不同品種綿羊肌內脂肪沉積相關miRNA的篩選與功能預測

孟科 趙薇 郭晨浩 聶偉 陶毛孩 袁曉春 孫昊然 馮登偵

摘要： 為明確不同品種綿羊（Ovis aries）肌肉組織miRNA的表達情況，篩選影響綿羊肌內脂肪沉積的關鍵miRNA，以灘羊、杜泊羊和小尾寒羊為研究對象，測定背最長肌肌內脂肪含量并對其進行轉錄組測序（RNA-Seq），篩選綿羊脂肪沉積相關的差異表達miRNA。結果表明，灘羊肌內脂肪含量顯著高于杜泊羊，極顯著高于小尾寒羊；杜泊羊肌內脂肪含量顯著高于小尾寒羊。轉錄組測序質量良好。3個品種綿羊共鑒定到134個已知miRNA和153個預測miRNA，這些 miRNA的長度主要介于21～23 nt，且首位堿基對U堿基具有明顯偏好性。以P ≤0.05和|log2FC|>1（FC為差異倍數）為篩選條件，3個比較組共獲得42個差異表達miRNA；杜泊羊與灘羊比較組中篩選出22個差異表達miRNA；小尾寒羊與杜泊羊比較組中篩選出21個差異表達 miRNA；小尾寒羊與灘羊比較組中篩選出12個差異表達miRNA。篩選出的42個miRNA靶向到326個靶基因，顯著富集到減數分裂I、肌肽-寡糖1，2-α-甘露糖苷酶活性和甘露寡糖甘露糖苷酶活性等303個基因本體（GO）條目，以及富集到α-亞麻酸代謝、亞油酸代謝、多巴胺能突觸、胰島素信號傳導途徑及N-聚糖生物合成等320個京都基因與基因組百科全書（KEGG）代謝通路。根據GO和KEGG的功能描述進一步篩選出23個miRNA及其靶向的119個靶基因可能參與脂肪沉積。進一步構建miRNA靶向調控網絡，最終篩選到oar-miR-133、oar-miR-485-5p、novel_6、novel_85和novel_103等綿羊肌內脂肪沉積的關鍵miRNA。隨機選擇的8個差異表達miRNA的實時熒光定量PCR結果與轉錄組測序結果一致，表明轉錄組測序結果可靠。本研究為深入開展綿羊肌內脂肪沉積的分子調控機理、高品質綿羊品種的選育提供理論依據。

關鍵詞： 綿羊；肌內脂肪沉積；轉錄組；miRNA

中圖分類號： ?S826?? 文獻標識碼： A?? 文章編號： 1000-4440（2023）07-1554-13

Screening and functional prediction of miRNA related to intramuscular fat deposition in different sheep breeds

MENG Ke1，2， ZHAO Wei1， GUO Chen-hao1， NIE Wei1， TAO Mao-hai1， YUAN Xiao-chun1， SUN Hao-ran1，FENG Deng-zhen1

（1.School of Agriculture， Ningxia University， Yinchuan 750021， China;2.Animal Husbandry and Fishery Technology Extension and Service Center， Shapotou District， Zhongwei City， Zhongwei 755000， China）

Abstract： In order to clarify the expression of miRNAs in muscle tissues of different breeds of sheep （Ovis aries） and screen the key miRNAs affecting intramuscular fat deposition in sheep， Tan sheep， Dorper sheep and Small Tail Han sheep were used as experimental materials. The intramuscular fat content of longissimus dorsi muscle was measured and transcriptome sequencing （RNA-Seq） was performed to screen the differentially expressed miRNAs related to fat deposition in sheep. The results showed that the intramuscular fat content of Tan sheep was significantly higher than that of Dorper sheep， and extremely significantly higher than that of Small Tail Han sheep， and the intramuscular fat content of Dorper sheep was significantly higher than that of Small Tail Han sheep. The quality of transcriptome sequencing was good. A total of 134 known miRNAs and 153 predicted miRNAs were identified in three breeds of sheep. The length of these miRNAs mainly ranged from 21 nt to 23 nt， and the first base had obvious preference for U base. With P≤0.05 and |log2FC|>1 （FC was the fold change）as the screening conditions， a total of 42 differentially expressed miRNAs were obtained from the three comparison groups. Twenty-two differentially expressed miRNAs were screened in the comparison group of Dorper sheep and Tan sheep， 21 differentially expressed miRNAs were screened in the comparison group of Small Tail Han sheep and Dorper sheep， and 12 differentially expressed miRNAs were screened in the comparison group of Small Tail Han sheep and Tan sheep. The screened 42 miRNAs targeted to 326 target genes， which were significantly enriched into 303 gene ontology（GO） entries such as meiosis I， mannosyl-oligosaccharide 1，2-α-mannosidase activity and mannosyl-oligosaccharide mannosidase activity， and 320 Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes （KEGG） metabolic pathways such as α-linolenic acid metabolism， linoleic acid metabolism， dopaminergic synapses， insulin signaling pathway and N-glycan biosynthesis. According to the functional description of GO and KEGG， 23 miRNAs and 119 target genes might be involved in fat deposition. The miRNA targeted regulatory network was further constructed， and finally the key miRNAs for fat deposition in sheep such as oar-miR-133， oar-miR-485-5p， novel_6， novel_85 and novel_103 were screened. The qRT-PCR results of the eight randomly selected differentially expressed miRNAs were consistent with transcriptome sequencing results， indicating that the transcriptome sequencing results were reliable. This study provides a theoretical basis for further research on the molecular regulation mechanism of intramuscular fat deposition in sheep and the breeding of high-quality sheep breeds.

