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桃褐腐病抗性鑒定技術(shù)與應(yīng)用

2024-05-10 15:32:38薛璐楊英軍李勇
果農(nóng)之友 2024年4期

薛璐 楊英軍 李勇

摘 要:桃褐腐病是果樹上的常見病害,給桃樹生產(chǎn)造成巨大損失。發(fā)掘抗褐腐病種質(zhì)資源,培育抗病品種在桃生產(chǎn)中具有重要意義。研究建立了桃褐腐病離體鑒定技術(shù)規(guī)程,包含菌種獲得、菌種鑒定、人工接種、抗性鑒定等主要技術(shù)關(guān)鍵點,并應(yīng)用于105份桃種質(zhì)資源的抗褐腐病鑒定,發(fā)現(xiàn)褐腐病抗性呈現(xiàn)正態(tài)分布,抗性較強的有11份種質(zhì)。

關(guān)鍵詞:桃褐腐病;抗性;種質(zhì)資源;鑒定技術(shù)

作為桃樹上常見的重要病害,桃褐腐病從果實幼果至成熟期間均有可能發(fā)生,其對果實的危害最為嚴(yán)重。成熟期和貯藏期的果實受害最為嚴(yán)重,此外貯藏期爛果還會導(dǎo)致嚴(yán)重的經(jīng)濟損失。選取殺菌劑防治果樹褐腐病在果樹生產(chǎn)中是最高效的方法,因其低毒害、高效率的特點而得到大眾認(rèn)可。但隨著時間的推移,在實踐中也暴露出一些缺點,其作用的機制專一,長期使用殺菌劑會使田間植物的病原菌產(chǎn)生抗性,并且對田間環(huán)境也會產(chǎn)生影響。因此,篩選抗褐腐病桃種質(zhì)、培育抗褐腐病桃新品種是桃育種過程中的重要突破點。

1987年,巴西最早開始人工接種并篩選抗性種質(zhì),Bolinha[1]為第一個篩選出具有桃褐腐病抗性的品種。之后巴西利用具有褐腐病抗性來源的Conserva 672、Bolinha等材料作為親本培育了3個雜交組合,篩選了12株對褐腐病抗性表現(xiàn)較強的單株[2]。2022年,沈志軍等[3]利用616份桃資源進(jìn)行褐腐病抗性鑒定,篩選出10份抗侵染能力較強的種質(zhì)資源。用抗性材料作為育種親本是培育抗褐腐病品種的有效辦法。筆者在本研究中針對國家園藝種質(zhì)資源庫鄭州桃圃的優(yōu)勢菌株,參考前人鑒定流程并作出修改,形成桃種質(zhì)資源的鑒定技術(shù),有效推進(jìn)桃褐腐病抗性育種的進(jìn)程。

1 桃褐腐病病原菌的分離與鑒定

1.1 材料

于國家桃種質(zhì)資源庫鄭州桃圃采集具有桃褐腐病典型特征的病果。

1.2 褐腐病病原菌分離鑒定

1.2.1 病原菌的分離與純化 在桃園中尋找?guī)в泻指√卣鞯奶覙悠罚胖迷谌哟校瑤У椒肿訉嶒炇易霾≡姆蛛x工作。方法如下:從褐腐病病果中挑取霉菌孢子,選取單孢分離法[4]分離病原菌。使用滅過菌的針頭從果實發(fā)病部位邊緣挑取較新鮮的分生孢子堆,并將其接種于PDA培養(yǎng)基(配方:馬鈴薯200克,葡萄糖20克,瓊脂15~20克,水1000毫升,自然pH值。培養(yǎng)基滅菌條件為121 ℃ 30分鐘高壓蒸汽滅菌)上,于22 ℃全黑暗霉菌培養(yǎng)箱倒置培養(yǎng)。待褐腐病原菌菌落生長出菌絲,于菌絲外緣位置取少量,接種至新的培養(yǎng)基。經(jīng)過3代的分離和純化,獲得褐腐病病原菌株。

1.2.2 病原菌的形態(tài)學(xué)鑒定 分離與純化后的病原菌株接入PDA培養(yǎng)基,在全暗霉菌培養(yǎng)箱放置5天,觀察其形態(tài),并利用顯微鏡查看分生孢子和分生孢子梗的形態(tài)。菌落在培養(yǎng)基上的特征為:菌落邊緣相對整齊,顏色呈現(xiàn)灰黃色(圖1-A);菌落的背面邊緣為淺灰色,中間為深色(圖1-B);圖中的分生孢子梗呈現(xiàn)串珠狀,為不分枝或呈現(xiàn)二叉狀分枝,且為銳角(圖1-C);分生孢子為無色單孢,為卵圓形(圖1-D)。根據(jù)魏景超[5]的《真菌鑒定手冊》和Lane[6]的褐腐病病原菌的形態(tài)學(xué)鑒別方法,把測定菌株鑒定為Monilinia fructicola。

