中圖分類號:S532 文獻標(biāo)志碼:A 文章編號:2096-9902(2025)15-0050-05
DOI:10.20028/j.zhnydk.2025.15.012
Abstract:Asthefourth largestglobalfoodcrop,potatoholdssignificantimportanceinensuring foodsecurityand promoting agriculturalidustrializatioTradioaltuberpropgationfacschallngessuchaslongycles,loencandsuscetiblito pestanddiseasetransmisio.Inontrast,theinvitrorapidpropagationtechnologyenablestherapidmuliplicationandlargscale productionofvirus-freesedlingsthroughtisueculture.TopreservethequalityoftheWenling Xiaoyangshupotatothisstudy utilizedWenlingXiaoyangshuasexperimentalmaterialtoinvesigatesterilizationmethods,dferentiationmediumfoulatiosnd subculture medium formulations.Theresultsdemonstrated that the optimal sterilizationprotocol involved 75% ethanol for 30 s combined with 0.1% HgC 12 for 7 min,achieving the lowest contamination rate of 1.67% for explants.The optimized conditions for stem tip callus induction were MS medium supplemented with 6.5g?L-1 agar, 30g?L-1 sucrose, 0.3 mg·L -1 NAA (Naphthaleneacetic acid),and 1.5 mg ·L -1 6 -BA (6-benzylaminopurine),yielding the highest induction rate of 91.67% .For subculture,the optimal medium was MS+6.5 g·L -1 agar+ 30g 山 -1 sucrose+0.1 mg·L -1 NAA+0.1 mg·L -1 6-BA.
Keywords: potato; tissue culture; rapid propagation; germplasm resource protection; breeding
馬鈴薯是茄科茄屬一年生草本植物,其塊莖可供食用,是僅次于小麥、水稻、玉米的第四大重要糧食作物。傳統(tǒng)馬鈴薯繁殖依賴薯塊無性繁殖,但存在周期長、病毒累積、種質(zhì)退化及病蟲害傳播風(fēng)險高等問題,成薯的產(chǎn)量和質(zhì)量受到影響,這大大制約了馬鈴薯產(chǎn)業(yè)化發(fā)展[2-3]。此外,四倍體馬鈴薯基因組高度雜合,遺傳改良難度大,傳統(tǒng)雜交育種效率低下,品種更新周期長達10~15年4。在此背景下,馬鈴薯快繁技術(shù)應(yīng)運而生,旨在通過組織培養(yǎng)、脫毒處理及遺傳改良,實現(xiàn)種苗高效生產(chǎn)與品質(zhì)提升,為現(xiàn)代農(nóng)業(yè)提供可持續(xù)解決方案[4-5]。
溫嶺小洋薯是臺州溫嶺當(dāng)?shù)貎?yōu)勢微型薯種質(zhì)資源,人選2024年農(nóng)業(yè)農(nóng)村部種業(yè)管理司發(fā)布的“十大全國優(yōu)異農(nóng)作物種質(zhì)資源推介和典型開發(fā)案例”。其具有薯塊迷你而整齊、皮薄光滑、結(jié)薯率高、營養(yǎng)豐富、口感軟糯和耐貯藏等特點。但在實踐生產(chǎn)中,營養(yǎng)塊栽培及多年連作,造成品種退化,品質(zhì)下降。本研究以溫嶺小洋薯為試材,對外植體消毒方式、培養(yǎng)基配方、繼代培養(yǎng)基配方等進行了優(yōu)化,篩選出適宜的溫嶺小洋薯快繁條件,建立了溫嶺小洋薯快繁技術(shù)體系,為實現(xiàn)溫嶺小洋薯的工廠化育苗及種薯快繁提供技術(shù)支撐。
1材料與方法
1.1 試驗材料
供試溫嶺小洋薯由臺州默梵農(nóng)業(yè)發(fā)展股份有限公司提供。
1.2 試驗方法
1.2.1培養(yǎng)方法將溫嶺小洋薯種薯放至室溫 23±0.5°C 進行催芽,
待芽長出 3~4cm 后,取頂端約 1cm 的芽作為外植體材料。試驗所涉及培養(yǎng)基 pH 為5.6~5.9,培養(yǎng)環(huán)境保持溫度 23±1°C ,光照強度 2500Lx ,光照時間每天 16h[6]
1.2.2 消毒處理
以單獨用 75% 酒精30s進行消毒處理組(消毒完畢后用無菌水沖洗3~4遍)作為對照組(CK),分別設(shè)置不同的消毒劑、消毒濃度、消毒時間對溫嶺小洋薯莖尖進行消毒處理,具體見表1。先用 75% 酒精消毒
30s后,用無菌水沖洗3~4遍后,再結(jié)合其余消毒劑進行消毒。并于消毒結(jié)束后繼續(xù)用無菌水沖洗3~4遍,方可進行后續(xù)操作。在超凈工作臺上利用解剖刀剝離出帶1~2個葉原基的莖尖約 0.2±0.1mm ,接至MS 培養(yǎng)基中。每瓶接入10個外植體,各統(tǒng)計10瓶。
溫嶺小洋薯莖尖接種至MS培養(yǎng)基 15d 后,統(tǒng)計染菌率和成活率。
表1溫嶺小洋薯莖尖消毒方案

