霜制對苦杏仁中苦杏仁苷在大鼠尿液中的代謝與排泄影響

付志玲， 鄭曉暉， 房敏峰

（西部資源生物與現代生物技術教育部重點實驗室，西北大學生命科學學院，陜西西安 710069）

霜制對苦杏仁中苦杏仁苷在大鼠尿液中的代謝與排泄影響

付志玲， 鄭曉暉*， 房敏峰*

（西部資源生物與現代生物技術教育部重點實驗室，西北大學生命科學學院，陜西西安 710069）

目的 探討霜制對苦杏仁中苦杏仁苷在大鼠尿液中的代謝與排泄影響。方法 將SD大鼠分別注射苦杏仁苷、灌胃苦杏仁生品及霜制品水煎液，于不同時間段收集尿液，HPLC測定尿液中馬尿酸、苦杏仁苷及其代謝產物野櫻苷，LCMSn鑒定代謝產物的結構。結果 苦杏仁苷注射給藥后主要以原型排泄，馬尿酸質量分數無明顯變化；苦杏仁生品與霜制品灌胃給藥后主要以代謝產物野櫻苷的形式排泄，馬尿酸質量分數有顯著增長，且霜制后野櫻苷的排泄時間延遲。結論 霜制對苦杏仁中苦杏仁苷的排泄有較大影響。

苦杏仁；霜制；代謝；高效液相色譜-質譜聯用

苦杏仁鎮咳祛痰的有效成分為苦杏仁苷［1］，經霜制脫脂滅酶后有效成分顯著提高［2］。苦杏仁生品及霜制品口服后在血液和組織中均未檢出苦杏仁苷原型，而檢出了野櫻苷，且該成分在8 h內穩定存在［3］。但野櫻苷是苦杏仁苷在體外水解的中間產物，極不穩定［4］。因此，有必要通過尿液代謝檢測不同炮制品中苦杏仁苷的代謝終產物，據此推測苦杏仁苷的體內代謝過程，探討苦杏仁霜制機理。

1 儀器與材料

1.1 儀器

Agilent 1100系列高效液相色譜-電噴霧-離子阱質譜聯用儀；島津LC-10AT vp高效液相色譜儀；SPD-10A vp紫外檢測器；SHIMADZU CBM-102色譜工作站（日本Shimadzu Corpration）；DXL-10大鼠代謝籠（上海科科醫學模型有限公司）；HC-3018高速離心機（科大創新股份有限公司）。

1.2 試藥

苦杏仁苷對照品，購自中國藥品生物制品檢定所（批號110820-200403）；馬尿酸對照品（純度大于98.5%，購于國藥集團化學試劑有限公司，批號F20080624）；苦杏仁藥材（購于陜西省藥材公司，由陜西省藥品檢驗所鑒定）；色譜甲醇（美國Fisher公司，批號086955）；實驗用水為超純蒸餾水（自制）；其他試劑均為分析純。

1.3 動物

SD大鼠，雌雄兼用，體質量200～220 g，由西安交通大學實驗動物中心提供，合格證號：醫動字第09-003號。

2 方法

2.1 色譜條件

Thermo Hypersil GOLD Cl8色譜柱 （250 mm×4.6 mm，5 μm）；流動相：甲醇-水-甲酸（13 ∶87 ∶0.1）；體積流量 0.8 mL/min；柱溫 25 °C；檢測波長220 nm；進樣量 10 μL。

質譜條件：電噴霧離子源；正離子模式；噴霧電壓 3.5 kv，干燥氣體積流量 8.0 L/min，干燥氣溫度350℃；霧化氣壓力35.0 Psi；質量掃描范圍50～1 000 amu；流動相：甲醇-水-甲酸-甲酸銨（13 ∶87 ∶0.1 ∶0.1）；體積流量 0.8 mL/min，入質譜分流比例為3∶1；柱溫25 °C。

2.2 藥材供試品溶液的制備

取苦杏仁和苦杏仁霜適量，搗碎，加沸水回流提取2次，每次15 min，濾過，濃縮，制得質量濃度為1 g生藥/mL的不同炮制品供試溶液。

2.3 方法學考察

2.3.1 專屬性

在擬定色譜條件下，空白尿液對苦杏仁苷（tR=27.8 min）測定無干擾。馬尿酸為正常尿液中的內源性成分，所以在空白尿液色譜圖中在與馬尿酸對照品相同保留時間處（tR=20.8 min）出現一色譜峰，經LC-MS確認為內源性的馬尿酸，經多份空白尿液測定，內源性的馬尿酸峰面積相對小且恒定，故不影響觀察馬尿酸的變化。苦杏仁苷和馬尿酸的峰形良好。

