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GSDMD 單域抗體的篩選及功能探究

2023-12-07 03:32:36高秋雲(yún)孫亞楠馬振毅
關(guān)鍵詞:實(shí)驗(yàn)檢測(cè)

高秋雲(yún),孫亞楠,馬振毅

(天津醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生物化學(xué)與分子生物學(xué)系,天津 300070)

細(xì)胞焦亡(pyroptosis)是一種程序性細(xì)胞死亡方式,其特定的細(xì)胞形態(tài)特征是形成氣泡樣囊泡,細(xì)胞體積增大,細(xì)胞器變形,細(xì)胞核變小,導(dǎo)致細(xì)胞膜破裂[1]。細(xì)胞焦亡在細(xì)胞增殖、微生物感染、腫瘤的發(fā)生和轉(zhuǎn)移以及細(xì)胞死亡過(guò)程中發(fā)揮重要作用[2]。GSDMD 是目前研究最多,機(jī)制研究相對(duì)完整的一種焦亡相關(guān)蛋白[3],含有N 端結(jié)構(gòu)域(GSDMD-NT)和C 端結(jié)構(gòu)域(GSDMD-CT)[4],主要表達(dá)于免疫細(xì)胞和小腸黏膜上皮細(xì)胞表面[5]。由于GSDMD 是焦亡的執(zhí)行蛋白[6],理論上可以通過(guò)調(diào)控GSDMD 的功能來(lái)操控焦亡過(guò)程。

單域抗體(sdAb)又稱(chēng)納米體(nanobody),相對(duì)分子質(zhì)量為15 000~20 000 Da。它由4 個(gè)框架區(qū)(FR1~FR4)和3 個(gè)互補(bǔ)決定區(qū)(CDR1、CDR2、CDR3)組成,其中CDR3 是主要特異性抗原識(shí)別的區(qū)段[7]。與傳統(tǒng)抗體相比,sdAb 具有分子量小、特異性強(qiáng)、高親和力和跨膜運(yùn)輸?shù)忍匦?,能夠靶向?xì)胞內(nèi)抗原,在疾病的診斷和治療方面具有廣闊的應(yīng)用前景[8]?;诖?,筆者試圖通過(guò)篩選抗GSDMD 的sdAb,來(lái)調(diào)控GSDMD 介導(dǎo)的焦亡,為臨床上控制焦亡相關(guān)疾病的進(jìn)展提供新思路。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料 細(xì)胞系:人源單核細(xì)胞THP-1、胚腎細(xì)胞293T、宮頸癌細(xì)胞HeLa、骨肉瘤細(xì)胞U2OS、結(jié)腸癌細(xì)胞HT29、淋巴瘤細(xì)胞U937、非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞A549 均為本實(shí)驗(yàn)室保存;DMEM、胎牛血清購(gòu)自Biological Industries 公司;原位鄰位連接(isPLA)相關(guān)試劑購(gòu)自Sigma-Aldrich;Protein G Sepharose 4 Fast Flow,Glutathione Sepharose 4B 和Ni2+NTA agarose beads 均購(gòu)自Cytiva;白細(xì)胞介素(IL)-1β ELISA 檢測(cè)試劑盒購(gòu)自碧云天;LDH 檢測(cè)試劑盒購(gòu)自索萊寶。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 293T、HeLa、U2OS 和HT29 細(xì)胞用含有10%胎牛血清、100 U/mL 青霉素和100 μg/mL鏈霉素、非必需氨基酸的DMEM 培養(yǎng)液;THP-1、A549和U937 細(xì)胞用含有10%胎牛血清、100 U/mL 青霉素和100 μg/mL 鏈霉素、非必需氨基酸的RPMI-1640 培養(yǎng)液,于37℃,5% CO2的恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

1.2.2 isPLA 結(jié)合高通量測(cè)序篩選抗GSDMD 的sdAbs 將實(shí)驗(yàn)室前期構(gòu)建的Flag-sdAb 文庫(kù)和HA-GSDMD 以及陰性對(duì)照質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染進(jìn)HEK293T細(xì)胞中,48 h 后收集細(xì)胞,隨后對(duì)收集的細(xì)胞進(jìn)行PLA 實(shí)驗(yàn),在isPLA 后,通過(guò)流式細(xì)胞儀分選紅色熒光信號(hào)的細(xì)胞,將陽(yáng)性細(xì)胞作為模板擴(kuò)增CDR3區(qū),構(gòu)建sdAb 亞庫(kù),重復(fù)上述步驟進(jìn)行3 輪篩選,最終將擴(kuò)增CDR3 產(chǎn)物送至諾禾致源公司進(jìn)行二代測(cè)序。實(shí)驗(yàn)方法參照相關(guān)文獻(xiàn)[9]。

