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食道癌中m iR-542-3p對Survivin基因的作用研究

2011-03-22 07:22:14蔡偉明彭仕駿呂文強張志峰
中國醫藥科學 2011年11期
關鍵詞:研究

蔡偉明 彭仕駿 呂文強 張志峰

(廣東省揭陽市人民醫院心胸外科,廣東揭陽 522000)

食道癌是世界上最常見的6大惡性腫瘤之一,在我國每年約有25萬新患者產生,其死亡率居惡性腫瘤的第4位。至今,已較成功的在分子水平上確認食道癌的致病基因,但如何對其進行基因治療仍是一大難題[1-2]。Survivin在人類各種腫瘤組織癌細胞中含量很豐富,但在正常細胞中卻幾乎不存在[3-4]。Survivin是一個142個氨基酸的蛋白,屬于一類防止細胞凋亡的蛋白質。

microRNAs(miRNAs)是一個長度為21~25個核苷酸非編碼的小RNA家族,人類基因組編碼了超過1000個miRNA,通過干擾mRNA的翻譯而下調靶基因的表達。生物信息學數據表明,miRNA幾乎參與體內所有的基本的信號傳導途徑,包括許多重要腫瘤相關基因的表達。研究表明,miRNA表達失調與腫瘤發生密切相關,并已成功利用miRNA對腫瘤進行診斷、分期與生物治療。在現有的基礎上,通過對Survivin基因潛在的miRNA進行預測,挑取評分較高的miR-542-3p進行研究[5-8]。

1 材料與方法

1.1 實驗材料與試劑

人食道癌細胞株KYSE-510由中國醫學科學院上海生命科學院贈送。細胞培養用RPMI1640培養基與胎牛血清(FBS)為PAA產品;脂質體轉染試劑LipofectamineTM2000為Invitrogen公司產品;一步法RT-PCR擴增試劑盒和染料法定量試劑盒購自TaKaRa公司;miRNA mimics購自廣州銳博公司。

1.2 細胞培養

細胞置于37℃、5%CO2、飽和濕度的培養箱中,于含10%胎牛血清、100U/m L青霉素、100mg/L鏈霉素的RPMI1640培養液中培養。待貼壁生長后,用含0.25%胰蛋白酶和0.02% EDTA的消化液消化,進行傳代培養。

1.3 細胞轉染

轉染前1天接種細胞于24孔板,第2天細胞匯合度達到75%時進行轉染,分為miR-542-3p過表達組(加入miRNA mimics)、正常對照組,每組重復3次,操作步驟按說明書進行,試劑用量按說明書的推薦用量而加。

1.4 染料法定量檢測Survivin基因的表達情況

轉染24h后,收集細胞提取RNA,染料法定量檢測Survivin基因的表達情況[9],引物如下:F:5’-GGTTGTGAATGAGGCTTCTG-3’;R:5’-TGGCTTGCTGGTCTCTTC-3’,擴增長度為125bp。

內參為GAPDH:F:5’-TCTCTGCTCCTCCTGTTC-3’;R:5’-ACTCCGACCTTCACCTTC-3’,擴增長度為97bp。

1.5 統計學處理

采用SPSS12.0軟件進行非參數一致性檢驗、秩和檢驗及x2檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。

圖1 Survivin的表達與m iR-542-3p的關系

2 結果

將miRNA mimics組中Survivin相對表達水平的平均值設為1,與對照組相比,轉入miRNA模擬物組的Survivin的表達顯著降低(P<0.01)。顯示miR-542-3p對Survivin具有明顯的負調控作用。見圖1。

3 討論

Survivin是由142個氨基酸構成的蛋白,僅含有單一的BIR功能區,沒有環指結構。Survivin是凋亡抑制蛋白(IAP)家族中的新成員,在人類眾多惡性腫瘤中高表達,具有強烈的凋亡抑制功能和促細胞增殖活性,并與部分腫瘤的血管生成和預后有密切關系,因而已成為基因治療的熱門靶點。體內外研究表明,Survivin可在多種轉化細胞系中表達,并見于所有人類最常見的腫瘤組織,包括肺癌、結腸癌、胰腺癌、前列腺癌和乳腺癌。

miRNA在不同組織不同發育階段的持續保守性表達具有廣泛的調控功能。miRNA調控基因表達的功能與來源無關,因此miRNA已經成為重要的實驗工具。之前的研究表明食道癌細胞Survivin表達量會增多,在這一基礎上,為探討miRNA在腫瘤治療中的應用,本研究通過對靶向Survivin的miRNA進行研究,觀察其對Survivin的抑制作用。實驗證明miRNA能顯著抑制Survivin基因的表達,為其在腫瘤基因治療中的應用奠定了基礎。這一研究不僅加深了對食道癌分子機制的了解,而且說明Survivin可能會是治療食道癌潛在的靶點[10-13]。

[1] 鄒繼彬,黃廣恩,陳鴻蓮,等. 食管癌Survivin和PCNA的表達及其臨床意義[J]. 中國醫師雜志,2005,7(7):898-900.

[2] 況麗平,吳名耀. 食管癌MGMT、survivin蛋白的表達及其臨床意義[J].腫瘤防治研究,2007,34(1):21-23.

[3] 張德慶,孟光源,李毅,等. Survivin基因在食管癌組織中的表達及臨床意義[J]. 泰山醫學院學報,2006,27(2):113-116.

[4] 劉劍波,王克文. 食管癌survivin mRNA的異常表達[J]. 南華大學學報(醫學版),2007,35(5):735-737.

[5] Nehad M Alajez,Michelle Lenarduzzi,Emma Ito,et al. miR-218 suppresses nasopharyngeal cancer progression through downregulation of survivin and the SLIT2-ROBO1 pathway[J]. Cancer Res,2011,71(6):2381-2391.

[6] 王海峰,茍欣,黎衍敏,等. C57BL小鼠survivin基因miRNA表達載體的構建[J]. 中國組織工程研究與臨床康復,2009,13(53):10491-10494.

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[9] 何曉松,錢志英,何流,等. 實時熒光定量RT-PCR檢測食管癌survivin mRNA的表達[J]. 臨床和實驗醫學雜志,2006,5(1):10-11.

[10] Yoon S,Choi YC,Lee S,et al. Induction of growth arrest by miR-542-3p that targets survivin[J]. FEBS Lett,2010,584(18):4048-4052.

[11] 賀小停,曹秀峰. miRNA與食管癌[J]. 世界華人消化雜志,2007,15(19):2133-2137.

[12] 程蕾,凌志強,毛偉敏. microRNA在食管癌中的特征[J]. 世界華人消化雜志,2010,18(23):2434-2441.

[13] Yihua Wang,Hongxia Zhu,Lanping Quan,et al. Downregulation of survivin by RNAi inhibits the growth of esophageal carcinoma cells[J]. Cancer Biology&Therapy,2005,4(9):974-978.

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