Key words： sheep;intramuscular fat deposition;transcriptome;miRNA

隨著生活質量的提升，人們對羊肉的需求不僅僅滿足于數量，羊肉的品質更加成為人們關注的焦點。羊肉的品質主要由肉質性狀決定，而肌內脂肪（IMF）含量是評價肉品質的重要指標。IMF含量的高低影響到羊肉的風味、嫩度、適口性及多汁性[1-2]。肌內脂肪的形成以及含量受到遺傳、環境、營養等多種因素的共同影響[3]。已有研究結果表明肌內脂肪含量具有較高的遺傳力；在相同的環境和營養條件下，遺傳背景成為影響羊肉肌內脂肪的重要因素[4]。探究不同品種綿羊IMF含量差異及其分子調控機制對綿羊肉質性狀改善具有重要意義。

MicroRNA（miRNA） 作為一類不編碼的小分子RNA，主要通過與mRNA的3′UTR區結合來抑制靶基因的表達而發揮作用[5]。近年來，國內外許多學者研究報道miRNA在動物脂肪的形成過程中發揮重要的調控作用。邵靜等[6]研究發現，miR-17-3p通過靶向調控KCTD15基因的表達從而影響延邊黃牛前體脂肪細胞分化；Ma等[7]研究結果表明， miR-26b-5p通過靶向調控FGF21基因促進脂肪生成，參與調控山羊肌內脂肪細胞的分化。Chen等[8]研究發現miR-376a靶向調控KLF15基因，參與秦川牛的脂肪細胞增殖分化過程；Deng等[9]發現miR-27a 通過特異性結合視黃醇X受體α（RXRα） 抑制綿羊前脂肪細胞的分化。隨著測序技術不斷發展，應用轉錄組測序（RNA-Seq）技術探究影響IMF沉積的研究也越來越多。Cheng等[10]通過RNA-Seq技術比較了不同肌內脂肪含量豬背最長肌的miRNA表達情況，篩選到18個差異miRNA可能參與調控脂肪酸合成和脂質代謝；喻世剛等[11]通過比較高和低肌內脂肪含量雞胸中miRNA的表達差異，篩選到5個miRNA參與到脂肪生成過程；Huang等[12]通過比較中國沼澤水牛肌肉和脂肪組織之間的差異miRNA，篩選到8個miRNA在水牛肌內脂肪沉積過程中發揮重要作用。上述研究結果表明，應用RNA-Seq技術探究IMF沉積相關miRNA表達譜的研究較為成熟且已取得一定成果。但目前有關不同品種綿羊肌內脂肪沉積相關miRNA的研究較少。本研究基于杜泊羊、灘羊和小尾寒羊3個品種綿羊的肌內脂肪含量差異，通過RNA-Seq技術鑒定并篩選綿羊 IMF 沉積過程中差異表達的miRNA，探索miRNA調節綿羊肌內脂肪沉積的分子機制。旨在為探究分子水平調控綿羊肉質性狀提供參考，為高品質綿羊品種的選育提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

從寧夏宇泊科技有限公司石嘴山威震肉羊繁育場選擇飼養條件一致的8月齡健康綿羊品種杜泊羊、灘羊和小尾寒羊各8只（公母各4只）為試驗材料。對綿羊進行屠宰后，取第3肋骨到第12肋骨之間的背最長肌組織作為樣品，放置于液氮中冷藏備用。

