吳 靜,鄭 浩,江 瑛,蘇 文,侯金佟,張 華
(1.首都醫(yī)科大學(xué)宣武醫(yī)院超聲診斷科,北京 100053;2.首都醫(yī)科大學(xué)病理生理學(xué)教研室,北京 100069)
非酒精性脂肪性肝炎(nonalcoholic steatohepatitis,NASH)是病理組織學(xué)改變與酒精性脂肪性肝炎相似,但無(wú)過量飲酒史的一種慢性疾病[1]。NASH作為隱源性肝硬化的重要病因,日益引起臨床的重視[2、3]。但NASH的發(fā)病機(jī)制至今并不完全清楚,NASH嚴(yán)重的肝細(xì)胞脂變和氣球樣變常成為局部缺血和缺氧的原因,而局部缺血和缺氧又進(jìn)一步加重NASH肝細(xì)胞損傷,表明肝臟血流動(dòng)力學(xué)的異??赡艹蔀镹ASH病變進(jìn)展的重要因素之一。血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是目前已知作用最強(qiáng)的血管生成正性調(diào)節(jié)因子,具有促進(jìn)內(nèi)皮細(xì)胞增殖,增強(qiáng)多種血管生成因子的促血管生成效應(yīng),抑制內(nèi)皮細(xì)胞凋亡,促使血管通透性增加的作用,局部缺血和缺氧是調(diào)節(jié)VEGF表達(dá)的主要因素之一[4,5]。因此VEGF可能與NASH的發(fā)病有關(guān)。本實(shí)驗(yàn)利用高脂飲食復(fù)制大鼠非酒精性脂肪肝損傷模型,通過高分辨率小動(dòng)物顯微超聲成像系統(tǒng)檢測(cè)門脈系統(tǒng)靜脈內(nèi)徑等血流動(dòng)力學(xué)指標(biāo),通過分子生物學(xué)方法檢測(cè)肝臟VEGF mRNA和蛋白表達(dá)水平,旨在探討NASH大鼠肝臟血流動(dòng)力學(xué)的變化和VEGF在NASH的表達(dá)及其作用,為今后防治NASH提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 動(dòng)物模型建立及分組
清潔級(jí)SD雄性大鼠110~130g 20只,由首都醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物中心提供,動(dòng)物合格證號(hào)SCXK-(軍)2007-004。隨機(jī)分為對(duì)照組(10只,普通飼料喂養(yǎng))和模型組(10只,高脂飼料即普通飼料基礎(chǔ)上加10%豬油和2%膽固醇喂養(yǎng)),飼養(yǎng)于清潔級(jí)環(huán)境內(nèi)16周。
1.2 超聲檢查
采用Visual Sonics Vevo 770型超高頻小動(dòng)物彩色多普勒超聲診斷儀,探頭頻率20~40MHz,測(cè)量肝臟大小、回聲強(qiáng)度、后方回聲衰減、肝緣圓鈍及肝內(nèi)血管顯示程度進(jìn)行評(píng)分(1為正常,2為輕度改變,3為明顯改變),取均值;測(cè)量門靜脈、脾靜脈和肝靜脈內(nèi)徑及最大血流速度(V),選用門靜脈長(zhǎng)軸切面,取最大值作為門靜脈內(nèi)徑(D);計(jì)算門靜脈血流量應(yīng)用公式:
Q(ml/min)=π×(D/2)2×V×60。
1.3 血生化指標(biāo)檢測(cè)
腹主動(dòng)脈采血(隔夜禁食),肝素抗凝,常規(guī)制備血清。應(yīng)用Olympus AU640全自動(dòng)生化分析儀檢測(cè)血清丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)、總膽固醇(TC)。
1.4 組織病理學(xué)檢查
取肝臟組織行冷凍切片和石蠟切片,分別進(jìn)行HE染色,油紅O染色和Masson染色,觀察肝臟脂肪變性、氣球樣變和纖維化等病理變化。
1.5 免疫組織化學(xué)染色
免疫組織化學(xué)SP法染色,按說明書(PV-6002二步法免疫組化檢測(cè)試劑盒,北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司)規(guī)范進(jìn)行。切片脫蠟至水化,置3%過氧化氫,室溫30min,微波修復(fù)抗原。滴加5%BSA封閉液,37℃,30min;滴加VEGF單克隆抗體(sc-7269,Santa Cruz公司)1∶100稀釋液,4℃過夜;滴加辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗(兔抗鼠IgG),37℃,10min;DAB避光顯色,鏡下控制顯色時(shí)間;蘇木精輕度復(fù)染。以PBS代替第一抗體作為陰性對(duì)照。
