原位發酵床處理干旱寒冷區農村廁所糞污研究

陳卓帛，李佳彬，李路瑤，劉雪，朱昌雄，羅良國，漆遠義，田蘭，耿兵*

（1.中國農業科學院農業環境與可持續發展研究所，北京 100081；2.張掖蘭標生物科技有限公司，甘肅 張掖 734000）

“小廁所，大民生”。廁所革命事關我國農村居民生活品質的提升。統計數據顯示，2019年末中國鄉村常住人口約5.5 億人[1]，每年廁所糞便總產量約4 000萬t。根據《2019 中國衛生健康統計年鑒》，我國農村廁所普及率已在80%以上，但是無害化衛生廁所的普及率較低[2]。目前，在我國相對成熟并已大力推廣使用的無害化衛生廁所主要有6 種技術類型：三格化糞池式、雙甕漏斗式、三聯沼氣池式、糞尿分集式、完整下水道式和雙坑交替式[3]。三格化糞池廁所適用范圍最廣，在我國大部分農村地區推廣應用[4]。雙甕漏斗和完整下水道廁所在平原水網地區有較大規模的推廣應用[5]。雙坑交替和糞尿分集廁所多適用于山地丘陵地區，可以滿足水資源缺乏和經濟欠發達地區農村改廁工作的需要[6]。三聯沼氣廁所可以實現廢棄物能源化，但是運行過程容易受到低溫條件的限制。

我國甘肅、新疆和內蒙古等省份屬于典型的干旱寒冷地區，具有水資源缺乏、晝夜溫差大和冬季干燥寒冷的特點，致使水沖式廁所在農村的使用受到限制，改廁可選擇的技術類型較少。2021年12月，中共中央辦公廳、國務院辦公廳印發的《農村人居環境整治提升五年行動方案（2021—2025 年）》強調，加快研發干旱和寒冷地區衛生廁所適用技術和產品。因此，亟需探索和研究適用于干旱寒冷地區的農村改廁與糞污處理方式[7]。微生物原位發酵床養殖技術是將畜禽直接飼養在以谷殼、鋸末和米糠等組成的墊料上，利用微生物發酵原理，原地將畜禽糞尿降解轉化，從而實現環保無污染排放的畜禽養殖模式[8-9]。目前，關于微生物原位發酵床技術的研究主要集中于畜禽養殖污染控制與糞污資源化利用方面，包括生豬、家禽及奶牛養殖等[10]。發酵床廢棄墊料含有豐富的氮、磷、鉀等養分和有機質，可作為有機肥加工的原料[11-12]。近年來，微生物原位發酵床技術在國內外農村廁所改造工作中得到了應用，不僅節約了水資源，降低了環境污染，還實現了糞污的資源化利用[13-15]。但是，目前關于微生物原位發酵床處理干旱寒冷地區農村廁所糞污效果及運行參數的研究尚未見報道。

本研究將微生物原位發酵床技術用于干旱寒冷地區農村改廁與糞污處理，首次系統分析了不同服務人數微生物發酵床墊料中的營養成分含量、種子發芽指數，蛔蟲卵死亡率及糞大腸菌群數，并對腐熟后的墊料進行肥效和安全性評價，從而為原位發酵床技術用于農村改廁與糞污處理提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 試驗方法

試驗在甘肅省張掖市甘州區上秦鎮農戶使用的微生物原位發酵床廁所中進行。所有處理使用的廁所坐便器尺寸為1.10 m×0.61 m×0.71 m，其中用于糞污發酵處理的發酵床體積約為66 L，墊料深度為0.50 m。發酵床由加厚泡沫塑料制成，具有保溫效果，并帶有自動攪拌裝置，每次使用后自動翻堆，保障物料混合均勻。將粉碎后的玉米秸稈和木屑按照1∶1（質量比）混合，初始添加墊料為4 kg，約占生物處理槽體積的2/3，并添加300 g微生物發酵菌劑。微生物菌劑由中科院天津工業生物技術研究所提供，5 株菌株編號分別為：BD-T-1，BD-T-3，BD-T-6，BD-TI-1 和BD-TI-2。混合墊料初始基本理化性質如下：pH 值為6.9，電導率（EC）為2.13mS·cm-1，含水率為15.27%，碳氮比（C/N）為70.01，有機質含量為85.25%，總氮（TN）為0.82%，總磷（TP）為1.16%，總鉀（TK）為0.74%，總養分含量（總氮、氧化鉀和五氧化二磷的總百分含量）為4.90%，細菌總數為1.68×108CFU·g-1。