染菌率
污染個數(shù)/接種總數(shù) ×100% 成活率
成活個數(shù)/接種總數(shù) ×100% 。
1.2.3莖尖愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基篩選
將消毒后的剝離出的溫嶺小洋薯莖尖接種在不同的培養(yǎng)基上進行誘導(dǎo)愈傷組織,以1/2MS培養(yǎng)基作對照組(CK),分別設(shè)置3種基礎(chǔ)培養(yǎng)基(MS、MT、WPM),見表2。培養(yǎng)基為基礎(chǔ)培養(yǎng)基 ?+ 蔗糖( 30g?L-1)+ 瓊脂 (6.5g?L-1) ,每瓶接10個外植體,各統(tǒng)計10瓶。
表2溫嶺小洋薯莖尖誘導(dǎo)培養(yǎng)基篩選

1.2.4激素水平的選擇
將消毒后的溫嶺小洋薯莖尖外植體接種在培養(yǎng)基進行愈傷誘導(dǎo)。以未加激素的MS培養(yǎng) ?MS+30g?L-1 蔗糖 +6.5g?L-1 瓊脂)為對照組(CK),分別設(shè)置不同濃度的6-BA濃度和NAA濃度誘導(dǎo)愈傷組織,具體見表3。每瓶接入10個外植體,各統(tǒng)計10瓶。
6-BA濃度和NAA濃度誘導(dǎo)愈傷組織分化,具體見表4。每瓶接入10個外植體,各統(tǒng)計10瓶。愈傷組織培養(yǎng)30d后,觀測根、芽分化、褐化情況,并統(tǒng)計愈傷組織分化下根分化率、芽分化率、褐化率,篩選出芽分化培養(yǎng)基。
溫嶺小洋薯莖尖培養(yǎng) 30d 后,觀測愈傷量,計算誘導(dǎo)率。
褐化率
褐化個數(shù)/接種總數(shù) ?×100% 。
愈傷組織(根或芽)分化率 L= 分化個數(shù)/接種總數(shù) ?x 100% ,
愈傷組織誘導(dǎo)率
誘導(dǎo)個數(shù)/接種總數(shù) ×100% 。
表4溫嶺小洋薯愈傷組織分化成苗培養(yǎng)基方案

表3溫嶺小洋薯莖尖誘導(dǎo)愈傷培養(yǎng)基方案

1.2.5愈傷組織分化培養(yǎng)基篩選
將1.2.4最優(yōu)下誘導(dǎo)出的愈傷組織用解剖刀分解成為 1cm3 體積大小,接種到分化培養(yǎng)基。 30d 后統(tǒng)計分化情況。以未加激素的MS培養(yǎng)( MS+30g?L-1 蔗糖 + 6.5g?L-1 瓊脂)為對照組(CK),分別設(shè)置不同濃度的
1.2.6繼代培養(yǎng)基的篩選
將分化的無菌小苗剪成帶一個腋芽的莖段,將其接種在繼代培養(yǎng)基上培養(yǎng),以未加激素的MS培養(yǎng)為對照組(CK),分別設(shè)置3個濃度NAA(0.1、0.2和0.3mg?L-1 )3個濃度6-BA(0.1、0.2和 0.3mg?L-1 )共9個不同的繼代培養(yǎng)基處理,培養(yǎng)基選擇方案見表5。每瓶接6個外植體,各統(tǒng)計10瓶。繼代培養(yǎng) 30d 后,用游標(biāo)卡尺分別測量組培苗的根長、莖粗、株高,統(tǒng)計分支數(shù)量。根長為生根處至根最下端,莖粗為組培苗中段粗度,株高為生根處至植株最高處,分支為生根處向上 2cm 內(nèi)莖的分支。
表5溫嶺小洋薯快繁培養(yǎng)基配比優(yōu)化方案