1.2 綿羊肌內脂肪含量的測定

采用索氏脂肪抽提法對試驗綿羊的肌內脂肪含量進行測定。具體測定方法是：（1）取適量冷藏樣品，剔除肉樣筋膜后，絞為肉糜，65 ℃烘干，測定100 g樣品中水分含量記為A；（2）取測試樣稱質量記為W（g），用濾紙包好；（3）在102 ℃烘箱中烘干至恒質量，記為W1（g）；（4） 將濾紙包好的樣品放入索氏抽提器的抽提筒內，倒入2/3體積的乙醚后接上冷凝裝置，在55 ℃恒溫水浴中抽提6～8 h。抽提結束后，在102 ℃烘箱中烘干至恒質量，記為W2（g）。每品種3個重復。肌內脂肪含量（IMFC）計算公式為：

IMFC=（W1-W2）/[（100-A）×W]。

1.3 總RNA提取與質量控制

選擇上述3個綿羊品種母羊各3只，采用Trizol法提取樣品背最長肌組織的總RNA，利用瓊脂糖凝膠電泳、Nanodrop分光光度計（Therom公司產品，美國）和Agilent 2100 生物分析儀（Agilent公司產品，美國）檢測RNA樣品的濃度、純度以及完整性。

1.4 cDNA文庫的構建與測序

RNA樣品檢測合格后，使用小RNA樣品制備試劑盒（Small RNA Sample Pre Kit）進行cDNA文庫的構建。構建方法為：首先利用小RNA的3′和 5′端的特殊結構，以總RNA為起始樣品在小RNA兩端加上接頭，進行反轉錄合成cDNA，隨后經過PCR擴增和PAGE膠電泳對目標DNA片段進行分離，切膠回收后得到cDNA文庫。對構建好的文庫進行檢驗，檢驗合格后在Illumina平臺進行測序。

1.5 miRNA鑒定與表達分析

獲得原始序列后經過數據質量控制得到有效序列，對有效序列進行小RNA的種類和長度篩選。使用Bowtie_0.12.9軟件將篩選得到的長度為18～35 nt的小RNA對比到綿羊基因組（Oar_rambouillet_v1.0）參考序列上。將對比到參考序列的數據與miRBase數據庫進行比對，注釋分析已知的miRNA；在miRBase數據庫未比對到的數據，通過miREvo_v1.1軟件預測新的miRNA，并利用mirdeep2_0_0_5軟件進行分析。對鑒定到的miRNA利用Stringtie v1.3.3軟件進行表達量計算，采用TPM（transcript per million）值作歸一化處理。利用DESeq_1.2.10軟件分析樣本間miRNA的表達差異，以P≤0.05且|log2 FC|≥1（FC為差異位數）作為標準篩選表達差異miRNA。

1.6 差異miRNA靶基因預測及功能注釋和富集分析

使用miRanda-3.3a和RNAhybrid v2.0軟件預測表達差異miRNA的靶基因，取交集作為預測結果。miRanda-3.3a軟件參數設置為：-sc 140 -en -10 -scale 4-strict -out；RNAhybrid v2.0軟件參數設置為：-e 10 -p 0.05。以P≤0.05為顯著閾值，分別對表達差異miRNA的靶基因進行基因本體（GO）功能注釋及京都基因與基因組百科全書（KEGG）富集分析。

1.7 候選miRNA與其靶基因的互作網絡分析

利用Cytoscape 3.9.1軟件對篩選到的靶基因繪制互作網絡圖。

1.8 測序結果可靠性分析

為驗證測序數據的準確性，利用實時熒光定量聚合酶鏈式反應（qRT-PCR）技術，測定不同綿羊品種8個差異表達miRNA的相對表達量，與RNA-seq測序表達量進行一致性比較。利用Primer Premier 6.0軟件并采用頸環法設計miRNA引物，以U6作為內參基因（表1）。熒光染料為TB Green Premix Ex Taq TMⅡ（TaKaBa，大連），所用的引物由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。PCR反應體系為：2×TB Green Premix Ex Taq II 10.0 μl，正向引物0.8 μl，反向引物0.8 μl，cDNA模板2.0 μl，RNase-free雙蒸水6.4 μl。qPCR擴增程序為：95 ℃預變性2 min；95 ℃變性5 s，58 ℃退火30 s，39個循環；95 ℃延伸5 s，60 ℃維持1 min。每個樣品設置3次重復。