1.2.3 病原菌的分子生物學(xué)鑒定 將菌株在PDA平板上活化5天,用滅過菌的槍頭刮下菌絲,置入2毫升離心管中,加入小鋼珠,在液氮中速凍后用磨樣機研磨。使用真菌DNA提取試劑盒(OMEGA試劑盒)提取病原菌基因組,并將DNA儲存于-20 ℃冰箱備用。采用真菌rDNA ITS通用引物ITS1(5-TCCGTAGGTGAACCTGCGG3)和ITS4(5-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3)進(jìn)行菌株ITS序列測定,擴增使用引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。PCR反應(yīng)體系(25微升)如下:2×Phanta Max Master Mix(Dye Plus) 12.5微升,DNA模板1微升,引物1(F)0.5微升,引物2(R)0.5微升,ddH2O 10.5微升。PCR反應(yīng)條件為:95 ℃3分鐘,95 ℃15秒,58 ℃20秒,72 ℃ 60秒,共30個循環(huán);72 ℃5分鐘。用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,觀察到明亮目的條帶后,將產(chǎn)物送至北京六合華大基因科技有限公司進(jìn)行測序。將測序得到的序列與NCBI中已知基因序列進(jìn)行BLST同源性檢索,并下載與測定菌株相似度超過99%的部分桃褐腐病病原菌株的基因序列。采取最大似然法和鄰接法,用MEGA10.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。經(jīng)測序得到大小約500 bp的ITS片段序列,基于rDNA-ITS序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹結(jié)果表明,筆者在本研究中鑒定的桃褐腐病病原菌菌株與Monilinia fructicola(GenBank 登錄號為 MZ047241.1)聚在一個分支上,二者相似度高達(dá)99%,因此測定菌株被鑒定為Monilinia fructicola(圖2)。

2 桃褐腐病抗性鑒定技術(shù)

2.1 病菌的培養(yǎng)

純化后的病菌使用濾紙片保存在超低溫冰箱,接種前20天使用PDA培養(yǎng)基活化培養(yǎng)。用PDA培養(yǎng)基進(jìn)行菌種的擴繁,菌塊接種完成后,將其放到22 ℃的全暗霉菌培養(yǎng)箱,5天后備用。抗性鑒定參考前人的方法[7-8],并作調(diào)整。挑取菌株的少量新鮮分生孢子的菌塊,用無菌水(含0.01%吐溫20)沖洗菌塊,用高級擦鏡紙進(jìn)行過濾,最大限度地減少菌絲碎片,從而得到分生孢子懸浮液。用顯微鏡與血球計數(shù)板觀察分生孢子狀態(tài),并將分生孢子懸浮液的濃度調(diào)整為2×105個/毫升,用于桃果實接種。

2.2 果實采收與篩選

采收成熟度為八成,每份種質(zhì)采20~25個果實。采收后立即運回控溫實驗室(24±1 ℃),平衡果實溫度4小時以上,選擇無病蟲害、無損傷,并且成熟度一致的桃果實,用于褐腐病抗性接種鑒定。采收桃果實需避開雨天。

2.3 接種鑒定

準(zhǔn)備透明塑料筐3個(尺寸為380毫米×250毫米×200毫米),底部鋪雙層吸水紙,倒入100毫升無菌水潤濕吸水紙,均勻放入18個培養(yǎng)皿(每個塑料筐可放6個培養(yǎng)皿),每個培養(yǎng)皿內(nèi)放1個墊圈,再放18個桃果實(12個用于接種,6個作為對照)。用小量程的移液槍吸10微升分生孢子懸浮液,滴向桃果實的側(cè)面中央部位,對照組則滴加等量無菌水。接種后的果實置于透明塑料筐中,蓋上筐蓋,保持濕度90%~95%。在(24±1)℃、光暗交替(光照12小時和黑暗12小時)的環(huán)境中培養(yǎng),每天調(diào)查并記錄病果數(shù)量和病斑直徑。參考許志剛[9]的方法,將桃發(fā)病情況分為9級(表1),依據(jù)病果數(shù)計算各種質(zhì)接種褐腐病后的病情指數(shù),病情指數(shù)=100×∑(各級發(fā)病果數(shù)×病級)/(果實總數(shù)×最高發(fā)病級數(shù))。

3 桃褐腐病抗性鑒定技術(shù)應(yīng)用

根據(jù)上述桃果實褐腐病抗性鑒定技術(shù),鑒定了105份桃種質(zhì)。由圖3可知,依托褐腐病抗性調(diào)查計算出的病情指數(shù)基本呈現(xiàn)正態(tài)分布。抗病與感病品種的鑒定結(jié)果圖舉例如下(圖4),如圖所示,在第7天時,感病種質(zhì)有2/3的果實被大面積侵染,而抗病種質(zhì)未發(fā)現(xiàn)被侵染。

褐腐病樣本的調(diào)查統(tǒng)計如表2所示,結(jié)合105份桃種質(zhì)資源病情指數(shù)的聚類分析,將桃種質(zhì)對褐腐病病原菌的抗性劃分為5類:高抗HR、抗病R、中抗M、感病S、高感HS。

4 討論與結(jié)論

桃褐腐病為桃果實中的常見病害,會出現(xiàn)于桃生長發(fā)育的各個階段,對果實的影響最為嚴(yán)重,研究桃種質(zhì)對褐腐病的抗病感病情況尤為重要。目前對桃褐腐病離體接種的系統(tǒng)研究較少,本研究結(jié)合了前人研究方法,并將其完善。從105份桃資源中篩選的高抗種質(zhì)可作為抗性育種的親本,進(jìn)而加速桃褐腐病抗性育種進(jìn)程。

通過調(diào)查105份桃褐腐病樣本的抗病感病情況,發(fā)現(xiàn)對褐腐病抗性表現(xiàn)較強的有11份種質(zhì),占測定種質(zhì)資源的10.5%。桃褐腐病鑒定技術(shù)為桃褐腐病抗性育種奠定了一定的基礎(chǔ)。

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