



摘要:乳腺癌是最常見的女性惡性腫瘤之一。目前認為,腫瘤細胞主要通過糖酵解途徑攝取葡萄糖。甘露糖對腫瘤的影響備受關注,其抗腫瘤機制與癌細胞糖代謝密切相關。文章通過體外體內實驗,觀察甘露糖對乳腺癌增殖以及GLUT1,SLIT2,ROBO1蛋白表達的影響,旨在尋求調控乳腺癌增殖的新靶點,為臨床診斷治療乳腺癌提供理論依據。研究結果表明,甘露糖可抑制三陰性乳腺癌細胞的增殖及遷移能力,其機制可能與甘露糖調控GLUT1/SLIT2/ROBO1信號軸相關。
關鍵詞:甘露糖;三陰性乳腺癌;增殖;糖代謝
中圖分類號:中圖分類號R737.9文獻標志碼:文獻標志碼A
0引言
乳腺癌是最常見的女性惡性腫瘤之一,嚴重影響女性生命健康[1]。代謝重新編輯是腫瘤的標記之一[2]。目前認為,腫瘤細胞主要通過糖酵解途徑使其具備更強的葡萄糖攝取能力,這種現象被稱為“Warburg效應”[3]。為此,研究腫瘤糖代謝機制將為尋找乳腺癌治療新靶點提供依據。近年來,對于單糖對腫瘤的影響越來越受到關注。已有研究表明,甘露糖可抑制癌細胞增殖,甘露糖聯合化療藥物阿霉素或順鉑可促進癌細胞凋亡,增強化療效果[4]。甘露糖的抗腫瘤作用與糖代謝密切相關,一項人群研究表明,將甘露糖混入飲食,受試者出現了葡萄糖吸收下降的癥狀[5]。通過上述研究結果,猜想甘露糖可能對乳腺癌產生類似的效果。
SLIT2/ROBO1是一對保守的配體受體,以細胞類型依賴的方式參與癌細胞增殖、凋亡、遷移和血管生成[6-7]。已有實驗證實SLIT2基因有抑瘤活性,其在乳腺癌組織中表達下調[8]。
本研究通過體外體內實驗,觀察甘露糖對乳腺癌增殖以及GLUT1,SLIT2,ROBO1蛋白表達的影響,探討甘露糖的抗腫瘤機制,旨在尋求調控乳腺癌增殖的新靶點,為臨床診斷治療乳腺癌提供理論依據。
1材料與方法
1.1實驗動物
SPF級C57BL/6雄性小鼠,6周齡,體質量20~22g。
1.2細胞株
人源乳腺癌細胞系MDA-MB-231購自中國科學院細胞庫。
1.3主要試劑
DMEM培養基(Hyclone)、胎牛血清(Gibco)、甘露糖(國藥集團化學試劑有限公司)、兔抗人SLIT2單克隆抗體(CellSignalingTechnology)、兔抗人ROBO1單克隆抗體(CellSignalingTechnology)、兔抗人單克隆抗體GLUT1(CellSignaling)、辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔IgG的抗體(碧云天),MTT試劑購自美國Promega公司。
1.4MTT檢測乳腺癌細胞增殖能力
將MDA-MB-231細胞接種于96孔板中,2000細胞每孔,嚴格控制細胞數目,每個孔做3個重復,置于37℃,5%CO2培養箱培養24h,細胞融合度達30%左右用于實驗。為獲取最佳甘露糖實驗濃度,將細胞隨機分為對照組(含10%胎牛血清的普通培養基)、甘露糖組(分別為加入10mmol/L,25mmol/L,50mmol/L甘露糖培養基),于48h后加入MTT(5.0g/L)50微升每孔、置入培養箱孵育4h,加入二甲基亞砜200μL,應用酶標儀測定各孔吸光值,計算細胞存活率。酶標儀490nm波長處測定吸光度(OD)值,繪制濃度曲線,確定甘露糖臨界濃度為25mmol/L。為觀察甘露糖作用,細胞隨機分為對照組、甘露糖組,置于37℃,5%CO2培養箱培養,采用MTT法檢測各組細胞培養24h,48h,72h,96h細胞活性,并計算細胞增殖率。
