梁振瑞,張 薇,許紹坤,李鮮鮮,馮 紅,自武全
(云南瑞栢泰生物科技有限公司,云南昆明 650000)
沙門氏菌是革蘭氏陰性菌,屬于腸桿菌科,是常見的食源性致病菌,目前已知血清型有2 500 個以上[1-3]。人一旦攝入了含有大量沙門氏菌的食品,就會引起細菌性感染,進而導致食物中毒、急性腸胃炎等疾病,因此,沙門氏菌檢測是各個國家檢驗機構的必檢項目之一[4]。目前,檢測沙門氏菌的方法有很多,如酶聯免疫法[5]、PCR 法等[6],但這些檢測方法都存在檢測過程煩瑣、檢測周期長的弊端[7]。近年來,隨著新技術的不斷發展與完善,以分子生物學技術為基礎的分析檢測方法迅速發展[8-9]。因此,建立一種快速簡便的沙門氏菌檢測方法具有重要意義。
等溫擴增熒光技術是核酸等溫擴增和熒光技術結合的新型核酸診斷POCT 技術,針對目的片段設計4 ~6 條特異引物。使用DNA 聚合酶,通過添加熒光染料實時監控整個擴增過程,分析實時擴增曲線和產物熔解曲線對產物進行定性或半定量。等溫擴增熒光技術對溫度精準度要求低,只需要恒定溫度就能完成擴增反應,不需要預先進行雙鏈DNA 的變性,大大縮短了反應時間。由于該方法具有操作簡單、反應快速、靈敏度和特異性強等優勢,已被廣泛用于病原體的快速檢測。
沙門氏菌、大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、志賀氏桿菌、惡臭假單胞菌(簡稱:SM、DC、JP、ZH、EC)由云南國際旅行衛生保健中心(昆明海關口岸門診部)提供。
電泳儀、電泳槽、電子天平、微波爐、凝膠成像儀、OPG GENIE Ⅱ系統等溫擴增熒光系統(OptiGene 公司)、恒溫水浴鍋、大龍移液器等。
1.3.1 DNA 的提取
采用菌液直接擴增法提取DNA,按1 ∶1 的比例加入裂解液與菌液混合,95 ℃水浴或金屬浴加熱5 min,備用。
1.3.2 引物的設計
利用美國NCBI 提供的BLAST 在線軟件分析沙門氏菌中的SSAQ 基因目標序列,結合快速熒光PCR 法對目標片段的要求,篩選出長度為1 079 bp穩定的保守區域,作為引物設計的目標片段,并利用目標片段序列作為引物探針,針對保守區使用Lamp Designer 軟件設計引物SM-1,其包括1 對內引物(FIP,BIP)和1 對外引物(F3,B3)。
1.3.3 等溫擴增熒光法的建立
向擴增反應管中加入2.5 μL 沙門氏菌DNA,18.5 μL 反應液,4 μL 引物,陰性對照加2.5 μL ddH2O,混勻。用GENIE Ⅱ設置擴增程序65 ℃反應40 min,熔解程序98 ~80 ℃,0.05 ℃為1 個循環,根據擴增曲線和熔解曲線判定實驗結果。
(1)特異性檢測試驗。用等溫擴增熒光法對沙門氏菌和其他非沙門氏菌(大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、志賀氏桿菌和惡臭假單胞菌)菌株提取的DNA 分別進行擴增。
(2)靈敏度檢測實驗。將沙門氏菌核酸樣本(初始濃度為528 ng·μL-1)10 倍比依次稀釋至10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8、10-9和10-10濃度檢測最低檢測限。取八連管,每管分裝18.5 μL Mix,4 μL 引物組,2.5 μL 樣本,用ddH2O 作陰性對照。65 ℃反應40 min;熔解程序為98 ~80 ℃進行上機擴增。
1.3.4 常規PCR 檢測沙門氏菌