試驗選取正常使用的微生物原位發酵床戶廁共8 處，表示為F1～F8。試驗過程中每戶使用廁所的人數基本保持恒定，并統計每天廁所使用次數。按照一個成年人每次排便為0.14 kg[16]計算試驗全過程糞便投入量，具體見表1。

表1 原位發酵床80 d日均糞便投入量Table 1 Daily manure input in in-situ microbial fermentation systems bed for 80 days

試驗按照五點取樣法取樣，即先確定對角線的中點作為中心抽樣點，再在對角線上選擇4 個與中心樣點距離相等的點作為樣點，每次取樣共100 g，樣品混勻后裝入自封袋備用。于第0、10、20、30、40、50、60、70、80 天測定墊料的溫度、含水量、pH 值和EC；試驗結束后（即第80 天）測定墊料中TN、TP 和TK。在試驗進行的第40 天和第80 天測定墊料中細菌、真菌和放線菌的數量。按照文獻[8-10]的方法測定墊料含水量和微生物數量。墊料有機質、TN、TP 和TK 采用《有機肥料》（NY/T 525—2021）中的相關方法測定。

1.2 指標測定方法

TN 采用凱氏定氮法測定，TP 采用釩鉬黃顯色光度法測定，TK 采用原子吸收分光光度法測定，有機質含量采用重鉻酸鉀-硫酸法測定[10]。采用四分法取樣品5 g于100 mL錐形瓶內，加入50 mL去離子水，將錐形瓶放入振蕩器中以180 r·min-1的轉速振蕩30 min，靜置30 min 后，分別用pH 計和電導率儀測定上清液的pH 值和EC 值。采用平板計數法對墊料中的微生物數量進行測定，其中細菌在37 ℃恒溫條件下，采用牛肉膏蛋白胨培養基培養1～2 d后計數；真菌在28 ℃恒溫條件下，采用馬丁培養基培養3～4 d 后計數；放線菌在28 ℃恒溫條件下，采用改良高氏一號培養基培養5～7 d后計數。根據3種微生物培養后菌落的生長情況，選取30～300 之間菌落的平板進行計數。按照《糞便無害化衛生要求》（GB 7959—2012）的方法測定試驗結束后墊料中的糞大腸菌群、蛔蟲卵死亡率和沙門氏菌，其中糞大腸菌群數采用多管發酵法測定，蛔蟲卵死亡率采用沉淀集卵法測定，沙門氏菌采用顯色培養基法測定。將新鮮墊料按1∶10（m∶V）與去離子水混合振蕩，取5 mL 浸提液置于墊有濾紙的培養皿中，將經過預處理的甘藍種子放入恒溫培養箱（25 ℃，濕度70%）中培養48 h，測定其種子發芽率和根長。每個樣品3 個重復，每個重復10 粒種子，同時用去離子水做空白試驗（對照）。按照以下公式計算種子發芽指數（GI），最后取平均值。

發芽指數＝（濾液組種子發芽率×濾液組種子發芽根長）/（對照組種子發芽率×對照組種子發芽根長）×100%。

1.3 數據分析

利用Origin 2019和SPSS 22.0軟件對試驗數據進行統計分析并繪圖，采用單因素方差和Duncan檢驗法分析顯著性差異；利用Pearson相關系數分析顯著相關性。

2 結果與分析

2.1 發酵床墊料的溫度變化

由圖1 可見，微生物原位發酵床戶廁環境溫度（SW）在3～13 ℃之間波動，而F8～F2 發酵床墊料的溫度明顯高于SW，在試驗開始后的第40～50 天分別達到高峰，之后溫度下降，到第80天溫度降至15 ℃以下接近室溫，發酵結束。其中，F8 號發酵床墊料溫度最高達到了44.33 ℃；F6和F7號發酵床墊料溫度最高分別達到了51.66 ℃和50.24 ℃，且在35 ℃以上維持了10 d 左右；F3、F4 和F5 號發酵床墊料溫度最高為37.46～44.33 ℃；F1 和F2 號發酵床墊料溫度最高分別達到了30.67 ℃和34.33 ℃。