1.5Transwell檢測乳腺癌細胞遷移能力
分別制備對照組和甘露糖組單細胞懸液,以1×105細胞每毫升加至24孔Transwell小室上部孔中,下部腔室中加入50μL含10%胎牛血清的培養液,在37℃,5%CO2培養箱中孵育24h后,結晶紫染色,計數遷移細胞數目,計算遷移率,遷移率(%)=(遷移細胞數/總細胞數×100%)。
1.6培養液葡萄糖消耗量測定
將MDA-MB-231細胞以6×105個每皿分別接種于10cm培養皿,過夜后更換培養液,培養24h,以穩定細胞代謝,之后換用含有25mmol/L甘露糖的低糖(該濃度更接近人體血糖水平[9])DMEM培養基。分別于24h,48h收集上清,根據試劑盒說明測定其中葡萄糖下降量。
1.7Westernblot檢測蛋白表達水平
對照組及甘露糖組細胞提取蛋白,采用BCA法測定蛋白濃度,SDS-PAGE電泳2h,轉膜1.5h,轉膜后用5%脫脂奶粉封閉1h,加入一抗,4℃孵育過夜,TBST洗滌后加二抗孵育1h,GAPDH做內參。
1.8裸鼠皮下移植瘤模型建立及干預
將30只裸鼠適應性喂養1周后,取對數生長期的乳腺癌細胞MDA-MB-231,調整細胞濃度為每200微升3×106個,于每只裸鼠右腋皮下注射細胞懸液200μL。觀察腫瘤生長情況,待腫瘤體積約10mm3時,將裸鼠隨機分成兩組:正常飲食組、甘露糖(Mannose,Man)組,其中,Man組以飲用水配制20%甘露糖水溶液的方式喂養。每5天測量一次腫瘤的大小。4周后將所有小鼠安樂死,并剝離皮下腫瘤。測量每個異種移植腫瘤的體積和質量。將組織樣本固定用于進一步組織學分析。
1.9統計學處理
數據均采用均數±標準差(x±s)表示,采用SPSS19.0和GraphpadPrism6.0軟件進行數據分析,采用兩獨立樣本t檢驗。
2結果
2.1甘露糖對MDA-MB-231細胞增殖的影響
MTT結果顯示,對照組、甘露糖組(10mmol/L,25mmol/L,50mmol/L)MDA-MB-231細胞96h的OD值分別為0.872±0.012,0.791±0.028,0.514±0.011,0.312±0.006,增殖率比較有顯著差異性(Plt;0.05),如圖1A所示。在不影響細胞滲透壓的情況下,選用25mmol/L作為甘露糖實驗濃度,MTT結果顯示,對照組MDA-MB-231細胞在24h,48h,72h,96h的OD值分別為0.421±0.009,0.659±0.007,0.786±0.029,0.952±0.031,甘露糖組MDA-MB-231細胞在24h,48h,72h,96h的OD值分別為0.316±0.005,0.489±0.002,0.576±0.026,0.773±0.01。與對照組相比,甘露糖組MDA-MB-231細胞增殖率下降,差異有統計學意義(Plt;0.05),如圖1B所示。
2.2甘露糖對乳腺癌細胞遷移的影響
甘露糖組MDA-MB-231細胞在48h的遷移率為38.41%,低于對照組遷移率64.37%(Plt;0.05),如圖2所示。
2.3甘露糖對乳腺癌細胞葡萄糖攝取量的影響
測定MDA-MB-231細胞系培養基中葡萄糖消耗量,結果如表1所示,甘露糖可以降低培養液中葡萄糖的消耗量,以25mmol/L劑量為例,與對照組相比,相對葡萄糖攝取量在24h,48h分別降低了(18.01±1.67)%和(68.40±3.43)%。
2.4甘露糖對乳腺癌細胞葡萄糖轉運蛋白GLUT1表達的影響
