豬流行性腹瀉(porcineepidemicdiarrhea,PED)是由豬流行性腹瀉病毒(porcineepidemicdiarrheavirus,PEDV引起的一種急性、高度接觸性腸道傳染病,發病豬以腹瀉、嘔吐、脫水為主要臨床特征,病理變化為剖檢可見小腸擴張,腸壁變薄,腸系膜淋巴結水腫,小腸絨毛變短等。PED冬季多發,各年齡的豬均易感,其中哺乳仔豬發病最重,發病率可達 100% ,7日齡以內仔豬感染PED,死亡率可達 50%~10% 。2010年以來,PED在我國的主要流行毒株從經典毒株轉變為變異毒株,變異毒株發病率高、病死率高、傳播性強、流行范圍廣,給我國養豬業造成巨大威脅。本文對PEDV基因組及結構蛋白進行概括,對近年來我國PED流行現狀、檢測方法及防控技術進行總結,以期為我國PED的防控及促進養豬業健康發展提供參考。
1基因組及結構蛋白
PEDV是一種直徑在 95~190nm 的單股正鏈RNA病毒,屬于冠狀病毒科。基因組由7個開放閱讀框(openreadingframes,ORFs)ORFla、ORF1b和ORF2-6組成,共編碼21種蛋白,長度約為28kb[1],見圖1。其中ORF1a和ORF1b編碼包括nspl-nspl6在內的16種非結構蛋白,ORF2和ORF4-6編碼外膜蛋白(S蛋白)、包膜蛋白(E蛋白)、膜蛋白(M蛋白)和核衣殼蛋白(N蛋白)的4種結構蛋白;ORF3編碼輔助蛋白ORF3[1]。這些蛋白在PEDV存活和逃避宿主免疫中起著至關重要的作用[2]。
S蛋白的S1結構域與受體結合影響PEDV的人侵和釋放,S2結構域參與病毒融合宿主細胞膜的過程。M蛋白、N蛋白在病毒顆粒的組裝和釋放中發揮作用,N蛋白同時還能夠通過下調IFN-β和干擾素刺激基因的表達從而參與PEDV逃避宿主天然免疫機制,ORF3輔助參與PEDV與宿主細胞的相互作用。E蛋白、非結構蛋白nsp1能夠抑制IFN的產生,非結構蛋白nsp1也會與多種IFN調控因子的其他成員相互作用,從而逃避宿主的先天免疫應答2,見圖1。
圖1PEDV基因組結構(A)和顆粒結構(B)示意圖注:圖片來自參考文獻[1]。

2 流行現狀
2010年以前PEDV主要呈散發性流行趨勢,2010年以后PEDV毒株發生變異,以G2型毒株為主的高致病性PEDV流行毒株開始在全球范圍內流行。程亞豪等3對2015—2021年我國東部地區PEDVS1基因的遺傳進化分析表明,目前東部地區PEDV流行株的主要基因型為G2-b亞型。齊海濤等4在2017—2020年期間,于我國華北地區對218個規模化養豬場進行采樣,對4030份腹瀉仔豬病料樣品進行檢測。結果表明,2017—2020年,樣品PEDV核酸陽性率分別為20.21% 、 15.28% 、 10.88% 、 18.80% ,PEDV流行毒株均為G2基因型。樊毛迪等[5采集了2022年江蘇省不同豬場的病豬腹瀉病料36份,結果表明,2022年江蘇PEDV流行毒株為G2-b亞群,且PEDV流行毒株S1蛋白區域存在氨基酸的突變、插入及缺失。
3 檢測方法
3.1PCR
PCR方法因其具有高特異性、高靈敏的特性,在動物病原檢測中被廣泛應用。隨著PCR檢測技術的發展,多重RT-PCR、實時熒光定量RT-PCR(RT-qPCR)、納米RT-PCR等也逐漸應用于實驗室檢測。其中RTqPCR為世界動物衛生組織推薦的病原體檢測方法。多重RT-PCR可同時進行多種病原微生物的鑒定。曹洪志等針對PEDVE基因,結合微芯片技術,建立了PEDV微芯片熒光定量RT-qPCR檢測方法。
3.2LAMP
新型等溫核酸擴增技術主要有環介導等溫擴增技術(LAMP)、重組酶聚合酶等溫擴增技術(RPA)滾環擴增技術(RCA)、鏈置換擴增技術(SDA)、解旋酶依賴性擴增技術(HDA)。LAMP和RPA因其操作簡便快速,在即時檢測中應用最多,尤其適用于現場或資源有限環境。與PCR等病原核酸檢測技術相比,LAMP具有操作簡單、快速靈敏、無需精密儀器、結果可視化等優點,適用于基層或現場病原的快速檢測。李林岳等根據PEDVORF1a/b基因的保守序列設計特異性引物,加入甲酚紅使結果可視化,初步建立了PEDV可視化RT-LAMP檢測方法,見表1。