1.3 統(tǒng)計方法
數(shù)據(jù)用OfficeExcel2020軟件統(tǒng)計分析數(shù)據(jù),用SPSS進行LSD方差分析并進行差異顯著檢驗
2 結(jié)果與分析
2.1莖尖消毒方案篩選
不同消毒方案對溫嶺小洋薯莖尖的消毒效果統(tǒng)計見表 6 不同消毒劑組合處理下,溫嶺小洋薯外植體的染菌率在 1.67%~10.83% ,均低于CK的 15.83% 。S5和S9的染菌率最低,均為 1.67% ,在 plt;0.05 水平下表現(xiàn)為差異顯著。觀察發(fā)現(xiàn),不論是升汞還是次氯酸鈉,在超過適宜的消毒時間后,外植體的死亡率隨著消毒時間的增加而增加。外植體的成活率在 81.67% }96.67% ,均高于CK的 78.33% 。其中,處理效果最佳的為S5,成活率為 96.67% ,顯著高于CK組。此外,S1一S9的成活率總體要高于S10一S18。本研究下,S5處理組的染菌率最低,成活率最高,即在 75% 酒精處理30s后結(jié)合 0.1% 升汞 7min 消毒,外植體的染菌率最低為1.67% ,最高成活率為 96.67% 。
表6不同消毒方案對莖尖的消毒效果

注:表格中不同小寫字母代表差異顯著( plt;0.05 ,下同。
2.2 莖尖愈傷組織培養(yǎng)基篩選
不同基礎(chǔ)培養(yǎng)基誘導(dǎo)對溫嶺小洋薯莖尖愈傷組織的培養(yǎng)統(tǒng)計結(jié)果見表7。在不同基礎(chǔ)培養(yǎng)基誘導(dǎo)下,溫嶺小洋薯莖尖愈傷組織的誘導(dǎo)率在 51.67% 260.83% ,與CK組誘導(dǎo)率 52.50% 無顯著差異。從表7可見,誘導(dǎo)效果最好的是A1組,誘導(dǎo)率達 60.83% 。其中,A1誘導(dǎo)出的愈傷組織量最多。從愈傷組織表現(xiàn)出的顏色與質(zhì)地上來看,A1表現(xiàn)最好,為呈黃綠色,顆粒較小,較致密。而A3處理最差,呈部分褐化,顆粒小,疏松。由以上可知,MS培養(yǎng)基誘導(dǎo)效果優(yōu)于其他各種基礎(chǔ)培養(yǎng)基,且愈傷的質(zhì)量也優(yōu)于其他組。
表7溫嶺小洋薯莖尖誘導(dǎo)培養(yǎng)基的篩選

注: + 越多代表誘導(dǎo)出的愈傷組織越多,下同。
2.3愈傷誘導(dǎo)的激素水平篩選
不同激素水平對溫嶺小洋薯莖尖的誘導(dǎo)愈傷組織效果見表8。在不同的處理下,愈傷組織的誘導(dǎo)率在82.50%~95.83% ,與CK組誘導(dǎo)率 60.83% 統(tǒng)計比較,在plt;0.05 水平下,表現(xiàn)為差異顯著。其中,誘導(dǎo)效果最好的是L6,誘導(dǎo)率為 95.83% 。
在不同激素水平誘導(dǎo)下,溫嶺小洋薯誘導(dǎo)出愈傷組織的情況有差異。其中,L6、L9誘導(dǎo)出的愈傷組織量最多。從愈傷組織表現(xiàn)出的顏色與質(zhì)地上來看,L3、L6表現(xiàn)最好,為黃綠色,顆粒小,致密。L9表現(xiàn)最差,為邊緣黃褐色,顆粒大,疏松。由愈傷量可得,在6-BA的濃度保持不變的情況下,愈傷量隨著NAA濃度的升高而增加;同樣在NAA的濃度保持不變的情況下,愈傷量隨著6-BA濃度的升高而增加。
由以上結(jié)果可知NAA濃度在 0.3mg-L-1 ,6-BA濃度在 1.5mg?L-1 組合激素水平下,愈傷組織誘導(dǎo)率最高為 91.67% ,愈傷組織的數(shù)量和質(zhì)量均較好。
表8不同誘導(dǎo)培養(yǎng)基激素水平對莖尖愈傷組織的影響