觀察到甘露糖可以降低三陰性乳腺癌細胞MDA-MB-231的葡萄糖攝取量。因此,進一步探究甘露糖是否影響乳腺癌細胞中葡萄糖轉運蛋白GLUT1,SLIT2和ROBO1的表達。通過WesternBlot和免疫組化分析,發現甘露糖的存在能夠降低MDA-MB-231細胞的GLUT1表達,增加SLIT2和ROBO1的表達(Plt;0.05),如表2、圖3所示。
2.5甘露糖對乳腺癌移植瘤生長的影響
癌細胞接種3周后,30只裸鼠移植瘤長徑增至1.0cm左右(見圖4)。藥物處理后,兩組移植瘤繼續生長,其中甘露糖組生長較慢,與正常飲食組之間移植瘤生長抑制率均有顯著差異(P<0.05)。
3討論
基于癌細胞的代謝特點與正常細胞存在明顯不同,近年來出現了一種新興的腫瘤治療方法即營養代謝療法。該方法主要是通過能量限制等方式干擾腫瘤的代謝,從而達到抑制腫瘤生長或提高抗腫瘤療效的目的[10]。
甘露糖屬于單糖,其分布廣泛,與葡萄糖在2號碳位互為差向異構體[11],轉運載體蛋白GLUT1是甘露糖和葡萄糖的共同轉運載體。GLUT1的主要作用是將葡萄糖運輸到紅細胞中,使血糖維持在一定濃度[9]。GLUT1是葡萄糖代謝過程中的第一個限速酶[12],其在乳腺癌細胞中的表達顯著提高[13]。因此,有研究認為GLUT1可作為腫瘤治療的一個潛在靶點,降低GLUT1的表達可抑制腫瘤細胞的增殖[14]。一項關于口腔癌的研究表明,抑制人類口腔鱗狀癌細胞的GLUT1表達后,口腔癌細胞活力及增殖能力顯著降低[15]。本研究表明,在受到甘露糖影響后,體內外實驗結果顯示,乳腺癌細胞的GLUT1表達水平均有所下調,認為甘露糖降低MDA-MB-231細胞葡萄糖攝取能力與GLUT1的調控密切相關,這也是甘露糖抑制三陰性乳腺癌細胞增殖的一個重要因素。
SLIT是由SLITs基因編碼的一組相對分子質量為(170~190)×103的分泌型蛋白質,目前已發現的家族成員有SLIT1,SLIT2以及SLIT3。其中,SLIT2是近年來發現的一個新的腫瘤抑制因子,該基因位于4P15.2[6]。SLITs主要通過Roundabout(ROBO)受體傳遞信號,進而介導個體在發育過程中與環境之間的相互作用[16]。SLIT/ROBO信號通路具有增強或減弱癌細胞增殖的作用,例如先前研究發現SLIT/ROBO信號通路在食管鱗癌[17]、乳腺癌[8]等腫瘤組織中表達下調,而在宮頸癌組織中表達升高[18]。此外,還有研究表明,SLIT2/ROBO1可以促進骨肉瘤細胞中的Warburg效應[19]。在本研究中,發現乳腺癌細胞用甘露糖處理后,SLIT2,ROBO1的表達水平升高。因此,認為甘露糖不僅影響乳腺癌細胞中GLUT1的表達水平,而且對SLIT2/ROBO1信號軸有調控作用。
本研究初步證明甘露糖通過調控GLUT1/SLIT2通路進而抑制三陰性乳腺癌細胞增殖,這將為尋找三陰性乳腺癌治療新靶點提供理論依據。
參考文獻
[1]SUNGH,FERLAYJ,SIEGELRL,etal.Globalcancerstatistics2020:GLOBOCANestimatesofincidenceandmortalityworldwidefor36cancersin185countries[J].CA:ACancerJournalforClinicians,2021(3):209-249.
[2]KIMJ,DEBERARDINISRJ.Mechanismsandimplicationsofmetabolicheterogeneityincancer[J].CellMetabolism,2019(3):434-446.