圖1 試驗過程中發酵床墊料的溫度變化Figure 1 Changes of temperature in the padding during fermentation

2.2 發酵床墊料的pH值和EC值變化

如圖2所示，所有發酵床墊料的pH值總體隨試驗進行呈先上升后下降的趨勢，最后穩定在8 左右。在試驗開始后，所有發酵床墊料的pH 值在0～20 d 均快速升高，在20～30 d除F6號發酵床以外，其他發酵床墊料pH值均緩慢升高，在30～60 d，除F1和F7號發酵床以外，其他發酵床墊料pH值上升到8.5以上，在70～80 d，所有發酵床墊料pH值逐漸穩定在7.36～8.49之間。

圖2 試驗過程中發酵床墊料的pH值變化Figure 2 Changes of pH value in the padding during fermentation

圖3 是試驗過程中發酵床墊料EC 值隨時間的變化情況。所有發酵床墊料的EC值在前10 d內均呈上升趨勢，從初始墊料的2.13 mS·cm-1上升到2.22～3.52 mS·cm-1之間，在10～20 d EC 值總體下降到1.98～3.08 mS·cm-1之間，在20～60 d，EC 值在1.48～3.27 mS·cm-1之間波動，最后在第80 天時穩定在1.96～2.48 mS·cm-1之間。EC 值在試驗過程中變化幅度較小，總體呈先上升后下降，最后趨于穩定的趨勢。試驗結束時，所有發酵床墊料的EC值均在2.48以下。

圖3 試驗過程中發酵床墊料的EC值變化Figure 3 Changes of EC value in the padding during fermentation

2.3 發酵床墊料的含水率變化

發酵床墊料的含水率變化情況如圖4 所示。隨著試驗的進行，所有發酵床墊料的含水率呈現波動上升再下降的趨勢，其中在50～60 d 達到最高值。F6 和F7號發酵床及F3、F4和F5號發酵床墊料的含水率在40～60 d 時始終保持在32.24%～58.81%之間，在70～80 d 時逐漸穩定在35.23%～52.34%之間；F1 和F2 號發酵床墊料的含水率在40～60 d 時處于14.20%～32.29%之間，在第70～80 d 時保持在30.25%～32.10%之間；F8 號發酵床墊料的含水率在第30 天達到55.55%后逐漸上升至第50 天的71.67%，然后逐漸下降，在70～80 d時維持在60.24%左右。

圖4 試驗過程中發酵床墊料的含水率變化Figure 4 Changes of moisture content in the padding during fermentation

2.4 發酵床墊料的營養成分變化

如表2 所示，與初始墊料相比，試驗結束后所有發酵床墊料的TN 含量均有所提高，其中F8、F6、F7和F5 號發酵床墊料的TN 含量提高幅度較大，由初始的0.82%分別提高到3.13%、2.99%、3.06%和3.38%；除F8、F1 和F2 號發酵床墊料TP 含量提高不顯著外，其余發酵床墊料TP 含量與初始墊料相比均顯著提高；所有發酵床墊料的TK 含量在試驗結束時均有所提高，其中F3、F6、F7 和F5 號發酵床墊料的TK 含量提高幅度較大，由初始的0.74%分別提高到1.67%、1.51%、1.40%和1.55%。所有發酵床墊料的C/N 均有顯著降低，降低幅度排序為F5＞F7＞F6＞F3＞F1＞F8＞F4＞F2。與初始墊料相比，試驗結束時F1～F8 號發酵床墊料的總養分含量分別增加了3.07、2.21、5.41、4.88、6.16、5.19、5.70、3.28個百分點，其中F3、F4、F5、F6、F7號發酵床墊料的總養分含量較高，而F8、F1 和F2 號發酵床墊料的總養分含量較低。

表2 試驗前后發酵床墊料的營養成分含量Table 2 Content of nutrient components in the padding before and after the experiment

2.5 發酵床墊料的微生物數量變化

試驗初始、第40 天及第80 天墊料中微生物（細菌、真菌和放線菌）的數量情況見圖5。從圖5可以看出，初始墊料的微生物數量較低，隨著發酵床內不斷添加糞污，墊料內微生物大量繁殖，數量均有所提升。其中真菌的數量始終在較低水平，維持在105～106數量級，細菌的數量在109～1010數量級，放線菌的數量則維持在108～109數量級。除F8和F3號發酵床外，其余發酵床墊料真菌數量呈現先增高后降低的趨勢；在第40天，F7和F4號發酵床墊料的細菌數量分別為5.80×109、1.63×1010CFU·g-1，顯著高于其他發酵床；除F8和F1 號發酵床外，其余發酵床墊料放線菌的數量呈現先增高后降低的趨勢，其中，F1和F2號發酵床墊料放線菌總數較高。