1.2.3 細(xì)胞isPLA 實(shí)驗(yàn) 將篩選到的CDR3 序列構(gòu)建到帶有3×Flag 的sdAb 骨架載體上,同陰性對(duì)照質(zhì)粒一起分別和HA-GSDMD、GSDMD-NT、GSDMD-CT 共轉(zhuǎn)入HEK293T 中。隔天將細(xì)胞鋪至載玻片上,待細(xì)胞貼壁后進(jìn)行PLA 實(shí)驗(yàn),DAPI 染核后,封片,避光低溫保存。實(shí)驗(yàn)方法參照相關(guān)文獻(xiàn)[9]。

1.2.4 GST pull down 實(shí)驗(yàn) 分別將GSDMD 構(gòu)建在GST 標(biāo)簽的原核表達(dá)載體上,篩選的sdAb 序列構(gòu)建在His 標(biāo)簽的原核表達(dá)載體上,進(jìn)行原核誘導(dǎo)表達(dá),菌液中加入IPTG 至終濃度0.2 mmol/L,16℃誘導(dǎo)過(guò)夜。將菌液超聲破碎后離心收集上清,分別加入GST珠子和Ni 珠,4℃搖床孵育2 h。孵育結(jié)束后,將珠子用新鮮裂解液洗滌3 次,將His 標(biāo)簽蛋白使用50 mmol/L咪唑洗雜后,用300 mmol/L 咪唑?qū)is 標(biāo)簽蛋白洗脫下來(lái)。將洗脫下來(lái)的His 標(biāo)簽蛋白加入到結(jié)合了GST 標(biāo)簽蛋白的珠子中,4℃搖床孵育2 h。結(jié)合結(jié)束后,使用裂解液洗去非特異結(jié)合蛋白并將樣品進(jìn)行考馬斯亮藍(lán)染色。

1.2.5 Co-IP 實(shí)驗(yàn) 分別將帶有HA 標(biāo)簽的GSDMD 和帶有Flag 標(biāo)簽的sdAb Con、sdAb #3、sdAb#26 共轉(zhuǎn)到HEK293T 細(xì)胞中,48 h 后收集細(xì)胞并在冰上超聲裂解,向離心后的樣品中加入少量Protein G 珠子孵育2 h 以去除非特異結(jié)合。然后去掉Protein G 珠子,向只轉(zhuǎn)染了HA-GSDMD 的樣品中加入IgG 抗體,另外3組樣品中加入Flag 抗體,4℃搖床過(guò)夜孵育。第2 天,向每組樣品中加入Protein G 珠子,4℃搖床孵育2 h,孵育結(jié)束后收集珠子并煮樣,再進(jìn)行Western 印跡檢測(cè)。

1.2.6 等溫滴定量熱實(shí)驗(yàn) 首先在大腸桿菌BL21(DE3)中誘導(dǎo)表達(dá)GST-GSDMD 和8×His-SUMOTEV site-sdAb #26,將GST-GSDMD 結(jié)合GST 珠子后使用10 mmol/L 還原性谷胱甘肽洗脫。8×His-SUMO-sdAb 和Ni 珠結(jié)合后,加入TEV 酶切過(guò)夜,得到純化的sdAb。使用10 000 Da 的超濾管將所有純化好的蛋白溶于50 mmol/L Tris,pH 7.5,200 mmol/L NaCl 溶液中。啟動(dòng)MicroCal VP-ITC 儀器,在加樣池加入10 μmol/L 的GST 或GST-GSDMD,在滴定池加入300 μmol/L 的sdAb Con 或sdAb #26 進(jìn)行測(cè)定,使用MicroCalPEAQ-ITC 分析軟件計(jì)算出解離常數(shù),并使用Origin 7.0 做出擬合曲線。