[3]KATOY,MAEDAT,SUZUKIA,etal.Cancermetabolism:newinsightsintoclassiccharacteristics[J].JapaneseDentalScienceReview,2018(1):8-21.
[4]GONZALEZPS,O’PREYJ,CARDACIS,etal.Mannoseimpairstumourgrowthandenhanceschemotherapy[J].Nature,2018(7733):719-723.
[5]VUKSANV,JENKINSD,SPADAFORAP,etal.Konjac-mannan(glucomannan)improvesglycemiaandotherassociatedriskfactorsforcoronaryheartdiseaseintype2diabetes.Arandomizedcontrolledmetabolictrial[J].DiabetesCare,1999(6):913-919.
[6]FENGY,FENGL,YUD,etal.srGAP1mediatesthemigrationeffectofSlit2-Robo1incolorectalcancer[J].JournalofExperimentalandClinicalcancerResearch,2016(1):191.
[7]PARRAYA,SIDDIQUEHR,KURIGERJK,etal.ROBO1,atumorsuppressorandcriticalmolecularbarrierforlocalizedtumorcellstoacquireinvasivephenotype:studyinAfrican-AmericanandCaucasianprostatecancermodels[J].InternationalJournalofCancer,2014(11):2493-2506.
[8]牛蕾,米小軼.SLIT2與CXCR4在乳腺癌的表達及意義[J].中國醫藥科學,2013(7):143-145.
[9]DENGD,XUC,SUNPC,etal.CrystalstructureofthehumanglucosetransporterGLUT1[J].Nature,2014(7503):121-125.
[10]DELORENZOMS,BALJINNYAME,VATNERDE,etal.Caloricrestrictionreducesgrowthofmammarytumorsandmetastases[J].Carcinogenesis,2011(9):1381-1387.
[11]ZHANGDF,CHIAC,JIAOX,etal.D-mannoseinducesregulatoryTcellsandsuppressesimmunopathology[J].NatureMedicine,2017(9):1036-1045.
[12]ZHAOXJ,LUCP,CHUWW,etal.microRNA-124suppressesproliferationandglycolysisinnon–smallcelllungcancercellsbytargetingAKT–GLUT1/HKII[J].TumorBiology,2017(5):101042831770621.
[13]郝朗松,倪青,賈貴清,等.乳腺癌組織中Glutl蛋白表達及其臨床意義[J].四川大學學報(醫學版),2009(1):44-47.
[14]ZHANGWB,XUY,XUQG,etal.PPARδpromotestumorprogressionviaactivationofGlut1andSLC1-A5transcription[J].Carcinogenesis,2017(7):748-755.
[15]KRAUSD,RECKENBEILJ,WENGHOEFERM,etal.GhrelinpromotesoraltumorcellproliferationbymodifyingGLUT1expression[J].CellularandMolecularLifeSciences,2016(6):1287-1299.
[16]JIANGZD,LIANGG,XIAOY,etal.TargetingtheSLIT/ROBOpathwayintumorprogression:molecularmechanismsandtherapeuticperspectives[J].TherapeuticAdvancesinMedicalOncology,2019(11):1758835919855238.
[17]TSENGRC,CHANGJM,CHENJH,etal.DeregulationofSLIT2-mediatedCdc42activityisassociatedwithesophagealcancermetastasisandpoorprognosis[J].JournalofThoracicOncology:OfficialPublicationoftheInternationalAssociationfortheStudyofLungCancer,2015(1):189-198.
[18]MASL,LIUXS,GENGJG,etal.IncreasedSLITimmunoreactivityasabiomarkerforrecurrenceinendometrialcarcinoma[J].AmericanJournalofObstetricsandGynecology,2010(1):68.e1-68.e11.
[19]沈益飛.神經軸突導向因子SLIT2及其特異性受體ROBO1在骨肉瘤增殖及糖代謝過程中的作用及其機制研究[D].南京:南京醫科大學,2018.
(編輯:何琳)