1.9 統計分析

以2-△△Ct方法進行miRNA相對表達量的計算，利用SPSS 26.0軟件對3個品種綿羊的肌內脂肪含量和miRNA的表達量進行單因素方差分析。以P<0.05表示差異顯著，P<0.01表示差異極顯著。實時熒光定量結果圖片由GraphPad Prism V8.0軟件繪制。

2 結果與分析

2.1 綿羊肌內脂肪含量差異分析

3個綿羊品種肌內脂肪含量如表2所示。灘羊肌內脂肪含量最高，達5.42%，而小尾寒羊肌內脂肪含量最低，2.10%。灘羊肌內脂肪含量顯著高于杜泊羊，且極顯著高于小尾寒羊；杜泊羊肌內脂肪含量顯著高于小尾寒羊。

2.2 RNA-seq數據分析

本研究建立3個品種綿羊的9個背最長肌組織樣品文庫，通過llumina平臺進行深度測序后，獲得原始序列共108 813 537條，質控后獲得有效序列共107 166 390條。每個樣本的Q20在99%以上，Q30在96%以上，錯誤率均為0.01%，堿基組成穩定均衡（表3）。上述結果表明測序質量良好，可用于進一步分析。

2.3 miRNA的注釋與鑒定

在18～35 nt范圍內，篩選各樣品中的有效序列[13]。篩選到的有效序列長度在22 nt的序列所占比例最高，灘羊和小尾寒羊22 nt的read所占比例高于杜泊羊（圖1）。每個樣本至少有87%以上的小RNA序列比對到了綿羊基因參考序列上（表4）。在3種綿羊肌肉組織中共鑒定到134個已知miRNA和153個預測miRNA。對鑒定到的miRNA進行首位堿基偏好性分析發現，已知miRNA和預測miRNA的首位堿基均對U堿基具有明顯偏好性（圖2）。

2.4 差異表達miRNA的篩選與分析

對3個綿羊品種miRNA 的表達量進行兩兩比較分析。 杜泊羊與灘羊比較組中篩選出差異表達miRNA 22個，其中上調表達13個，下調表達9個；小尾寒羊與杜泊羊比較組中篩選出21個差異表達miRNA，其中上調表達13個，下調表達8個；小尾寒羊與灘羊比較組中篩選出12個差異表達 miRNA，其中上調表達9個，下調表達3個（圖3）。3個比較組中沒有共表達的差異表達miRNA，小尾寒羊與灘羊比較組與杜泊羊與灘羊比較組，小尾寒羊與杜泊羊比較組之間均有4個共表達的差異表達miRNA，杜泊羊與灘羊比較組與小尾寒羊與杜泊羊比較組之間有5個共表達的差異表達miRNA。3個比較組中共篩選出42個差異表達miRNA（圖4）。篩選出的miRNA包括23個已知miRNA和19個新預測的miRNA。篩選出的已知miRNA的差異表達信息如表5所示。

2.5 差異表達miRNA靶基因預測及功能分析

篩選出的42個差異表達 miRNA預測到326個靶基因，形成411個靶向關系對。其中，novel_85、oar-miR-133和oar-miR-485-5p預測到的靶基因數量較多。novel_85預測到99個靶基因，包括糖原合酶基因（GYS1）、組蛋白脫乙酰酶3基因（HDAC3）、胰島素樣生長因子II基因（IGF2）等；oar-miR-133預測到55個靶基因，包括肌球蛋白 IA基因（MYO1A）、鳥氨酸脫羧酶1基因（ODC1）、磷脂酶 A2基因（PLA2）等；oar-miR-485-5p預測到29個靶基因，包括甘露糖-6-磷酸異構酶基因（MPI）、羥酰基谷胱甘肽水解酶基因（HAGH）、跨膜絲氨酸蛋白酶2基因（TMPRSS2）等。對每組預測到的靶基因進行功能分析。 GO功能富集分析發現，杜泊羊與灘羊比較組顯著富集到111個GO條目，其中生物學過程51個，細胞組分24個，分子功能36個；小尾寒羊與杜泊羊比較組顯著富集到97個GO條目，其中生物學過程51個，細胞組分11個，分子功能35個；小尾寒羊與灘羊比較組顯著富集到95個GO條目，其中生物學過程41個，細胞組分6個，分子功能48個。根據P值大小每組前20的GO條目如圖5所示，顯著富集在減數分裂、減數分裂前期、清道夫受體活性、貨物受體活性、肌肽-寡糖1，2-α-甘露糖苷酶活性和甘露寡糖甘露糖苷酶活性等GO條目。KEGG信號通路富集分析發現，杜泊羊與灘羊比較組富集到106個通路，7個通路顯著富集；小尾寒羊與杜泊羊比較組富集到168個通路，4個通路顯著富集；小尾寒羊與灘羊比較組富集到46個通路，5個通路顯著富集。根據P值大小每組前20個信號富集通路如圖6所示，顯著富集的通路主要有α-亞麻酸代謝、亞油酸代謝、多巴胺能突觸、胰島素信號傳導途徑、N-聚糖的生物合成和苯丙氨酸、酪氨酸和色氨酸的生物合成等代謝通路。根據GO和KEGG的功能描述篩選出23個差異表達miRNA及其靶向的119個基因可能參與脂肪沉積。