1.6 蛋白印記
稱取100mg肝組織,加入裂解液勻漿,4℃,以12 000g,離心15min,取上清蛋白定量。取100μg蛋白上樣進(jìn)行SDS/PAGE電泳,經(jīng)硝酸纖維素膜電轉(zhuǎn)移,以5%脫脂奶粉封閉,然后加入一抗(VEGF1∶600或GAPDH1∶5 000)4℃過夜。以辣根過氧化物酶標(biāo)記的二抗(1∶2 000)室溫孵育,利用化學(xué)發(fā)光法顯色,結(jié)果曝光于膠片上。應(yīng)用ImageJ軟件進(jìn)行吸光度分析,以VEGF和GAPDH的比值表示各組蛋白表達(dá)水平。
1.7 實(shí)時(shí)定量RT-PCR
用Trizol提取肝臟組織總RNA,按Promega公司RT-PCR試劑盒說明書逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。利用實(shí)時(shí)定量PCR儀(美國(guó),ABI公司7300 System),按SYBR Green PCR Master Mix(美國(guó)ABI公司)試劑盒說明書,將大鼠肝臟cDNA同時(shí)行VEGF和18sRNA基因定量PCR。VEGF引物:正義鏈:5′-CGTCTACCAGCGCAGCTATTG-3′,反義鏈:5′-GCACACAGGACGGCTTGAA-3′,18 sRNA正義鏈:5′-GTAACCCGTTGAACCCCATT-3′,反義鏈:5′-CCATCCAATCGGTAGTAGCG-3′。反應(yīng)擴(kuò)增條件為0℃ 2min,95℃ 10min;95℃ 15s,60℃ 1min,共40個(gè)循環(huán)。將檢測(cè)的臨界點(diǎn)設(shè)定在PCR擴(kuò)增過程中熒光信號(hào)由本底進(jìn)入指數(shù)增長(zhǎng)階段的拐點(diǎn)所對(duì)應(yīng)的循環(huán)數(shù)(Ct)作為模板初始濃度的間接指標(biāo),結(jié)果用18sRNA進(jìn)行校正。Ct值越大,基因表達(dá)量就越小。用2—ΔΔCt法計(jì)算相對(duì)基因表達(dá)量。將所擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物同時(shí)進(jìn)行溶解曲線分析和電泳以保證擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性。
1.8 數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)分析
2.1 病理改變
肉眼觀察對(duì)照組肝臟色澤紅潤(rùn),邊緣銳利;模型組肝臟體積增大,邊緣變鈍,呈灰黃色,表面可見黃白色不規(guī)則斑塊沉積。光鏡下觀察對(duì)照組肝小葉結(jié)構(gòu)清晰;模型組肝細(xì)胞排列紊亂,呈大小泡混合性脂肪變性,伴肝細(xì)胞氣球樣變性、并可見大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、碎片狀壞死和少量纖維組織增生(圖1,見彩插3)。
2.2 超聲表現(xiàn)
正常對(duì)照組圖像為肝實(shí)質(zhì)回聲均勻,肝內(nèi)管系組織顯示清晰;模型組肝臟增大,肝緣圓鈍,實(shí)質(zhì)回聲細(xì)密增強(qiáng),后方組織明顯衰減,肝內(nèi)管系組織顯示不清。超聲評(píng)分與病理評(píng)分結(jié)果一致[6]。門靜脈內(nèi)徑增大,肝靜脈內(nèi)徑減小,差異具有顯著性(P<0.05)(圖2)。門靜脈流速和肝靜脈流速均下降,但無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.3 血生化指標(biāo)
與對(duì)照組比較,模型組周大鼠ALT、AST增高、TC、TG增高,差異具有顯著性(P<0.05)(表1)。

圖2 大鼠肝臟超高頻超聲圖像及血流動(dòng)力學(xué)變化Fig.2 The high frequency ultrosound images of the liver and hemodynamic changes in the rats
表1 各組大鼠血生化指標(biāo)Tab.1 The serum biochemical parameters in the rats(±s)

表1 各組大鼠血生化指標(biāo)Tab.1 The serum biochemical parameters in the rats(±s)
與對(duì)照組比較,*P<0.05;*P<0.05,compared with the control group.
