從WPC中分離β-lactoglobulin的方法

段翠翠，霍貴成，任大喜，馮芳菲

（東北農業大學 乳品科學教育部重點實驗室，哈爾濱 150030）

從WPC中分離β-lactoglobulin的方法

段翠翠，霍貴成，任大喜，馮芳菲

（東北農業大學 乳品科學教育部重點實驗室，哈爾濱 150030）

β-Lactoglobulin是乳清中的主要蛋白，已經有很多方法應用于分離提取β-Lg，但是這些方法或技術大多數比較貴或有時候比較復雜，不能夠達到足夠的產量或純度。介紹一種簡便易行，重復性強，低成本的方法從濃縮乳清蛋白（WPC）中分離β-Lg，并且利用BCA法測定蛋白的質量濃度表明提取β-Lg的質量濃度很高，而SDS-PAGE表明提取的β-Lg有較高的純度。

蛋白純化；β-lactoglobulin；BCA；SDS-PAGE

0 引 言

乳清蛋白中的主要蛋白β-Lg是特征最明顯的牛乳蛋白之一。其在乳清中的質量濃度約為3.2～3.4 g/L。人們基于不同的目的來分離β-Lg，因為其具有優良的營養價值和功能性質。如果能控制分離成本，天然β-Lg有望成為非常實用的食品添加劑[1]。

已經有很多技術被用于分離和/或提純牛乳中的各種蛋白，例如，鹽析[2，3]，在質量分數為3%的三氯乙酸（TCA）條件下選擇性提取β-Lg[4]，陽離子交換色譜[5-6]，高效液相色譜（HPLC）[7，8]，快速蛋白液相色譜（FPLC）以及其他的色譜技術[9,10]和等電點聚焦[11]。但是這些方法大多數比較貴或比較復雜。此研究的目的是開發一種簡便，易行，低成本的方式從WPC（濃縮乳清蛋白，80%）中分離β-Lg（分子量為18.3 ku）。本研究是參考文獻[12]中的方法，然后進行了改進。

1 實 驗

1.1 蛋白分離純化系統

AKTA，美國UVP凝膠成像系統（UPLAND），CA91786 USA，酶標儀（型號680），SDS，蛋白質標樣，Bio-RAd電泳儀（型號PowerPac Basic），進口濃縮乳清蛋白粉（WPC，質量分數80%），BCA蛋白濃度測定試劑盒（增強型），碧云天；96孔細胞培養板，PBS溶液，標樣為抑肽酶，鏈霉素，β-乳球蛋白標準品，α-乳白蛋白標準品，低分子量蛋白標準品。

1.2 電泳所用試劑

質量分數為30%丙烯酰胺（Acr），質量分數為10%SDS（十二烷基磺酸鈉），濃度為1.5 mol/L的Trisbase緩沖液，pH值為8.8濃度為0.5 mol/L的Tris–base緩沖液，pH值為6.8質量分數為10%過硫酸銨，TEMED（四甲基乙二胺）。樣品緩沖液：去離子水15 mL，濃度為0.5 mol/L的Tris-HCl，pH值為6.8，25 mL，50%的甘油，20 mL，質量濃度為100 g/L的SDS 40 mL；質量濃度為1 g/L的溴酚藍、電泳緩沖液為3.03g的Tris，14.41 g甘氨酸，1 g的SDS，加水溶解至1L；染色液為0.5 g考馬斯亮藍G-250，250 ml甲醇，34 ml的冰醋酸，加水至500 mL；脫色液為75 mL冰醋酸，50 mL的甲醇，加水至1L；封存液：異丁醇；配置溶液用的水都為去離子水。

2 方 法

2.1 β-Lg的分離提取

2.1.1 酪蛋白和乳清蛋白的分離

首先用濃度為1 mol/L的HCl調節一定質量分數（10%）的WPC溶液，使其達到酪蛋白的等電點，pH值為4.6，在此pH值條件下酪蛋白和乳清蛋白分離[13]，然后以5 000 r/min轉離心20 min，收集上清液，其主要是乳清蛋白。這一步主要是去除WPC中混有的酪蛋白組分，為使去除效果較好，將上清液再離心，取上清，重復操作3次。