表15種等溫核酸擴增技術的對比

3.3ELISA
ELISA方法是通過抗原抗體特異性識別特性建立的一種快速檢測方法,目前市面上已有多種商品化PEDVELISA試劑盒,主要包括間接ELISA、競爭ELISA、阻斷ELISA和雙抗體夾心ELISA。間接、競爭性和阻斷性ELISA可用于檢測血清、乳品等樣品中的PEDV免疫球蛋白G(IgG)或免疫球蛋白A(IgA)。雙抗體夾心ELISA可用于檢測感染后1~3d的糞便排泄物中的抗原。王婉瑩等以PEDV重組S蛋白作為包被抗原,辣根過氧化物酶標記的小鼠抗豬IgA單克隆抗體為檢測抗體,建立并優化了PEDVIgA抗體的ELISA檢測方法,既可以檢測血清中的IgA,也可以檢測分泌液中的SIgA。
3.4其他檢測方法
間接免疫熒光試驗(IFA)是先將PEDV抗原包被于玻片上,加入待檢血清,通過熒光顯微鏡觀察是否產生熒光并判斷出待檢血清中是否含有PEDV抗體。病毒中和試驗(VNT)則是把待檢血清與PEDV混合孵育后,接種到非洲綠猴腎(Vero)細胞中,通過觀察PEDV對Vero細胞的病變效應,來判定血清中中和抗體是否存在及效價。熒光免疫層析技術(LFIA)是以硝酸纖維素膜為載體,包被病毒抗原或抗體,待檢樣本借助毛細管作用在膜上移動,若樣本含病毒抗原或對應抗體時,就會與標記熒光物的抗體或抗原結合,在檢測線處形成熒光標記的免疫復合物,再通過熒光讀數儀檢測熒光信號以判定其結果。此外,CRISPR/Cas核酸檢測技術、基因芯片技術、熒光微珠免疫試驗(FMIA)、橫向流量測試(ICA)、均相光激化學發光免疫分析技術(AlphaLISA)等技術在PEDV檢測中都具有巨大的臨床應用潛力[1]。
4 防控技術
4.1疫苗免疫
疫苗接種是PED防控中最為有效的手段。當前我國市面上PEDV商品化疫苗種類豐富,涵蓋滅活疫苗、活疫苗、二聯活疫苗、三聯活疫苗、二聯滅活疫苗、三聯滅活疫苗、基因工程亞單位疫苗等。2018—2023年已獲臨床批件的PED商品疫苗主要包括豬傳染性胃腸炎(transmissiblegastroenteritisvirus,TGEV)、PEDV、豬德爾塔冠狀病毒(porcinedeltacortonavirus,PDCoV)三聯滅活疫苗,PEDV、豬輪狀病毒(porcinerotavirus,PoRV)二聯滅活疫苗,PDCoV、PEDV二聯滅活疫苗,TGEV、PEDV二聯活疫苗,PEDV滅活疫苗,PEDV基因工程亞單位疫苗。采用的毒株包括ZJ/15株、CHO-3G12株、J01株、HB17株、FJ-2013株、HuN16株、HX115株在內的PEDV流行變異毒株,這與當前豬場病毒性腹瀉流行情況相吻合。2024年在簽批發的PED商品疫苗主要圍繞豬傳染性胃腸炎、豬流行性腹瀉二聯疫苗進行研發,采用的毒株主要包括CV777株、ZJ-08株、LW/L株、SCSZ-1株、AJ1102-R株,其中CV777株、ZJ-08株為PEDV經典毒株,LW/L株、SCSZ-1株、AJ1102-R株為變異毒株]。
4.2中藥及植物提取物
研究發現,多種中藥成分及植物提取物如甘草、穿心蓮、單寧酸等對PEDV有顯著抑制作用,其作用機制主要是直接抑制病毒復制、吸附和進入,抑制病毒在復制過程中關鍵酶和蛋白的活性,調節宿主細胞抗病毒免疫應答和腸黏膜免疫,以及調控細胞信號通路或抑制細胞因子等。
4.3益生菌
腸道菌群(GM)的改變將影響PEDV的感染,如普氏桿菌、擬桿菌和副球菌等優勢細菌比例降低可能會導致仔豬更易感染PEDV,仔豬感染PEDV后體內有益細菌數量下降,而腸炎魏氏梭菌數量顯著增加[1]。益生菌不僅可以維持腸道菌群結構平衡,還對致病菌的生長和繁殖起到抑制作用,國內外學者已借助益生菌抗PEDV感染進行了多項研究。研究發現,1:16的乳酸菌上清液(LAB-CFS)可顯著下調PEDV活性;地衣芽孢桿菌及其地衣芽孢桿菌粗提物(BLFP)具有明顯的抗PED作用;腸膜明串珠菌通過上調Vero細胞干擾素刺激基因15kDa蛋白(ISG15)和黏液病毒抗性蛋白1(MX1)表達來預防PEDV[10]