組別Groups血清丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶ALT(U/L)天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶AST(U/L)總膽固醇TC(mmol/l)對(duì)照組Control 43.55±8.96 126.83±27.47 1.57±0.34模型組Model 194.21±83.91* 362.57±117.13*3.17±2.17*
2.4 VEGF的表達(dá)
免疫組織化學(xué)染色結(jié)果表明,對(duì)照組大鼠肝組織VEGF蛋白表達(dá)量極低,僅在中央靜脈周圍個(gè)別肝細(xì)胞和竇內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)VEGF。模型組肝組織VEGF蛋白表達(dá)明顯增加,呈彌漫分布,陽(yáng)性細(xì)胞主要為肝細(xì)胞和竇內(nèi)皮細(xì)胞,輕度脂變的細(xì)胞比氣球樣變的細(xì)胞VEGF蛋白表達(dá)更為明顯。而增生的炎性細(xì)胞和星形細(xì)胞則低表達(dá)甚至不表達(dá)VEGF蛋白。VEGF蛋白的Western blotting結(jié)果表明:對(duì)照組和模型組均有VEGF蛋白的表達(dá),與對(duì)照組相比,模型組大鼠肝組織VEGF的表達(dá)增強(qiáng),差異具有顯著性(P<0.05)(圖3,圖3A、3B見彩插3)。

圖3 各組大鼠肝臟VEGF蛋白的表達(dá)Fig.3 Expression of hepatic VEGF protein of each rat group
實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果表明,NASH大鼠肝臟VEGF mRNA表達(dá)水平明顯增加。實(shí)時(shí)熒光定量RT-PCR反應(yīng)曲線和溶解曲線結(jié)果表明,質(zhì)控良好,擴(kuò)增物為單一產(chǎn)物。模型組大鼠VEGF mRNA的水平大約是是對(duì)照組的3倍,差異具有顯著性(P<0.05)(圖4)。

圖4 各組大鼠肝臟VEGF mRNA水平Fig.4 The levels of hepatic VEGF mRNA in the rat groups
本實(shí)驗(yàn)利用高脂復(fù)制大鼠NASH模型,與臨床高脂飲食所致的NASH有相似的外因。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:此時(shí)不僅出現(xiàn)高膽固醇血癥,血清ALT及AST也顯著增高。病理檢查表現(xiàn)為肝細(xì)胞氣球樣變性和重度脂肪變性、伴炎性細(xì)胞浸潤(rùn)和肝細(xì)胞碎片狀壞死及纖維組織增生。表明病程已進(jìn)展為非酒精性脂肪性肝炎(NASH)。
血液流變異常和血流動(dòng)力學(xué)的變化是脂肪肝病變發(fā)展的重要病因之一。研究證實(shí)肥胖、肝臟脂肪浸潤(rùn)可導(dǎo)致肝靜脈血流頻譜發(fā)生變化[7]。我們的研究結(jié)果也表明超高頻多普勒超聲可以較敏感地檢測(cè)非酒精性脂肪性肝病大鼠不同時(shí)期門脈系統(tǒng)血流動(dòng)力學(xué)變化[8]。本實(shí)驗(yàn)超聲檢查結(jié)果:表現(xiàn)為不僅肝臟增大,肝臟回聲前方彌漫增強(qiáng),后方組織嚴(yán)重衰減至顯示不清,與脂肪肝的病理結(jié)果相一致,而且門靜脈內(nèi)徑增大,肝靜脈內(nèi)徑減小,靜脈流速減低,表明NASH大鼠伴有肝臟血流動(dòng)力學(xué)異常。此時(shí)一方面因脂代謝的異常導(dǎo)致血液黏度增加,影響肝臟的血流供應(yīng),引起肝組織缺血、缺氧和局部酸血癥,導(dǎo)致肝實(shí)質(zhì)內(nèi)糖元減少,脂肪堆積[7]。另一方面NASH發(fā)生時(shí),由于肝細(xì)胞脂變和氣球樣變引起的肝實(shí)質(zhì)順應(yīng)性下降,而且隨著肝細(xì)胞腫脹增大,壓迫肝竇及肝內(nèi)血管,血流阻力加大,影響肝臟充盈和血液循環(huán),肝靜脈順應(yīng)性的降低導(dǎo)致肝靜脈狹窄,流速降低。遠(yuǎn)端阻力的加大,使門靜脈血流速度減低,管徑增寬。肝竇與肝細(xì)胞間的交換障礙最終導(dǎo)致肝臟功能損害。
VEGF在肝源性疾病的研究表明[9-12],在肝功能完全代償或部分代償時(shí)VEGF的表達(dá)增強(qiáng),而肝功能失代償時(shí)表達(dá)明顯下降。急性肝炎,肝硬化和肝癌患者血清VEGF水平明顯升高;在四氯化碳誘導(dǎo)的肝損傷大鼠和肝大部切除后的ob/ob小鼠肝臟VEGF水平明顯增加,VEGF通過與受體結(jié)合刺激肝竇內(nèi)皮細(xì)胞增殖和星狀細(xì)胞活化,促進(jìn)肝細(xì)胞再生及腫瘤的發(fā)生發(fā)展。但VEGF在非酒精性脂肪性肝炎的表達(dá)水平及其作用并不清楚。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,模型組肝組織VEGF蛋白表達(dá)明顯增加,呈彌漫分布,陽(yáng)性細(xì)胞主要是肝細(xì)胞,腺泡Ⅲ區(qū)的肝細(xì)胞和外周未完全空化的肝細(xì)胞VEGF蛋白表達(dá)更為明顯。