2.1.2 α-La和β-Lg的分離

將第一步獲得的上清液用濃度為1 mol/L的NaOH調節pH值至7.5，根據Mailliart&Ribadeau-Dumas[14]，用質量分數為7%的NaCl濃度為6 mol/L的HCl調節pH值至2，使β-Lg，α-La和BSA分離。 用轉速為8 000 r/min離心20 min后，在上清液中回收β-Lg，沉淀中包含濃縮的組分α-La和BSA。用質量分數為6%的NaU（pH值為2）的溶液沖洗沉淀去除沉淀中的大多數β-Lg，然后再離心，重復操作3次。隨著在上清液中不斷增加NaU的質量分數，β-Lg被鹽析出來。在pH值為2，NaCl質量分數為30%的時候，出現β-Lg沉淀，然后用8 000 r/min轉速離心20 min，將上清液倒掉，沉淀中主要是β-Lg。調節pH值為7將兩種沉淀物溶解在最少量的水中，透析，然后凍干。

2.2 蛋白分離純化進一步提純

將凍干后的樣品溶解在少量水中，進行蛋白分離純化，分離純化所使用的柱子是Superdex_75_10/300_GL，將樣品峰和標樣峰做對比，選擇樣品峰中和標樣峰中的β-Lg出峰時間或者出峰體積一致的峰，收集此峰，即是純化后的β-Lg。將收集好的β-Lg凍干濃縮體積。

2.3 脫鹽

經過上述分離純化，然后凍干后的β-Lg中，因為洗脫液是濃度為0.05 mol/L的乙酸鈉和濃度為0.1 mol/L的氯化鈉，其中含有大量的鹽類，所以對其脫鹽這一步驟是必不可少的，根據洗脫順序，首先流出來的是β-Lg，然后是電導峰，收集電導峰出來之前的β-Lg。將收集后的β-Lg再凍干。得到的即是比較純的β-Lg。

2.4 BCA法測定蛋白質量濃度

將分離純化后的樣品使用BCA蛋白質量濃度測定試劑盒（增強型）測定所得β-Lg的質量濃度。將20 μL質量濃度為1 g/L的粗β-Lg加入96孔板中，設3個重復孔，然后每孔加入200 μL工作試劑，于60℃溫育30 min，于酶標儀570nm波長處讀取吸光值。用試劑盒中的BCA蛋白標準溶液作標準工作曲線，BCA法標準工作曲線的具體操作是：將標準蛋白配制成質量濃度為0.5 g/L的溶液，然后按體積為0，1，2，4，8，12，16，20 μL加到96孔板的標準品孔中，加標準品稀釋液補足到20μL，質量濃度分別為0，0.025，0.5，0.1，0.2，0.3，0.4，0.5 g/L的系列標準工作溶液，按BCA試劑盒說明書測定，根據統計測定結果得到線性回歸方程為y=0.7821x+0.0838，相關系數R2=0.9957（見圖1）。

圖1 BCA標準曲線

2.5 SDS-PAGE分析蛋白的純度

（1）制備分離膠和濃縮膠：分離膠的質量分數為12%。

（2）樣品制備：將樣品配置成一定質量濃度的溶液（2 g/L），然后和樣品緩沖液按1︰1混合，按體積分數為10%的比例加入巰基乙醇，將樣品煮沸3 min，備用。

（3）電泳：將樣品加入制好的膠內，上樣量為10μL，分子量范圍為14.4～97.4 ku。80 V恒壓，當電泳條帶跑出濃縮膠和分離膠分界面后110 V恒壓。

（4）染色、脫色。將跑好的膠放入制好的染色液中，染色2 h，倒掉染色液，用PBS沖洗兩次，然后加入脫色液，每隔2 h更換1次脫色液，直至條帶清晰，約需12 h。

3 結果與討論

3.1 根據蛋白分離純化峰收集β-Lg

圖2為β-Lg的樣品峰；圖3為標樣峰。由圖2和圖3可以看出，對應標樣峰中的出峰體積，可以確定此峰為β-Lg的峰，而且此峰周圍幾乎沒有雜峰，便于收集。收集此峰，然后將收集的樣品進行冷凍干燥，這一步是為了濃縮，然后進行脫鹽。

