


摘 要:為實現糧油儲運中真菌毒素的快速檢測,本文建立基于熒光探針技術檢測赭曲霉毒素A(Ochratoxin A,OTA)的熒光傳感方法。通過制備硫化銅納米顆粒(Copper Sulfide Nanoparticles,CuS NPs)以及在CuS NPs上修飾OTA單體克隆抗體(Antibody,Ab)形成硫化銅納米顆粒-OTA單克隆抗體免疫信號標記物(CuS-Ab NPs)進行熒光檢測,采用外標法定量。結果顯示,OTA濃度在0.1~200.0 ng·mL-1線性關系良好,方法檢出限為0.01 ng·mL-1,加標回收率為93.89%~109.96%,相對標準偏差為2.37%~5.12%。該方法檢測靈敏度及準確性高、特異性好,適用于糧油儲運中OTA的檢測。
關鍵詞:熒光探針技術;赭曲霉毒素A(OTA);加標回收率
Detection of Ochratoxin A in Grain and Oil Storage and Transportation Based on Fluorescence Probe Technology
DU Ruiting
(Hohhot Grain and Oil Quality Testing Center, Hohhot 010070, China)
Abstract: In order to realize the rapid detection of mycotoxins in grain and oil storage and transportation, a fluorescence sensing method based on fluorescence probe technology was established to detect ochratoxin A (OTA). Copper sulfide nanoparticles (CuS NPs) were prepared and OTA monoclonal antibody (Ab) was modified on CuS NPs to form copper sulfide nanoparticles-OTA monoclonal antibody immune signal marker (CuS-Ab NPs) for fluorescence detection, and external standard method was used for quantification. The results showed that the linear relationship of OTA concentration was good in the range of 0.1 ng·mL-1 to 200.0 ng·mL-1, the detection limit of the method was 0.01 ng·mL-1, the recovery rate was 93.89% to 109.96%, and the relative standard deviation was 2.37% to 5.12%. This method has high sensitivity, accuracy and specificity, and is suitable for OTA detection in grain and oil storage and transportation.
Keywords: fluorescent probe technology; ochratoxin A (OTA); spiked recovery rate
近年來,隨著經濟的快速發展以及生活水平的提高,人們對糧油質量的關注度日益增加[1]。綠色、無毒無害的食品不僅能夠滿足人們日常所需的營養膳食,且不會對人體造成任何傷害。然而,在糧油儲運過程中,食品易受到真菌毒素、殺蟲劑等物質的污染,對人們健康造成嚴重威脅[2]。因此,有必要采取有效的技術手段對糧油質量進行檢測,從而確保糧油安全。糧油中最具代表性的毒素包括赭曲霉毒素A(Ochratoxin,OTA)、玉米赤霉烯酮毒素(Zearalenone,ZEN)、伏馬毒素(Fumonisin,FB1)、嘔吐毒素(Deoxynivalenol,DON)及黃曲霉毒素(Aflatoxin B1,AFB1)和T-2毒素等[3]。有研究發現,OTA與動物的腎毒性相關,并有可能造成動物肝臟受損[4],對人體健康產生極大威脅。目前,針對糧油中真菌毒素檢測常用的技術手段包括色譜分析、傳感器以及免疫分析[5]等。其中,基于熒光探針的檢測技術具有靈敏度高、快速、樣品消耗低等優點,但該方法在檢測OTA的應用研究中鮮少報道。基于此,本文建立基于熒光探針技術檢測糧油儲運中OTA的方法,以實現真菌毒素的快速、高效檢測。