2.4愈傷組織分化培養(yǎng)基篩選
將愈傷組織用解剖刀分解成 1cm3 體積大小,接種到分化培養(yǎng)基。 30d 后統(tǒng)計不同培養(yǎng)基對溫嶺小洋薯愈傷組織的分化影響,結(jié)果見表9。在不同的處理下,統(tǒng)計溫嶺小洋薯愈傷組織的根分化率,根分化率在 25.00%~45.00% 之間,其中效果最好的是B6,為45.00% ,與CK組的 21.67% 相比,在 plt;0.05 水平下,表現(xiàn)為差異顯著。分化最低的為B1,較CK高了3.33% ,差異未達顯著水平。
統(tǒng)計芽分化率,芽分化率在 21.67%~63.33% 之間,其中處理效果最好的是B4,為 63.33% ,與CK的分化率 21.67% 相比,在 plt;0.05 水平下,表現(xiàn)為差異顯著。最差的是B3,為 21.67% ,與CK無顯著差異。統(tǒng)計褐化率,褐化率在 20.00%~56.67% 之間,最好的為B4,最差的為B6,為 43.33% ,兩者與 CK56.67% 相比,在plt;0.05 水平下,表現(xiàn)均為差異顯著。此方案下,NAA濃度在 0.5mg?L-1 ,6-BA濃度在 2.0mg?L-1 組合激素水平下,芽分化率最高為 63.33% 。
表9不同培養(yǎng)基對愈傷組織分化的影響

2.5繼代培養(yǎng)基篩選
將分化的無菌小苗剪成帶一個腋芽的莖段,將其接種在繼代培養(yǎng)基上培養(yǎng),繼代 30d 后,統(tǒng)計不同培養(yǎng)基對溫嶺小洋薯的生長影響結(jié)果見表10。
不同處理下,統(tǒng)計溫嶺小洋薯組培苗的根長,長度在 2.48~4.47cm 之間。其中效果最好的為M1組,根均長為 4.47cm ,與CK組根長 3.25cm 比較,在 plt; 0.05水平下,表現(xiàn)為差異顯著。最差的為M8,根長為2.48cm ,較CK短了 23.69% 。
統(tǒng)計莖粗為 0.71~0.83mm ,各處理間并無顯著差異;株高統(tǒng)計表明,株高在 4.29~8.29cm ,其中最高組為M7,株高為 8.29cm ,統(tǒng)計上與CK組株高 6.69cm 無差異;株高最矮化組為M6,株高為 4.29cm ,與CK組對比,在 plt; 0.05水平下,表現(xiàn)為差異顯著。統(tǒng)計分支數(shù),各組分子數(shù)在1.56~3.11個之間,除M9外,均高于CK組分支1.56個,其中,處理效果最好的是M1,即在NAA 10.1mg?L-1+ 6-BA 0.1mg?L-1 ,分支數(shù)為3.11個,與CK組分支數(shù)對比,在 plt;0.05 水平下,表現(xiàn)為差異顯著。在此培養(yǎng)條件下,植株分化和根發(fā)育良好,可進行煉苗后移栽。
表10不同培養(yǎng)基對組培苗的影響

