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高效液相色譜快速測定水果中的3種苯并咪唑類殺菌劑

2009-04-09 07:30:22李海飛徐國鋒聶繼云
現代農業科技 2009年1期
關鍵詞:測定

李海飛 李 靜 徐國鋒 聶繼云

摘要用高效液相色譜儀(HPLC)快速測定水果中苯并咪唑類農藥(多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈)殘留量,樣品經乙腈萃取后鹽析,提取液經PSA和ODS吸附劑加無水硫酸鎂凈化后,過0.45μm濾膜,直接用HPLC-PDA(二極管陣列檢測器)分離測定,外標法定量。采用乙腈/0.02moL/L磷酸緩沖鹽(pH值7.4)=28/72體系為流動相,多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈在蘋果、梨、葡萄、香蕉、芒果、桔子等6種水果中雜質干擾少,分離度較好,靈敏度高,測定結果準確可靠。最低檢出限分別為:多菌靈0.045 5mg/kg,噻菌靈0.042 1mg/kg,甲基硫菌靈0.068 6mg/kg。在添加0.2~1.0mg/kg濃度水平的回收率試驗中,多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈的平均添加回收率分別為82.0%~102.4%、87.6%~104.8%和79.6%~112.5%,RSD均在10%以下,滿足殘留分析的要求。

關鍵詞苯并咪唑類農藥;水果;高效液相色譜儀;殘留;測定

中圖分類號S66;S482.2文獻標識碼A文章編號 1007-5739(2009)01-0114-03

苯并咪唑類殺菌劑是一類高效、低毒和廣譜的內吸性殺菌劑,兼具預防和治療作用。該類殺菌劑常用于作物生長后期或采后的病害防治,在農產品中檢出率較高,蔬菜、水果中尤為突出[1,2]。殘留于果蔬中的苯并咪唑類殺菌劑對人體有一定的毒性。因此,檢測其在果蔬中殘留量,對保證人體健康有重要意義。多菌靈、噻菌靈是苯并咪唑類殺菌劑中的代表性農藥,尤其是多菌靈,是苯菌靈、氰菌靈、硫菌靈及醚菌靈等多種農藥的共同降解產物。實際上,在pH值接近中性時,果實上的苯菌靈在分析過程中幾乎完全轉化成多菌靈,而甲基硫菌靈僅有少量轉化成多菌靈,故分析苯并咪唑類殺菌劑殘留時,只需測定多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈即可[3]。近年來,關于苯并咪唑類殺菌劑在不同作物中的殘留測定已有報道[4-10],但樣品前處理均需經過液—液萃取或固相萃取富集、凈化,比較復雜。據統計,在農藥殘留分析中,有2/3的時間都花在提取和凈化等預處理上,因此研究快速、有效的樣品預處理方法在農藥殘留分析中具有重要的意義。筆者以蘋果、梨、柑橘、葡萄、香蕉、芒果等6種代表性水果為試材,以多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈等3種主要苯并咪唑類農藥為對象,探索建立一種操作步驟較為簡單、快速,結果準確、可靠,能滿足水果中多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈同時測定的分析方法。

1材料與方法

1.1儀器與試劑

高效液相色譜儀(日本島津公司)LC-10A,二極管陣列檢測器PDA,前處理儀器包括漩渦混勻器、離心機、pH計等;多菌靈、噻菌靈標樣為Sigma公司產品,甲基硫菌靈由農業部農產品質量中心提供,PSA和ODS吸附劑(Agela Technologies Inc,農殘級),無水硫酸鎂(天津科密歐科技有限公司,優級純),乙腈(美國TEDIA公司,HPLC級),磷酸二氫鉀和磷酸氫二鉀(天津市光復精細化工研究所,優級純),氯化鈉(北京益利精細化學品有限公司,分析純),實驗室用水為超純水,0.45μm濾膜(天津市津騰實驗設備有限公司)。

1.2色譜條件

流動相為乙腈/0.02moL/L磷酸鹽緩沖液(pH值7.4)=28/72,用前經0.45μm濾膜過濾,超聲脫氣。色譜柱為Shim-Pack:VP-ODS C18(150.0mm×4.6mm,5μm),流速為0.8 mL/min,柱溫35℃。進樣量為10μL。檢測波長:甲基硫菌靈為265nm,多菌靈為285nm,噻菌靈為300nm。外標法定量。

1.3試樣制備

取不少于1 000g水果樣品,將可食部分切碎,充分混勻放入食物加工機粉碎,制成待測樣,裝入容器中備用。

1.4提取

準確稱取10.0g試樣于50mL離心管中,加入10.0mL乙腈,旋渦混勻2min,加3~5g氯化鈉到離心管中,旋渦混勻1min,5 500rpm離心3min。

1.5凈化

從離心管中準確吸取2.0mL乙腈溶液到盛有50mg PSA、50mg ODS、100mg無水MgSO4的10mL離心管中,在旋渦混合器上混勻后,上清液用0.45μm濾膜過濾,待測。