1.2.7 sdAb 純化 將重組質(zhì)粒GST-TEV sitesdAb-ETA-3×Flag 轉(zhuǎn)化進(jìn)入大腸桿菌BL21(DE3)中,當(dāng)菌液OD 值達(dá)到0.8 時(shí),加入IPTG至終濃度0.2 mmol/L,16℃誘導(dǎo)過(guò)夜。搖菌結(jié)束后離心收集菌體,將菌體冰上超聲后,12 000 r/min 離心30 min 收集上清。在上清中加入GST 珠子,4℃搖床孵育2 h 后收集珠子,取少量珠子煮沸進(jìn)行考馬斯亮藍(lán),與BSA進(jìn)行對(duì)比,估算出原珠子中含有的蛋白量,以sdAb:TEV=10∶1 的比例向珠子中加入TEV酶,4℃過(guò)夜收集去除了GST 標(biāo)簽的sdAb。

1.2.8 細(xì)胞上清中LDH 釋放量檢測(cè) 將THP-1 細(xì)胞鋪入96 孔板中,并將純化好的sdAb Con、sdAb#26 加入細(xì)胞中過(guò)夜,12 h 后用1 μg/mL LPS 預(yù)處理4 h,再用10 μmol/L nigericin 處理1 h 后,收集檢測(cè)細(xì)胞上清中LDH 的釋放量,檢測(cè)方法參照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

1.2.9 ELISA 檢測(cè)細(xì)胞上清IL-1β 蛋白水平 將THP-1 細(xì)胞鋪入24 孔板中,過(guò)夜貼壁后,將純化的sdAb Con、sdAb #26 加入細(xì)胞中過(guò)夜,12 h 后用1 μg/mL LPS 預(yù)處理4 h,再用10 μmol/L nigericin 處理1 h 后,收集細(xì)胞上清培養(yǎng)液檢測(cè)IL-1β 濃度,檢測(cè)方法參照試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。

1.2.10 Western 印跡實(shí)驗(yàn) 提取各組細(xì)胞蛋白,按常規(guī)步驟進(jìn)行Western 印跡分析,一抗:GSDMD(1∶1 000)、FLAG(1∶5 000)、HA(1∶1 000)、ACTB(1∶5 000)。4℃孵育過(guò)夜,室溫二抗孵育1 h,顯影并曝光。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 所有數(shù)據(jù)為3 次獨(dú)立實(shí)驗(yàn),符合正態(tài)分布的計(jì)量資料使用均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,數(shù)據(jù)分析采用雙因素方差分析,P<0.05 為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 GSDMD sdAb 的篩選 isPLA 后,流式分選出紅色熒光信號(hào)的陽(yáng)性細(xì)胞,對(duì)照組為帶有HA 標(biāo)簽的空載體和sdAb 文庫(kù)(圖1A)。將陽(yáng)性細(xì)胞作為模板通過(guò)聚合酶鏈反應(yīng),擴(kuò)增CDR3 區(qū),片段大小為325 bp(圖1B)。經(jīng)3 輪篩選后,將富集的CDR3 區(qū)進(jìn)行序列測(cè)定,得到如表1 所列的CDR3 氨基酸序列。接下來(lái),通過(guò)PRODIGY 網(wǎng)站預(yù)測(cè)候選sdAb 和GSDMD 相互作用的親和力,選出兩條親和力較強(qiáng)的sdAb #3 和#26 進(jìn)行驗(yàn)證。

圖1 通過(guò)isPLA-seq 篩選GSDMD 單域抗體Fig 1 Single-domain antibodies against GSDMD screening by isPLA-seq

表1 由isPLA-seq 篩選得到的抗GSDMD 單域抗體CDR3 序列Tab 1 The CDR3 sequences of the anti-GSDMD sdAb obtained by isPLA-seq screening