2.6 miRNA靶向調控網絡

篩選出的119個可能參與脂肪沉積的靶基因與23個差異表達miRNA構成129個靶向關系對，其調控網絡如圖7所示。通過調控網絡圖發現，oar-miR-133、oar-miR-485-5p、novel_6、novel_85和novel_103靶向到較多的靶基因且構成了完整的調控網絡，故推測其可能是調控綿羊脂肪沉積的關鍵miRNA。

2.7 miRNA表達驗證

利用qRT-PCR得到3個綿羊品種8個差異表達miRNA（oar-miRNA-99a、oar-miR-26a、oar-miR-374b、oar-miR-19b、novel_9、novel_202、 novel_82、novel_62）的相對表達量與RNA-seq測序得到的這8個miRNA表達趨勢基本保持一致（圖8），說明測序結果真實可靠。

3 討論

3.1 3個品種綿羊肌內脂肪含量差異

肉質性狀是綿羊關鍵的經濟性狀，也是育種者關注的重要問題。IMF含量的高低影響羊肉的食用價值。灘羊作為中國特有的裘皮綿羊品種，其肉質細嫩、無膻味；杜泊羊原產自南非國家，產肉性能高，是育肥生產中優質品種；而小尾寒羊具有繁殖率高的特點，是一產多羔的代表性品種[14]。3個品種中，灘羊的肌內脂肪含量最高，而小尾寒羊最低。灘羊和杜泊羊作為優質的肉羊品種，肌內脂肪含量均高于小尾寒羊。

3.2 3個品種綿羊背最長肌miRNA的鑒定及特征

微小核糖核酸（miRNA）是由20～24個核苷酸堿基組成的非編碼內源性小分子RNA[15]。本研究從3個品種綿羊背最長肌中共鑒定到134個已知miRNA和153個預測miRNA，其長度主要分布在21～23 nt，且長度為22 nt的miRNA占比最高，符合miRNA的長度分布特征。對鑒定到的miRNA進行首位堿基偏向性分析，發現首位堿基偏向于U堿基。這與Liu等[16]在綿羊骨骼肌中鑒定到miRNA的首堿基偏向性和付雪峰等[17]在藏絨山羊皮膚組織中鑒定出的miRNA的首位堿基偏向性一致。miRNA的首位堿基對U堿基的偏好性可能與miRNA的形成以及其對靶基因的沉默機制有關[18]。

3.3 綿羊肌內脂肪含量相關miRNA的篩選

本研究在杜泊羊、灘羊和小尾寒羊的背最長肌中篩選獲得42個差異表達miRNA，包括23個已知的miRNA和19個預測的miRNA。進一步通過表達量差異篩選出23個可能與綿羊背最長肌脂肪沉積相關的miRNA。篩選出的這些已知miRNA已有部分被證實參與調節脂肪沉積和脂質代謝。例如，miR-433-3p對支鏈酮酸脫氫酶β（BCKDHB）有負調控作用，影響綿羊前體脂肪細胞分化從而參與調節綿羊的脂肪代謝[19]; miR-27a 通過調節靶基因RXRα的表達來增強綿羊前脂肪細胞增殖并抑制綿羊前脂肪細胞分化，在調節綿羊肌肉脂肪和皮下脂肪組織之間的差異脂肪積累中起重要作用[9]；miR-143是與脂質代謝密切相關的miRNA之一，通過調節靶基因的表達來調節奶牛脂肪細胞分化和甘油三酯合成[20]。Wang等[21]研究發現miR-26a 和miR-143在成年肉牛肌內脂肪中的表達量顯著高于皮下脂肪; 汪海洋等[22]研究發現miR-143在西門塔爾牛肌內脂肪組織中表達量高于皮下脂肪。本研究中，miR-26a作為杜泊羊與灘羊比較組和小尾寒羊與灘羊比較組中篩選出共有的差異表達miRNA，在灘羊肌肉組織中表達量顯著高于杜泊羊和小尾寒羊，且杜泊羊的表達量略高于小尾寒羊；同樣，miR-143在杜泊羊與灘羊比較組中被篩選出來，該miRNA在灘羊肌肉組織中表達量高于杜泊羊。在3個品種綿羊肌內脂肪含量分析中，灘羊IMF含量最高而小尾寒羊最低，上述2個miRNA表達量的研究結果也符合該特征。同樣，let-7b是小尾寒羊與杜泊羊比較組和小尾寒羊與灘羊比較組中篩選出共有的差異表達miRNA，且與miR-26a在3個品種綿羊肌肉組織中的表達趨勢一致，即高肌內脂肪含量的組織中let-7b表達量亦高。這個結果與喻世剛等[11]發現的雞胸肌內脂肪含量與let-7b表達量的關系一致。上述結果也進一步說明本研究篩選出的miRNA作為與綿羊肌內脂肪含量相關的候選miRNA的可靠性。但這些miRNA對綿羊肌肉脂肪含量的影響機制還需進一步研究。