4.4綜合防控措施
豬場需做好生物安全管理,以防止PED感染。加強人員生物安全意識,凡進出豬場辦公區、生活區,進入生產區、豬舍的人員都必須進行隔離和消毒;豬場運豬車輛需在專門的車輛洗消中心進行徹底的清潔、消毒以及烘干等處理;食材需經兩級消毒后再轉入豬場廚房;生產區物資和生活區物資經熏蒸消毒和靜置后才能轉入物料倉庫;飼料卸至飼料中轉倉前,外部料車需進行第一輪洗消,再由場外飼料中轉車將飼料轉入中轉料塔。其次,做好分娩舍日常管理,分娩舍白天溫度不得低于 24°C ,夜晚溫度不得低于20℃,濕度在 75% 以下為宜;飲水中添加電解多維、口服補液鹽等,以增強仔豬免疫力;密切關注豬的健康狀況,豬場一旦發生PED,需立即隔離病豬并進行全面消毒和緊急免疫,對死亡豬進行無害化處理。
結語
近年來PEDV在我國豬場較為活躍,流行毒株以G2型毒株為主,呈高陽性率和遺傳多樣性特點,這給PEDV感染的監測和防控構成了挑戰。隨著生物信息學分析和基因組測序的精度和速度不斷提高,基于新技術的PEDV檢測方法也逐漸朝著更加高效、靈敏和便捷的方向發展,使得對PEDV流行株變異情況的實時檢測成為可能。疫苗接種在防控PED過程中發揮了極其重要的作用,對中藥及植物提取物、益生菌制劑的研究也為PED的防控提供新路徑,未來可深人探索低聚木糖等中藥及植物提取物抑制PEDV的作用機制、提取工藝、療效與安全性,同時篩選抗PEDV的新型、有效且穩定的新型菌株。生產中更要從“人車物料”各方面做好生物安全防控措施。總之,PED的防控是一項系統性的工作,需要結合豬場的具體情況因場施策,才能有效防控和凈化PED。
參考文獻:
[1]張玉楊.豬流行性腹瀉病毒基因組和診斷方法研究進展[J].河南農業科學,2024,53(10):12-20.
[2]吳超,明文含,盧姝婉,等.豬流行性腹瀉病毒的天然免疫逃避機制及其防控研究進展[J].畜牧獸醫學報,2025,56(06):2590-2599.
[3]程亞豪,胡靈子,劉雅琦,等.2015年-2021年我國東部地區豬流行性腹瀉病毒S1蛋白關鍵表位的變異分析[J].中國預防獸醫學報,2023,45(09):968-972.
[4]齊海濤,王利,顏忠,等.2017-2020年華北地區豬流行性腹瀉病毒分子流行病學調查[J].黑龍江畜牧獸醫,2022(22):91-96.
[5]樊毛迪,李群,侯聞聞,等.2022年江蘇省4種豬腹瀉病毒分子流行病學調查[J].畜牧與獸醫,2024,56(08):44-58.
[6]曹洪志,王新杰,高姍姍,等.豬流行性腹瀉病毒微芯片熒光定量RT-qPCR檢測方法的建立[J].動物醫學進展,2024,45(09):45-48.
[7]李林岳,李任峰,袁嘉康,等.豬流行性腹瀉病毒可視化RT-LAMP檢測方法的建立與初步應用[J].中國預防獸醫學報,2023,45(08):814-821+828.
[8]王婉瑩,石正旺,羅俊聰,等.豬流行性腹瀉病毒IgA抗體ELISA檢測方法的建立和初步應用[J].中國獸醫科學,2024,54(10):1302-1308.
[9]鄔沛伶,李依璇,王浩杰,等.豬流行性腹瀉疫苗研究進展[J].畜牧獸醫學報,2025,56(03):1042-1058.
[10]張淑娟,牛錚,闞子斐,等.益生菌防治豬流行性腹瀉研究進展[J].中國獸醫雜志,2021,57(08):64-69.
收稿日期:2025-08-14
作者簡介:謝旖(1991—),女,漢族,湖南省益陽市,碩士,副教授。研究方向:獸醫內科學。*通訊作者:代佳娣(1991—),女,土家族,貴州省遵義市,碩士,講師。研究方向:獸醫內科學。