(1)重復性實驗。向擴增反應管中加入1 μL 沙門氏菌DNA(未稀釋),12.5 μL 反應液,2 μL 引物(上游引物、下游引物各1 μL),9.5 μL ddH2O,混勻,設置一個空白對照,以ddH2O 代替,重復7 次,設置程序開始運行。完成電泳后,將凝膠塊放置凝膠成像儀中,觀察電泳條帶。
(2)靈敏度檢測實驗。將沙門氏菌核酸樣本(初始濃度為528 ng·μL-1)10 倍比依次稀釋至10-1、10-2、10-3、10-4、10-5和10-6濃度檢測最低檢測限。設置一個原液濃度、一個空白對照,分別對擴增后不同濃度的沙門樣本進行電泳分析,根據其條帶的亮度和清晰度分析其最低檢測限。
引物設計完成后,使用BLAST 軟件比對,結果發現,引物序列與沙門氏菌基因高度重合,且未匹配到其他病原的序列信息,初步證明SM-1 引物有比較高的特異性。
2.2.1 特異性檢測試驗
對沙門氏菌和其他4 種非沙門氏菌(大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、志賀氏桿菌和惡臭假單胞菌)同時進行檢測,其結果只有沙門氏菌出現了特異性擴增,起峰時間在30 min 以內,將時間延長至1 h 后其他樣本也未出現擴增,說明該試劑盒只針對沙門氏菌進行特異性檢測。
2.2.2 靈敏性檢測實驗
由表1 可知,當樣本檢測濃度大于等于10-4時,本試驗所建立的等溫擴增熒光檢測方法均能在30 min 內檢出;當檢測濃度低于10-4時未出現完整的擴增曲線,說明建立的等溫擴增熒光技術能快速檢測沙門氏菌的濃度為10-4,檢測限為5.28×10-2ng·μL-1。

表1 靈敏度檢測實驗結果
2.3.1 PCR 方法檢測沙門氏菌的重復性
對沙門氏菌的DNA(未稀釋)進行PCR 擴增,重復10 次,均可見清晰明顯的288 bp 大小的條帶,與預期結果吻合,說明該引物重復性好。
2.3.2 PCR 方法檢測沙門氏菌的靈敏度
菌液稀釋到10-3時候擴增效果不穩定,有微弱的條帶但時常不會顯現,因此判斷10-2為常規PCR的最穩定的最低檢測濃度,檢測限為5.28 ng·μL-1,詳見圖1。與等溫擴增熒光法相比,檢測的靈敏度弱于等溫擴增熒光法。

圖1 沙門氏菌不同濃度電泳結果
傳統的沙門氏菌檢測方法整個過程需4 ~5 d,且過程煩瑣[10]。聚合酶鏈式反應在沙門氏菌診斷方法中具有較高的特異性和靈敏度,是沙門氏菌感染診斷中最具有應用前景的一種方法。然而,常規PCR 檢測時間長,對反應環境要求較高,且檢測儀器笨重。因此,建立一種反應快速、操作簡單、特異性靈敏的方法至關重要。目前,等溫擴增熒光法是一種能在恒定溫度下進行體外核酸擴增的技術,已被廣泛應用于醫學病原物檢測、食品安全檢測和植物病原物的檢測等方面[11],有著極為廣泛的應用前景。
本文測試了4 種非沙門氏菌(大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、志賀氏桿菌和惡臭假單胞菌),結果發現,本方法只對沙門氏菌的檢測結果呈陽性,而對4 種非沙門氏菌的檢測結果呈陰性,表明該方法特異性良好。同時梯度稀釋方法進行沙門氏菌的靈敏度試驗,并與常規PCR 檢測方法進行了比較。結果表明,本試驗建立的等溫擴增熒光法檢測沙門氏菌的靈敏度為5.28×10-2ng·μL-1,而常規PCR 的檢測限為5.28 ng·μL-1,比常規PCR 靈敏100 倍。
等溫擴增熒光法不需要反復變換溫度,檢測速度、易攜性等方面比PCR 有很大的優勢,有著操作簡單、快速、敏感性和特異性好等特點,具有良好的發展前景,是病原檢測的一項重要技術。