶點[27]。GSK-3β是一種絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,在細胞生長、凋亡、信號傳導中發揮重要作用[28],其能夠調節視網膜內皮細胞黏附分子的表達和細胞周期,進一步導致DR內皮功能障礙及血-視網膜屏障破壞[29]。在STZ誘導的糖尿病小鼠模型中,模型組視網膜組織GSK-3β表達顯著升高[30]。本研究網絡藥理學結果表明,黃芪可調控GSK-3β,并且免疫熒光結果表明,黃芪能下調DR模型小鼠視網膜組織GSK-3β表達,提示黃芪可能通過GSK-3β改善小鼠DR。

綜上所述,黃芪對DR有明顯改善作用,其機制可能與下調CD105、MMP2、GSK-3β表達,進而抑制新血管生成有關。本研究初步探討了黃芪防治DR的作用機制,可為臨床應用黃芪治療DR提供實驗依據,但未考察不同劑量黃芪的作用效果,今后研究將進一步明確其量效關系。

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