2.2 GSDMD 的sdAb #3 和sdAb #26 與GSDMD特異性結(jié)合 由細(xì)胞isPLA 實(shí)驗(yàn)結(jié)果可知,sdAb #3和#26 與GSDMD 全長(zhǎng)及GSDMD-CT 產(chǎn)生了相互作用,而不和GSDMD-NT 互相作用(圖2A、2B)。為了進(jìn)一步驗(yàn)證這兩條sdAb 與GSDMD 的結(jié)合是否為直接相互作用,筆者通過(guò)使用含有GST 標(biāo)簽的GSDMD 與His 標(biāo)簽的sdAb 進(jìn)行pull down 實(shí)驗(yàn)。結(jié)果顯示,在GST 標(biāo)記GSDMD 中檢測(cè)到His 標(biāo)記的sdAb,與isPLA 數(shù)據(jù)一致(圖2C)。接著,將帶有Flag 標(biāo)簽的sdAb 和帶有HA 標(biāo)簽的GSDMD 共轉(zhuǎn)進(jìn)293T 細(xì)胞中,通過(guò)Co-IP 實(shí)驗(yàn),再次證實(shí)sdAb#3 和sdAb #26 分別和GSDMD 相互作用(圖2D)。最后,通過(guò)ITC 實(shí)驗(yàn)測(cè)定了GST-GSDMD 和sdAb#26 之間的解離常數(shù)(dissociation constant,Kd)為(3.78±0.42)μmol/L,而GST-GSDMD 和sdAb Con 以及GST 和sdAb#26 之間都不發(fā)生互相作用(圖2E)。

圖2 抗GSDMD 的sdAb#3 和sdAb#26 與GSDMD 直接結(jié)合Fig 2 GSDMD-resistant sdAb#3 and sdAb#26 binding directly to GSDMD

2.3 GSDMD 的sdAb #26 促進(jìn)GSDMD 介導(dǎo)的焦亡 Western 印跡檢測(cè)GSDMD 在不同細(xì)胞類(lèi)型中的蛋白表達(dá)情況,結(jié)果顯示,HeLa 和THP-1 細(xì)胞高表達(dá)GSDMD 蛋白,U2OS 細(xì)胞不表達(dá)GSDMD 蛋白(圖3A)。用sdAb #26 過(guò)夜預(yù)處理再用LPS/nigericin誘導(dǎo)后,顯微鏡下觀察在高表達(dá)GSDMD 的HeLa 和THP-1 細(xì)胞中,與加入sdAb Con 的細(xì)胞相比,細(xì)胞焦亡表型明顯增多,細(xì)胞腫脹膨大,并且有許多氣泡狀突出物(圖3B,箭頭所示),而在不表達(dá)GSDMD的U2OS 細(xì)胞中則沒(méi)有觀察到此表型(圖3B)。此外,用上述同樣條件處理THP-1 細(xì)胞,培養(yǎng)液上清中的IL-1β 和LDH 含量顯著增加(圖3C、3D)。通過(guò)Western 印跡檢測(cè)GSDMD 和GSDMD-NT 蛋白含量的變化。結(jié)果表明,與對(duì)照組相比,加入sdAb#26 的THP-1 細(xì)胞中GSDMD-NT 產(chǎn)生水平顯著增加(圖3E)。

圖3 sdAb#26 促進(jìn)由GSDMD 介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡Fig 3 sdAb#26 promotes pyroptosis mediated by GSDMD

3 討論

GSDMD 是焦亡的執(zhí)行蛋白之一,調(diào)控生理和病理狀態(tài)下機(jī)體的穩(wěn)態(tài)。本研究通過(guò)isPLA 結(jié)合高通量測(cè)序技術(shù)篩選出抗GSDMD 的sdAb,驗(yàn)證篩選出的sdAb #3 和#26 能與GSDMD-CT 特異性結(jié)合,并初步探究此sdAb #26 能促進(jìn)GSDMD 介導(dǎo)的細(xì)胞焦亡。細(xì)胞焦亡主要通過(guò)兩種途徑發(fā)生:一種是依賴(lài)caspase-1 的經(jīng)典途徑,另一種是依賴(lài)caspase-4、5、11 的非經(jīng)典途徑[10]。當(dāng)細(xì)菌、病毒入侵宿主時(shí),細(xì)胞內(nèi)的模式識(shí)別受體感受到這些刺激后,激活caspase,使其對(duì)GSDMD 進(jìn)行切割活化,產(chǎn)生具有活性的GSDMD-NT,其與細(xì)胞質(zhì)膜內(nèi)側(cè)的磷酸肌苷結(jié)合,在細(xì)胞膜上進(jìn)行打孔,使細(xì)胞破裂,釋放細(xì)胞炎性因子[11]。通常認(rèn)為,GSDMD-NT 和GSDMD-CT 之間能夠形成自我抑制的非活性形式,但最近有文獻(xiàn)報(bào)道,切割后的GSDMD-CT 通過(guò)與GSDMD-NT 形成大的疏水相互作用,阻止GSDMD-NT 在孔形成時(shí)發(fā)生構(gòu)象變化,這可能也是調(diào)控GSDMD-NT 介導(dǎo)焦亡的策略之一[12]。本文篩選得到的sdAb #3 和#26 能夠與GSDMD-CT 結(jié)合,促進(jìn)細(xì)胞焦亡的發(fā)生,可能是該sdAb 與GSDMD-CT 結(jié)合后解除了對(duì)GSDMD-NT 的抑制,最終使細(xì)胞膜上打孔,促進(jìn)細(xì)胞焦亡。