圖5 試驗過程中發酵床墊料微生物（細菌，真菌和放線菌）的數量變化Figure 5 Changes of the number of microorganisms（bacteria，fungi and actinomycetes）in the padding during fermentation

2.6 發酵床墊料的安全性評價

2.6.1 種子發芽指數

從圖6可以看出，初始墊料（W0）的GI值為68.43%，第80天，除F1號發酵床墊料的GI值為42.77%外，其余各發酵床墊料的GI值均高于60%，其中F8、F3、F6、F7 號發酵床墊料的GI 值均高于80%，分別為87.51%、80.93%、85.54%、88.17%。

圖6 發酵床墊料的種子發芽指數Figure 6 The germination index of the padding

2.6.2 發酵床墊料的糞大腸菌數，蛔蟲卵死亡率和沙門氏菌

從表3可以看出，除F1號發酵床墊料的糞大腸菌數大于100 個·g-1外，其余各發酵床墊料的糞大腸菌數均小于100 個·g-1；除F1 號發酵床墊料的蛔蟲卵死亡率小于95%外，其余各發酵床墊料的蛔蟲卵死亡率均大于95%；所有發酵床墊料均未檢出沙門氏菌。

表3 發酵床墊料的病原微生物及其標準Table 3 Contents and standards of pathogen parameters in the padding

3 討論

3.1 發酵床填料溫度變化分析

在好氧發酵過程中，溫度是判斷發酵床發酵效果和腐熟度的重要指標，也是影響微生物活性的重要因素[17-18]。有研究表明在好氧堆肥過程中，溫度對糞便中有機物的生化降解速率有顯著影響，高溫下有機物的殘留量小于中溫下有機物的殘留量[19-20]。堆肥過程一般包括3個階段：升溫階段（＜45 ℃）、高溫階段（＞45 ℃）和腐熟階段[21]。李佳彬等[20]的研究表明在利用微生物異位發酵床處理農村廁所糞污過程中墊料溫度從第2天開始迅速上升，在第5天時達到最高值。與微生物異位發酵床不同，不同服務人數的原位發酵床墊料溫度升高趨勢較為緩慢，在第40～50 天時達到最高值。本研究發現不同服務人數發酵床墊料的溫度升高趨勢和最高溫度有所不同，其中，服務人數在7 人·d-1的F8 號發酵床墊料最高溫度可達44.33 ℃，服務人數在4 人·d-1的F6 和F7 號發酵床墊料最高溫度分別可達51.66 ℃和50.24 ℃，低于微生物異位發酵床墊料的最高溫度[22]；服務人數在2 人·d-1的F3、F4和F5 號發酵床墊料最高溫度為37.46～44.33 ℃；服務人數在1 人·d-1的F1 和F2 號發酵床墊料最高溫度僅為30.67 ℃和34.33 ℃。適當的服務人數及糞便投加量對維持發酵床墊料合適的含水率和C/N，以及促進微生物活動具有重要作用。有研究表明，物料含水率在45%～65%時最有利于微生物發酵[23]。通過分析發酵床墊料的含水率和C/N 發現，第50 天，F8 號發酵床墊料的C/N 為17.11，含水率高達71.67%，不利于微生物發酵；F3、F4 和F5 號發酵床墊料含水率分別為46.44%、47.06%和42.77%，基本適宜微生物發酵，但墊料的C/N 分別為35.86、37.39 和30.44，不利于微生物發酵；F6和F7號發酵床墊料的C/N 分別為24.46和26.96，含水率分別為51.50%和59.94%，較有利于微生物發酵；而F1和F2號發酵床墊料C/N 分別為36.86和40.16，含水率分別為28.89%和19.89%，也不利于微生物發酵。