3 討論與結(jié)論
外植體的消毒是溫嶺小洋薯莖尖脫毒技術(shù)取得成功的基礎(chǔ),對于莖尖的處理既要使其不受污染,又要確保其成活狀態(tài)。李東方等研究表明,氯化汞或次氯酸鈉與 75% 乙醇組合使用對溫嶺小洋薯莖尖的消毒效果較好。本研究選用18個消毒方案對溫嶺小洋薯莖尖進行染菌率和成活率測定,測定結(jié)果表明升汞、次氯酸鈉對莖尖污染均有一定的抵制作用,溫嶺小洋薯外植體的成活率在 81.67%~96.67% ,均高于CK的 78.33% ,升汞的消毒效果好于次氯酸鈉。其中0.1% 升汞消毒 7min 處理和 0.15% 升汞消毒 9min 處理溫嶺小洋薯莖尖消毒效果最好,染菌率低至 1.67% ,成活率可達 96.67%.90.87% 。在適宜濃度內(nèi),消毒效果會隨著消毒劑濃度增加而增強,但超出適宜濃度后,濃度的增加會導(dǎo)致外植體死亡率的上升。在4組莖尖愈傷組織誘導(dǎo)基礎(chǔ)培養(yǎng)基的篩選中,A1表現(xiàn)最好,即基礎(chǔ)培養(yǎng)基選擇MS培養(yǎng)基,這也與杜連彩的研究較為符合。
植物激素對馬鈴薯愈傷組織的誘導(dǎo)具有重要的調(diào)節(jié)作用。在MS培養(yǎng)基中加入生長調(diào)節(jié)劑GA3、6-BA、NAA等激素成分化培養(yǎng)基,其成分及濃度是影響形態(tài)建成的關(guān)鍵,濃度過低會出現(xiàn)大量愈傷組織無法分化成苗;濃度過高,會出現(xiàn)黃化現(xiàn)象,導(dǎo)致成活率降低。本研究中選用10組莖尖愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)方案中,其中 0.3mg?L-1NAA+1.5mg?L-16-B/ A組合表現(xiàn)較為良好,所產(chǎn)出的愈傷組織體積較大,結(jié)構(gòu)較疏松。在 0.3mg?L-1NAA+3mg?L-16-BA 組合下,提高 6- BA濃度,有部分愈傷組織褐化,這與學(xué)者董穎蘋等[]范繼紅等的研究類似,在6-BA的濃度保持不變的情況下,愈傷量隨著NAA濃度的升高而增加。根據(jù)根芽激素理論,生長素NAA可促進根的生長,細胞分裂素6-BA可促進芽的增殖[12-14],適當(dāng)?shù)腘AA、6-BA配比培養(yǎng)基,誘導(dǎo)分化能力越強。在10組溫嶺小洋薯愈傷組織分化培養(yǎng)基篩選中,由結(jié)果可知,當(dāng)NAA的濃度增加時,可促進愈傷組織分化出根,但會導(dǎo)致愈傷組織的褐化加劇,這與楊春等的研究類似,同時6-BA的濃度增加可促進芽的分化,這也符合根芽激素理論。其中 0.5mg?L-1NAA+2mg?L-1 6-BA 組合表現(xiàn)較為良好,分化出芽較多, 1.5mg?L-1 NAA+2mg?L-1 6-BA組合中,分化根較多。在10組不同的溫嶺小洋薯繼代培養(yǎng)基方案中,M1組 0.1mg?L-1 NAA+0.1mg?L-1 6-BA在組培苗根長、莖粗、株高、分支方面表現(xiàn)突出。
綜上所述,在本試驗條件下,優(yōu)化溫嶺小洋薯無菌脫毒的培養(yǎng)體系為: ① 無菌消毒,使用 75% 的酒精和 0.1% 的升汞依次對溫嶺小洋薯莖尖進行消毒30s和 7min ,用無菌水沖洗5~6遍后,在超凈工作臺上利用解剖刀剝離出帶葉原基的莖尖 0.2±0.1mm ,作為試驗材料。 ② 莖尖愈傷組織培養(yǎng)條件為培養(yǎng)基 pH 為5.6~5.9,培養(yǎng)溫度
,光照強度 2500Lx ,光照時間每天 16h ,培養(yǎng)基配方為 MS+30g?L-1 蔗糖 +6.5g?L-1 瓊脂 +0.3mg-L-1 NAA+1.5mg?L-1 6-BA。 ③ 溫嶺小洋薯愈傷組織芽分化培養(yǎng)基為 MS+6.5g?L-1 瓊脂 + 30g?L-1 蔗糖 +0.5mg?L-1NAA+2mg?L-1 6-B. A,培養(yǎng)基ΔpH 為 5.6~5.9 ,培養(yǎng)溫度 23±1°C ,光照強度 2500Lx ,光照時間每天 16h 。 ④ 繼代培養(yǎng)條件為 MS+6.5g?L-1 瓊脂 +30g?L-1 蔗糖 Σ+0.1mg?L-1NAA+0.1mg?L-1 6-BA 培養(yǎng)基 pH 為 5.6~5.9 ,培養(yǎng)溫度 23±1°C ,光照強度2500Lx ,光照時間每天 16h 。在此條件下,根均長可達 4.47cm ,莖粗為 0.71~0.83mm ,株高達 8.29cm ,經(jīng)煉苗后可進行移栽。
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