2結果與分析

2.1檢測波長的確立

經二極管陣列檢測器波長掃描,多菌靈在225nm和285nm處有較大吸收峰,甲基硫菌靈在210nm和265nm處有較大吸收峰,噻菌靈在200nm和300nm處有較大吸收峰。但多菌靈在285nm、甲基硫菌靈在265nm、噻菌靈在300nm處雜質峰少,基線穩定,因此選擇其為檢測波長。

2.2流動相的選擇

流動相的組成對樣品中組分的分離有一定的影響。采用傳統的甲醇/水作為流動相體系時,蘋果、梨、香蕉、芒果等樣品中多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈與雜質峰基本可分開,但對于柑橘樣品,無論采用何種比例的甲醇/水為流動相,多菌靈和噻菌靈峰均被雜質峰掩蓋。采用乙腈/0.02moL/L磷酸緩沖鹽(pH值7.4)= 28/72作為流動相體系,6種水果中多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈與雜質峰的分離效果較好,均無雜質峰干擾,且峰形較好。流動相pH值影響被分析物的分離效果。考慮到多菌靈在酸性條件下會形成鹽,故采用堿性的二乙胺調節流動相的pH值。分別調節流動相pH值為6.0、6.4、6.8、7.0、7.2、7.4,結果表明,pH值在7.0以下時,多菌靈響應值偏低,噻菌靈和甲基硫菌靈峰形較寬且有明顯的拖尾現象;pH值在7.2~7.4時,多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈的靈敏度高,峰形尖銳且對稱性好。

2.3色譜分離

在所確定的試驗條件下,多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈三者分離良好,保留時間分別為5.710min、7.255min和17.255min。即使基質較為復雜的柑橘樣品,也獲得了良好的分離效果。標準樣品色譜圖和柑橘添加標樣色譜圖見圖1。

2.4提取與凈化

考慮到綜合提取效率、選擇性、與樣品混合性以及溶劑化作用和滲透能力等因素,本方法采用乙腈作為苯并咪唑類農藥殘留量的提取劑,提取速度快,易于操作。對于蔬菜和水果類的農殘分析,PSA吸附劑具有弱的陰離子交換能力,有利于吸附樣品基質中的有機酸、糖及色素,并且對各種性能差異較大的農藥具有較高的回收率。為更好地去除對色譜柱性能有影響的雜質,本方法采用前處理中在PSA加入一定量ODS和硫酸鎂的凈化方法,在去除水分、色素、蛋白質、脂肪、臘質等干擾物的同時又對色譜柱起到一定保護作用。

2.5線性關系與檢測限

以0.1mg/L、0.5mg/L、1.0mg/L、2.0mg/L等4個標準系列繪制標準曲線,以濃度Y對峰面積X進行回歸。結果表明,在0.1~2.0mg/L濃度范圍內,苯并咪唑類農藥的濃度與峰面積具有良好的線性關系,其回歸方程和相關系數分別為:多菌靈Y=2.0×10-5X+0.013 2,r=0.999 3;噻菌靈Y=1.0×10-5X+0.009 4,r=0.999 9;甲基硫菌靈Y= 3.0×10-5X+0.009 3,r=0.999 0。最低檢出限是以儀器基線噪聲3倍所對應的質量濃度值計[13],在所確定的試驗條件下,多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈的最低檢出限分別為0.045 5mg/kg、0.042 1mg/kg和0.068 6 mg/kg。

2.6添加回收率試驗

水果種類繁多,不同水果其水分、糖、酸、色素等物質有較大的差異,本試驗選擇蘋果、梨、葡萄、香蕉、芒果、柑橘等6種代表性水果為試材,進行3個水平(0.2mg/kg、0.5mg/kg、1.0mg/kg)的添加回收試驗,每個水平各設3次重復,結果見表1。多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈在6種水果中的平均添加回收率分別為82.0%~102.4%、87.6%~104.8%和79.6%~112.5%,RSD均在10%以下。方法的準確度和精密度均符合殘留分析的要求[13]。

3結論與討論

本方法采用乙腈為提取劑,PSA吸附劑和ODS吸附劑與無水硫酸鎂組合的提取、凈化方法,不僅可除去提取液中水分、色素、蛋白質、脂肪、臘質等干擾物,而且有助于去除對色譜柱性能有影響的雜質,延長色譜柱使用壽命。提取液凈化后不需濃縮處理,過濾膜后直接進樣檢測,操作簡便、快速,大大簡化了樣品前處理步驟,節約了時間。以乙腈/0.02moL/L磷酸鹽(pH值7.4)=28/72體系作為流動相,多菌靈、噻菌靈和甲基硫菌靈在6種代表性水果中均有較好的峰形和分離度,雜質干擾少,平均回收率在79.6%~112.5%,RSD均在10%以下,最低檢出限為0.042 1~0.068 6mg/kg。本方法操作簡便、快速,對水果中多菌靈、噻菌靈、甲基硫菌靈等3種苯并咪唑類農藥殘留量能同時進行測定,結果準確可靠,靈敏度高,方法的準確度和精密度均符合殘留分析的要求。

4參考文獻

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