3.4 差異miRNA的靶基因預測及功能分析

篩選出的42個差異表達miRNA預測到326個靶基因，形成411個靶向關系對。值得注意的是novel_85預測到99個靶基因，為差異表達miRNA中靶向到最多候選基因的miRNA。這些候選的靶向基因可以參與脂肪沉積。GYS1基因與糖原代謝相關，其突變影響到肌糖原的沉積[23]；HDAC3蛋白的復合物使過氧化物酶體增殖物激活受體γ2（Peroxisome proliferator-activated receptor γ2）基因（PPARG2）轉錄失活，從而參與到脂肪生成過程[24]；IGF2基因的突變造成豬肌內脂肪和脂肪酸含量存在差異，可以參與到脂肪組織中脂肪酸的形成。上述研究結果表明，novel_85可能是參與綿羊脂肪沉積及脂肪代謝的關鍵miRNA。另外也有一些差異表達miRNA靶向的基因與脂肪沉積和脂肪代謝相關的研究。如oar-miR-133和oar-miR-485-5p同時靶向的谷胱甘肽硫轉移酶基因（P1GSTP1）可以參與到脂質代謝過程[25]；novel_103靶向的丙酮酸脫氫酶激酶4基因（PDK4），在中國草原紅牛的研究中發現該基因的多態性與其肌內脂肪含量相關[26]；oar-miR-433-3p靶向的色氨酸3基因（SESN3）參與調節前脂肪細胞脂肪生成[27]。為了進一步了解篩選出的差異miRNA的功能，對其預測的靶基因進行功能分析。GO功能富集分析發現，富集顯著的條目包括糖原代謝過程、油酸酯水合酶活性、三羧酸循環過程、低密度脂蛋白顆粒受體結合等與糖代謝及脂質代謝相關的條目。KEGG信號通路富集分析發現，可以富集到α-亞麻酸代謝、亞油酸代謝、多巴胺能突觸、胰島素信號傳導途徑以及脂肪的消化和吸收通路。已有研究結果表明，α-亞麻酸會影響奶牛乳腺中的脂肪酸代謝[28]，亞油酸可以增加呼吸鏈解偶聯蛋白1（UCP1）和肉堿-棕櫚油轉移酶1 （CPT1）的表達，促進脂肪降解[29]，并且不同共軛亞油酸對小鼠的脂肪沉積具有顯著差異 [30]。上述研究結果表明，篩選出差異表達miRNA的靶基因可能參與脂肪沉積。根據GO和KEGG的功能描述篩選出可能參與綿羊脂肪沉積的119個靶基因，并對靶向關系進行調控網絡構建。研究認為，oar-miR-133、oar-miR-485-5p、novel_6、novel_85和novel_103可能是參與綿羊肌內脂肪沉積的關鍵miRNA。但miRNA 對靶基因和 IMF 沉積的影響和調控機制尚需進行進一步闡明。

4 結論

杜泊羊，灘羊和小尾寒羊這3個品種綿羊IMF含量存在差異，灘羊肌內脂肪含量最高而小尾寒羊最低。篩選出23個已知的和19個未知的差異表達miRNA可能參與綿羊肌內脂肪沉積，oar-miR-133、oar-miR-485-5p、novel_6、novel_85和novel_103可能是綿羊肌內脂肪沉積的關鍵調控miRNA。

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（責任編輯：石春林）