這可能與VEGF系缺氧誘導(dǎo)因子,而此區(qū)營(yíng)養(yǎng)狀態(tài)較門管區(qū)差,缺氧更為明顯,細(xì)胞處于應(yīng)激狀態(tài)有關(guān)。而實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果表明,NASH大鼠肝臟VEGF轉(zhuǎn)錄水平增加。此時(shí)肝細(xì)胞VEGF表達(dá)增加,可能是一種適應(yīng)反應(yīng),通過誘導(dǎo)VEGF mRNA和蛋白質(zhì)的表達(dá),促使肝竇內(nèi)皮細(xì)胞分裂、增加肝竇形成、誘導(dǎo)新生血管的形成,以改善肝細(xì)胞的供血供氧,最大限度地維持肝細(xì)胞功能,以迅速適應(yīng)脂質(zhì)底物的供給增加,減少血運(yùn)障礙,降低細(xì)胞缺血缺氧程度,促使肝細(xì)胞再生,阻止病變進(jìn)展,利于創(chuàng)傷修復(fù)。但由于VEGF誘導(dǎo)的新生血管的不成熟和其滲透作用,因此可能并不能完全糾正缺氧。而VEGF活性增加的同時(shí)也可致炎性滲出增多,星形細(xì)胞激活,可能增加纖維化的風(fēng)險(xiǎn)。因此對(duì)于VEGF在NASH發(fā)病機(jī)制中的作用尚需進(jìn)一步研究,而這些更深入的研究將有助于今后更好的防治NASH。
[1]Jansen P L.Nonalcoholic steatohepatitis[J].Neth J Med,2004,62(7):217-224.
[2]Adams LA,Lymp JF,St Sauver J,et al.The natural history of nonalcoholic fatty liver disease:a population-based cohort study[J].Gastroenterology 2005,129:113-121.
[3]Caldwell SH,Crespo DM.The spectrum expanded:cryptogenic cirrhosis and the natural history of non-alcoholic fatty liver disease[J].J Hepatol,2004,40(4):578-584.
[4]Senger DR,Galli SJ,Dvorak AM,et al.Tumor cells secrete a vascular permeability factor that promotes accumulation of ascites fluid[J].Science 1983,219:983-985.
[5]Ho QT,Kuo CJ.Vascular endothelial growth factor:biology and therapeutic applications[J].Int J Biochem Cell Biol.2007,39(7-8):1349-1357
[6]吳靜,鄭浩,江瑛,等.大鼠非酒精性脂肪性肝病超聲與病理變化的相關(guān)性研究[J].中國(guó)超聲醫(yī)學(xué)雜志,2008,24(8):688-691.
[7]丁聲珍,張楚武.脂肪肝的聲像圖表現(xiàn)及其與糖及脂肪代謝的關(guān)系[J].中國(guó)超聲醫(yī)學(xué)雜志,1992,8(1):60-61.
[8]鄭浩,江瑛,余豪,等.非酒精性脂肪性肝病門脈系統(tǒng)血流動(dòng)力學(xué)變化的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國(guó)醫(yī)學(xué)影像技術(shù),2008,24(6):855-857.
[9]Akiyoshi F,Sata M,Suzuki H,et al.Serum vascular endothelial growth factor levels in various liver diseases[J].Dig Dis Sci,1998,43:41-45.
[10]Rosmorduc O,Wendum D,Corpechot C,et al.Hepatocellular hypoxia-induced vascular endothelial growth factor expression and angiogenesis in experimental biliary cirrhosis[J].Am J Pathol,1999,155:1065-1073.
[11]Giatromanolaki A,Kotsiou S,Koukourakis MI,et al.Angiogenic factor expression in hepatic cirrhosis[J].Mediators Inflamm.2007,2007:1-4.
[12]Xu H,Shi BM,Lu XF,et al.Vascular endothelial growth factor attenuates hepatic sinusoidal capillarization in thioacetamideinduced cirrhotic rats[J].World J Gastroenterol 2008,14(15):2349-2357.