已有研究認(rèn)為,革蘭陰性菌脂多糖成分在細(xì)胞內(nèi)直接激活caspase-4、5、11,這些被激活的caspase會(huì)切割GSDMD,引起細(xì)胞發(fā)生焦亡[13]。另有報(bào)道認(rèn)為,當(dāng)機(jī)體被HIV 感染時(shí),體內(nèi)的CARD-8 炎性小體可以識(shí)別HIV 蛋白酶,從而引起HIV 蛋白酶對(duì)CARD-8 炎性小體進(jìn)行切割,進(jìn)而激活caspase-1 和GSDMD,使感染HIV 的細(xì)胞發(fā)生焦亡,減少HIV 在體內(nèi)的復(fù)制和傳播[14]??梢?jiàn),焦亡對(duì)于一些特定細(xì)菌和病毒感染后的機(jī)體具有一定的保護(hù)作用,因此通過(guò)開(kāi)發(fā)促焦亡作用的sdAb 可能給HIV 等病原微生物感染的治療提供新策略。目前研究也證實(shí),焦亡可作為腫瘤抑制途徑,發(fā)揮抗腫瘤作用[15]。如2-(萘甲酰基)乙基三甲基碘化銨(α-NETA)通過(guò)GSDMD/caspase-4 途徑誘導(dǎo)上皮性卵巢癌細(xì)胞焦亡,顯著降低了小鼠上皮性卵巢癌的進(jìn)展[16]。此外,在部分腫瘤細(xì)胞中誘導(dǎo)焦亡導(dǎo)致T 細(xì)胞依賴(lài)性腫瘤消退,同時(shí)伴隨著T 細(xì)胞、NK 細(xì)胞、M1 巨噬細(xì)胞群的增加以及調(diào)節(jié)性T 細(xì)胞、M2 巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞和髓系衍生抑制細(xì)胞群的減少,提示焦亡與細(xì)胞毒性淋巴細(xì)胞可相互促進(jìn),通過(guò)正反饋環(huán)路促進(jìn)抗腫瘤免疫作用[17]。另外,目前腫瘤的治療大多通過(guò)化療,其次免疫檢查點(diǎn)阻斷也廣泛應(yīng)用于腫瘤的治療,而腫瘤抗原的缺乏以及不能有效并快速啟動(dòng)體內(nèi)的適應(yīng)性免疫是免疫治療效果較差的重要原因[18]。但焦亡的細(xì)胞會(huì)釋放腫瘤抗原以及啟動(dòng)體內(nèi)的適應(yīng)性免疫,這使得如何有效并快速誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞焦亡成為了研究熱點(diǎn)[19]。然而,焦亡也是一把雙刃劍,大量正常細(xì)胞發(fā)生焦亡可導(dǎo)致過(guò)度的炎癥,IL-1β、IL-18 的釋放又可激活免疫細(xì)胞向感染部位聚集,大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn),再次加劇炎癥因子釋放,導(dǎo)致內(nèi)臟器官衰竭或細(xì)胞因子釋放綜合征的發(fā)生,從而危及生命[12]。

綜上所述,本文利用isPLA 結(jié)合高通量測(cè)序的方法成功篩選到GSDMD 的sdAb,并在細(xì)胞內(nèi)驗(yàn)證了其促進(jìn)焦亡的功能,為GSDMD sdAb 的臨床轉(zhuǎn)化研究提供了新思路。

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