1 材料與方法
1.1 材料及試劑
玉米、咖啡和大豆,購自某大型超市。
巰基乙酸,阿拉丁試劑有限公司;氯化銅,國藥集團化學試劑有限公司;NaOH、濃硫酸,天津市風船化學試劑科技有限公司;硫代乙酰胺,天津博迪化工股份有限公司;戊二醛50%,天津市大茂化學試劑廠;2-嗎啉乙磺酸,天津渤化化學試劑有限公司;N-N二甲基甲酰胺,北京金泰宏達生物科技有限公司;N-羥基琥珀酰亞胺、牛血清白蛋白,北京索萊寶科技有限公司。上述所有試劑均為分析純。
標準品OTA(1 mg·mL-1)、ZEN(1 mg·mL-1)、FB1(5 mg·mL-1)、DON(5 mg·mL-1)、AFB1(10 mg·mL-1)和T-2毒素(10 mg·mL-1),北京壇墨質檢科技有限公司;OTA單克隆抗體(5 mg·mL-1)、抗原(4 mg·mL-1),山東綠都科技有限公司。實驗中所用水均為超純水。
1.2 實驗儀器
S210 pH計、AL240電子天平,瑞士梅特勒-托利多公司;MK3酶標儀、F1微量移液器、Nicolet iS50傅里葉變換紅外光譜儀,美國賽默飛世爾公司;DHG-9245A恒溫培養箱,上海恒科儀器有限公司;F97Pro熒光分光光度計,上海棱光技術有限公司;Mili-Q純水系統,美國Millipore公司;LS13320激光粒度,美國貝克曼庫爾特公司;JEM-2100F掃描電鏡、D/max 2500 X射線衍射儀,日本理學株式會社。
1.3 實驗方法
1.3.1 納米顆粒及免疫信號標記物的制備
(1)硫化銅納米顆粒(Copper Sulfide Nanoparticles,CuS NPs)的制備。在100 mL超純水中加入1.705 g CuCl2·2H2O和13.85 mL巰基乙酸,混合攪拌30 min,加入濃度為20 mg·mL-1的NaOH溶液,使溶液的pH值達到9.0。然后,加入0.751 g硫代乙酰胺,在50 ℃條件下反應6 h并通入N2,以充分去除氧氣。最后用超濾離心管離心洗滌3次,并將其分散于超純水中,制備得到CuS NPs。
(2)硫化銅納米顆粒-OTA單克隆抗體免疫信號標記物(CuS-Ab NPs)的制備。分別取100 μL濃度為32 mg·mL-1的N-羥基琥珀酰亞胺和濃度為20 mg·mL-1的N-N二甲基甲酰胺(用2-嗎啉乙磺酸緩沖液配制,pH=5.5)溶液,與1 mL CuS NPs懸浮液混合,活化CuS NPs表面的羧基,在25 ℃條件下反應2 h,離心后去除上清液,再將1 mL濃度為220 μg·mL-1的OTA單克隆抗體加入其中,于4 ℃下振蕩孵育12 h,離心。最后用磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌3次,制備得到CuS-Ab NPs。
1.3.2 定量檢測方法及標準曲線的繪制
①對黑色聚苯乙烯微孔板的表面用200 μL濃度為2.5%的戊二醛(PBS緩沖液溶解)氨基活化2 h,之后使用PBS洗滌3次;②在活化后的微孔板上加入50 μL濃度為30 μg·mL-1的OTA抗原,37 ℃孵育2 h以固定OTA抗原,用PBS緩沖液洗滌3次后,再加入120 μL濃度為5%的牛血清白蛋白溶液,再次用PBS緩沖液洗滌3次;③將50 μL濃度為0.7 mg·mL-1的CuS-Ab NPs和不同濃度的OTA加入到固定有OTA抗原的微孔板中,37 ℃反應60 min,并用PBS緩沖液洗滌3次;④為溶解CuS-Ab NPs免疫標記物的Cu2+,將200 μL濃度為0.1 mol·L-1的鹽酸溶液加入到微孔板中,于37 ℃下振蕩反應30 min;⑤加入5 μL濃度為0.5 mg·mL-1的銅離子熒光探針繼續振蕩45 min,進行熒光檢測。實驗中,用PBS緩沖液將OTA的標準品稀釋為不同濃度梯度(0.1 ng·mL-1、1.0 ng·mL-1、10.0 ng·mL-1、100.0 ng·mL-1和200.0 ng·mL-1)的OTA,并依據相應的熒光強度來繪制標準曲線。