3.2 發酵床墊料的pH值和EC值變化分析

通常認為pH 值6.5～8.5 為微生物好氧發酵適宜的pH 值范圍[23]。本研究中，在30～60 d時部分發酵床墊料的pH值上升到8.5以上，這說明在發酵過程中微生物代謝可能產生了堿性物質，但是隨著試驗的進行所有發酵床墊料的pH 值最終穩定在7.36～8.49 之間。根據《有機肥料》（NY/T 525—2021）規定，pH 值為5.5～8.5 的有機肥料可施用于農田，本試驗結束時所有發酵床填料的pH 值均符合該標準。EC 值表示發酵床墊料的可溶性鹽含量，EC 值越高，表明墊料中可溶性鹽含量越高[21]。在本研究過程中墊料的EC 值變化幅度較小，總體呈先上升后下降，最后趨于穩定的趨勢。這是由于試驗初期微生物代謝活躍，有機物礦化溶解作用劇烈，產生無機鹽及各種離子（如磷酸鹽和銨離子），引起EC 值升高，而氨揮發和無機鹽的析出可能是試驗后期EC值下降的原因。一般認為墊料EC 值小于9.0 mS·cm-1時不會對種子發芽產生抑制[24]。本試驗結束時，所有發酵床墊料的EC 值均在2.48 mS·cm-1以下，說明鹽漬化風險較小。

3.3 發酵床墊料的含水率變化分析

在好氧發酵過程中，物料的含水率是影響發酵進程及有機質降解率的主要因素[25]，它不僅會影響物料堆體的氧氣運輸量，還可以調節發酵溫度、物料孔隙率以及微生物活性等[26]。研究表明，物料的含水率維持在55%～60%的范圍內，才能夠保證好氧堆肥的正常進行[23]。在本研究中，不同服務人數的發酵床墊料的含水率變化情況各不相同，但總體上呈現波動上升后下降的趨勢，其中服務人數為4 人的F6 和F7 號發酵床和服務人數為2人的F4和F5號發酵床在試驗開始后的30～40 d 時墊料的含水率始終保持在40%以上，基本滿足微生物的生長條件；服務人數為1人的2個發酵床在試驗開始的40 d 后含水率僅在14.20%～32.29%，表明使用頻率低、糞便投入量不足會導致墊料含水率不足，從而影響微生物活性和墊料的腐熟度[27]。值得注意的是，F8 號發酵床墊料含水率在第50天時高達71.67%，超出微生物發酵的適宜范圍，這種情況容易造成墊料局部厭（缺）氧環境，同時不利于發酵床內空氣擴散，從而產生大量CH4、N2O 和H2S 等污染氣體[28]。

3.4 發酵床墊料的營養成分變化分析

通常來說，TN、TP、TK、有機質含量及C/N 是評價堆肥腐熟程度的指標[29]。一般認為，微生物生長發育和繁殖的最適C/N 為20～30[30]。本研究中，F8 號發酵床墊料的C/N 在第50 天時為17.11，在第80 天時為12.85，并且試驗結束時TN 顯著提高，而TP 和TK 提高不顯著，這可能是由于F8 號發酵床戶廁使用人數較多，為墊料提供了較多的氮源，導致C/N 較低。另外，在第50天時F8號發酵床墊料的含水率達到72%，含水率過高會導致好氧菌數量和氨揮發量的大幅度減少[31]。F6和F7號發酵床墊料的C/N 在第50天時分別為24.46和26.96，在第80天時降至10.26和9.89，并且試驗結束時TN、TP 和TK 均顯著提高。另外，在第50 天時F6 和F7 號發酵床墊料的含水率分別為51.50%和59.94%，較適宜發酵。F3、F4和F5號發酵床墊料的C/N在第50天時分別為35.86、37.39 和30.44，在第80 天時分別降至12.22、13.10 和9.11，并且試驗結束時TN 顯著提高，這可能是由于使用人數較少，為墊料提供的氮源不足，導致C/N 較高。F1 和F2 號發酵床墊料的C/N 在第50 天時分別為36.86 和40.16，在第80天時分別降至12.59和16.30，試驗結束時TN 顯著提高，TP 提高不顯著，這可能是由于使用人數太少，為墊料提供的氮源嚴重不足，導致C/N 較高。試驗結束時所有發酵床墊料的總養分含量和有機質含量均符合《有機肥料》（NY/T 525—2021）的相關規定。