3.2 脫鹽

圖4為β-Lg的脫鹽峰。圖4中，左峰是對應的β-Lg的峰，右邊的電導峰對應的是鹽類。由圖4可以看出，所使用的脫鹽柱子可以將β-Lg和鹽完全分開，并且經過第一步以后β-Lg沒有雜峰，是非常純的。將脫鹽后的樣品再冷凍干燥，所得樣品即為β-Lg的分離物。

圖4 脫鹽峰

3.3 BCA試劑盒測定的結果

將所測得的β-Lg平均讀數0.642帶入標準曲線的方程中，計算β-Lg的質量濃度為0.7137 g/L，根據β-Lg原樣品質量濃度為1 g/L，可知其質量分數為71.37%。

3.4 SDS-PAGE分析蛋白純度結果分析

圖5為SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳結果。

圖5 SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳圖

圖5中，左邊為標準蛋白（marker），從上到下分別為兔磷酸化酶B（97.4 ku），牛血清白蛋白（66.2 ku），兔肌動蛋白（43.0 ku），牛碳酸酐酶（31.0 ku），胰蛋白酶抑制劑（20.1 ku），雞蛋清溶菌酶（14.4 ku）；右邊為β-Lg。

由圖5可以看出，此方法所提取的β-Lg是非常純的，沒有雜峰，由此也知道上面BCA方法測定的蛋白中，質量分數為71.37%，剩余的物質基本是分離純化后的鹽類，雜蛋白很少，可以忽略。

4 結 論

本研究介紹了一種簡單的方法從WPC中提取β-Lg，并用蛋白分離純化將粗提的β-Lg進一步提純，然后脫鹽凍干，得到的即是比較純的β-Lg。然后是利用BCA法測定蛋白質量濃度，又利用SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳來檢測β-Lg的純度。

傳統的方法是[15]：將鮮牛乳離心去除脂肪，下層即為脫脂乳；然后凝乳，等電點沉淀法去除酪蛋白；最后是鹽析，用硫酸按鹽析法按飽和度將乳清蛋白沉淀下來，再將鹽析后的乳清蛋白透析，然后再除鹽。此方法的缺點是操作比較粗，提取出來的β-Lg純度不夠，雜蛋白質量濃度高，而且大家用凱式定氮法測量蛋白質量濃度，由于其使用了硫酸銨，所測得的含氮量會偏高。

本文根據分離純化標樣中對應分子量的峰確定粗提的β-Lg中所要收集的峰，這一步可以使粗提的β-Lg進一步純化，脫鹽過程又使得純化β-Lg中的鹽類降到最低，這兩個步驟使得最終的β-Lg純度達到最高。

利用BCA法測定上述步驟中得到的β-Lg中的蛋白質量濃度，根據標準曲線計算其結果為713.7g/L，此值說明蛋白質量濃度較高，此方法是一種純度非常高的β-Lg分離方法。

從SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳的結果可以看出，經過分離純化后的β-Lg的電泳條帶只有18.3 ku處的一條帶，沒有其他的雜帶，說明β-Lg純度非常高。

綜合本研究的實驗結果可以看出，本實驗使用的提取方法，能夠提取出純度非常高的β-Lg，而且操作簡單，所需的儀器藥品都是常規使用的，價格都不高，所以成本比較低，適合一般實驗室進行中小規模的分離提取。

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Separation β-lactoglobulin from WPC

DUAN Cui-cui,HUO Gui-cheng,REN Da-xi,FENG Fang-fei
（Key Lab of Dairy Science,Education Ministry，Food College，Northeast Agricultural University，Harbin 150030，China）

β-Lactoglobulin（β-Lg）is the major protein in whey,several methods for isolating β-Lg have been described.However,none of the existing processes or techniques has been effectively implemented to achieve inadequate yield/purification.The aim of this study was to introduce a simple,reproducible,and less expensive method to isolate β-Lactoglobulin from whey protein concentrate.Moreover,the use of BCA protein concentration determination shows that the concentration of extracted β-Lg is very high,while the SDS-PAGE（sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis）result shows that the extracted β-lg has a high purity.

protein purification；β-Lactoglobulin；SDS-PAGE

TS252～59

A

1001-2230（2010）01-0019-04

2009-05-17

東北農業大學生物乳業創新團隊資助項目（CXT 007-2）。

段翠翠（1984-），女，碩士，從事食品科學方面的研究。

霍貴成