1.3.3 特異性實驗
在檢測中可能存在被多種真菌毒素污染的現象,因此選取AFB1、DON、ZEN、FB1以及T-2毒素等干擾物質進行特異性實驗。這些毒素與OTA單克隆抗體相結合時,會發生假陽性。在實驗中,選取OTA濃度為1 ng·mL-1,其他毒素濃度為10 ng·mL-1,進行3次平行實驗。
1.3.4 樣品前處理方法
分別稱取1 g大豆面、玉米面和咖啡面置于5 mL離心管中,加入2 mL濃度為10 ng·mL-1的OTA標準液,漩渦振蕩5 min,然后在轉速為10 000 r·min-1條件下離心15 min,取上清液,并過0.45 μm微濾膜,最后用PBS緩沖液稀釋。
2 結果與分析
2.1 實驗條件的優化
2.1.1 CuS-Ab NPs濃度的優化
通過研究不同濃度CuS-Ab NPs對應熒光強度的變化,可知CuS-Ab NPs濃度為0.5~0.7 mg·mL-1時,其對應的熒光強度隨CuS-Ab NPs濃度的增大而增強;當濃度在0.7~0.9 mg·mL-1時,其對應的熒光強度基本不變。因此,選擇CuS-Ab NPs濃度為0.7 mg·mL-1進行后續實驗。
2.1.2 OTA抗原濃度的優化
通過研究不同OTA抗原濃度下熒光強度的變化,可知OTA抗原濃度為10~30 μg·mL-1時,熒光強度隨OTA抗原濃度的增加而增強;當OTA抗原濃度為30~50 μg·mL-1時,熒光強度保持不變。因此,選擇OTA抗原濃度為30 μg·mL-1進行后續實驗。
2.1.3 反應時間的優化
通過研究不同反應時間對熒光強度的影響,可知在20~60 min,Cu2+探針發生開環導致水解反應產物逐漸增多,且熒光強度增大;當反應時間超過60 min后,CuS-Ab NPs和OTA抗原的濃度、熒光強度均降低。因此,選擇反應時間為60 min進行后續實驗。
2.2 標準曲線的繪制
按照1.3.2項所示方法,進行熒光檢測,發現目標產物在495 nm激發光極下發出508~650 nm的發射光,且與熒光強度成正比,熒光強度在554 nm處達到峰值。因此,選取在554 nm熒光強度下對OTA進行定量檢測,結果如圖1所示。以OTA濃度為橫坐標,以其對應的熒光強度為縱坐標,建立標準曲線,線性方程為y=-5.211x+8 426,相關系數為R2=0.693 8,表明OTA濃度在0.1~200.0 ng·mL-1線性關系良好。
2.3 檢出限
以3倍信噪比(S/N=3)對應的濃度為檢出限,計算得到檢出限為0.01 ng·mL-1,表明該方法能夠實現對糧油樣品中OTA的快速檢測,且靈敏度高。
2.4 特異性實驗
為驗證基于熒光探針檢測糧油中毒素OTA的特異性,選取1.3.3項中提到的5種毒素作為干擾物質,測定結果如圖2所示。圖2中,縱坐標為空白對照組(F0)/實驗組(F)。當只加入OTA時,F0/F值最大;當加入5種干擾物時,F0/F值較小且相差較小,表明干擾物質不能與OTA結合。結果表明,OTA和抗體間具有高結合作用,特異性良好。
2.5 加標回收實驗
選取被OTA污染的玉米、大豆和咖啡按照本研究中建立的方法進行檢測,以研究基于熒光探針技術對糧油中真菌毒素檢測的適用性。同時,采用傳統的酶聯免疫吸附方法(Enzyme-Linked Immunosorbent Assay,ELISA)進行對比,結果如表1所示。
由表1可知,在0.5 ng·mL-1、5.0 ng·mL-1和50.0 ng·mL-1的加標水平下,按照ELISA法測定不同樣品中OTA的加標回收率為88.36%~109.00%,而按照本研究中建立方法所測定的結果為93.89%~109.96%;ELISA方法計算得到相對標準偏差為3.35%~6.32%,而基于本研究中建立方法的結果為2.37%~5.12%。對比可知,兩種方法結果基本保持一致,表明基于熒光探針技術對糧油中OTA含量的檢測結果準確性較高。
3 結論
本文建立了一種基于熒光探針技術檢測OTA的熒光傳感方法。結果表明,OTA濃度在0.1~200 ng·mL-1線性關系良好,方法檢出限為0.01 ng·mL-1,加標回收率為93.89%~109.96%,相對標準偏差為2.37%~5.12%。該方法檢測靈敏度及準確性高、特異性好,適用于糧油儲運中OTA的檢測。
參考文獻
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