3.5 發酵床墊料的微生物數量變化分析

微生物發酵床功能的發揮緊緊依賴于本土微生物及菌劑微生物的協同作用，而微生物的數量變化可以反映出發酵床的運行情況[32]。本研究中發酵床墊料的微生物以細菌為主，其數量在109～1010數量級，高于微生物異位發酵床墊料的細菌數量（107～108）[21]，并且隨著原位發酵床戶廁的使用，細菌數量呈不斷上升趨勢。在第40 天時，F7 和F4 號發酵床墊料的細菌數量遠高于F1 和F2 號，這是由于F7 和F4 號發酵床的糞污投加量保障了墊料更適宜的C/N，有利于細菌生長；同時，F7 和F4 號發酵床墊料的pH 值分別為8.24和8.19，較適合細菌的生長。其中，F4號發酵床墊料在第40天時達到44.67 ℃，高溫可能與耐熱氨化細菌的大量繁殖與抑制有關[33]，而在發酵床運行后期（60～70 d），較高的墊料pH值（＞8.5）抑制了氨化細菌繁殖，導致細菌數量下降。另外，在第40 天時，F8、F3、F6 和F5 號發酵床墊料的pH 值分別為8.99、8.93、9.17 和9.11，pH 值過高可能抑制細菌的生長[34]。除F8 和F3號發酵床外，其余發酵床墊料的真菌數量呈現先增高后降低的趨勢，這說明試驗進行到40 d左右時的墊料環境更適宜真菌繁殖，而試驗后期真菌被其他微生物替代，總體始終維持在105～106數量級的較低水平[20]。放線菌的數量在試驗過程中呈現先增高后降低的趨勢，這是因為在高溫階段（＞45 ℃）放線菌和其他嗜熱菌大量繁殖，進入腐熟階段后中溫微生物繁殖并分解剩余糖類，導致放線菌和其他嗜熱菌數量下降[35]。由于墊料pH 值過高（＞8.5）抑制了放線菌的繁殖，導致F8、F3 和F6 號發酵床墊料放線菌數量整體較低。放線菌數量總體維持在108～109的數量級。

3.6 不同服務人數發酵床墊料的安全性評價

種子發芽試驗是檢測腐熟墊料對植物是否具有毒性的直接方法[23]。研究表明，當GI＞50%時，認為填料對植物已基本沒有毒性，當GI＞80%時，認為物料已完全腐熟[36]。本研究中，初始墊料的GI 值為68.43%，說明初始墊料并未腐熟。第80 天，僅F8、F3、F6 和F7 號發酵床墊料的GI 值在80%以上，其余發酵床墊料的GI 值在42.77%～73.69%之間，這說明僅有4 個戶廁的墊料在試驗結束時達到了腐熟的要求。其中F1 號發酵床墊料的GI 值為42.77%，這可能是由于墊料發酵腐熟不完全，產生一定量的有機酸[37]和NH+4-N[38]，對種子萌發起到抑制作用。除F1 號發酵床墊料外，試驗結束時其他發酵床墊料的糞大腸桿菌數和蛔蟲卵死亡率均符合《糞便無害化衛生要求》（GB 7959—2012）中的限定值，這說明經微生物發酵床充分發酵腐熟處理后農村廁所糞污具有較高的生物安全性，可實現無害化目標。對于F1 號發酵床墊料需要進一步發酵腐熟處理，否則無法對墊料進行資源化利用。

4 結論

（1）在體積大小約66 L 的發酵床中，適當的服務人數及糞便投加量對維持發酵床墊料合適的C/N、促進微生物活動具有重要作用。服務人數為4 人的發酵床墊料最高溫度在50 ℃以上，確保了墊料的腐熟。

（2）發酵床墊料中的微生物以細菌為主，其數量在109～1010數量級，并始終保持較高水平。不同服務人數的發酵床墊料的含水率總體上呈先波動上升后下降的趨勢。服務人數為1 人時墊料含水率過低及服務人數為7 人時墊料含水率過高均不利于發酵床運行。試驗結束時所有發酵床墊料的總養分含量和有機質含量均符合《有機肥料》（NY/T 525—2021）的相關規定，并且電導率均在2.48 mS·cm-1以下，鹽漬化風險較小。

（3）試驗結束時F8、F3、F6 和F7 號發酵床墊料的GI 值在80%以上，達到了腐熟的要求。除F1 號發酵床墊料外，其他發酵床墊料的糞大腸桿菌數和蛔蟲卵死亡率均符合《糞便無害化衛生要求》（GB 7959—2012）中的限定值。