2.3.2 線性范圍和檢測限

精密吸取苦杏仁苷和馬尿酸的系列標準尿液樣品10 μL，在擬定色譜條件下進樣分析。以峰面積為縱坐標（y），以苦杏仁苷和馬尿酸的濃度為橫坐標（x，μg/mL）進行回歸分析，空白尿液中馬尿酸的面積相對小且恒定，通過空白尿液扣除的方法得馬尿酸的標準曲線回歸方程，結果見表1，檢測限為0.3 μg/mL。

表1 苦杏仁苷和馬尿酸的線性關系結果Tab.1 The linear relationship of amygdalin and hippunic acid

2.3.3 回收率、精密度和穩定性

精密配制2、20、200 μg/mL 低、中、高 3 個質量濃度的苦杏仁苷和馬尿酸的空白尿液加標樣品各5份，在擬定分析條件下分析，記錄峰面積，由線性方程計算得到測得量，以測定值的平均值與配制的理論濃度比較，得苦杏仁苷和馬尿酸的回收率均大于89%。每日每個濃度平行測定5次，分別在6日內連續測定5次，得日內及日間精密度RSD均小于5%，穩定性RSD均小于5%。

2.4 樣品的采集

取健康SD大鼠，隨機分3組，每組6只，實驗前禁食，自由飲水。分別尾靜脈注射苦杏仁苷（100 mg/kg）；灌苦杏仁生品以及苦杏仁霜制品水煎液（7 g生藥/kg），另設2只給予生理鹽水，作為空白對照。置于大鼠代謝籠中收集給藥后0～2 h，2～4 h，4～8 h，8～12 h，12～24 h，5 個時段的尿液，分別記錄所收集尿液體積，得到含藥和空白尿液樣品，于－20°C凍存備用。

2.5 樣品預處理

取2.4項下所收集的尿樣適量，4 000 r/min離心10 min，取離心后的上清液用水稀釋（稀釋倍數視尿樣中的藥物濃度而定，一般為10～100倍），稀釋后用0.45 μm微孔濾膜濾過，取續濾液直接進樣分析。

3 結果

3.1 給藥后尿液樣品的LC-MS分析

分別取2.5項下的尿液樣品10 μL，在擬定色譜條件下進樣分析，結果顯示苦杏仁苷注射給藥后可在大鼠尿液中檢測到苦杏仁苷原型，馬尿酸的質量分數與空白組無明顯差異；灌胃給藥苦杏仁生品和霜制品后均未檢測到苦杏仁苷原型，分別在34 min和36 min處檢測到苦杏仁苷的代謝產物，經質譜分析為野櫻苷的同分異構體，即D-野櫻苷和L-野櫻苷［5-7］，馬尿酸的質量分數明顯增大，見圖1。

圖1 給藥后尿液樣品的HPLC圖Fig.1 The HPLC graph of rat urine sample after mainline or oral administration

3.2 給藥后大鼠含藥尿液中馬尿酸、苦杏仁苷及野櫻苷隨時間的變化

將不同時間點收集到的大鼠含藥尿液分別進行HPLC檢測。結果表明，苦杏苷注射給藥后在0～2，2～4，4～8，8～12，12～24 h 5個時間段均能檢測到明顯的苦杏仁苷原型，其中以2～4 h排出量最大，累積排出率為69.9%。苦杏仁生品和苦杏仁霜灌胃給藥后，在5個時間段均可檢測到明顯的代謝產物野櫻苷，生品灌胃時以0～2 h排出量最大，而制霜后最大排出量集中在2～4 h，且灌胃給藥后尿液中馬尿酸的質量分數均顯著增大，見圖2和圖3。

3.3 苦杏仁苷在大鼠體內的代謝過程

根據以上檢測結果，結合文獻［3］推測灌胃給藥苦杏仁生品與霜制品后其主要成分苦杏仁苷在大鼠體內的代謝途徑，如圖4所示。

4 討論

圖2 大鼠灌服苦杏仁生品和霜制品后野櫻苷的累積排泄曲線Fig.2 The cumulative excretion curve of prunasin after oral raw or cream product of bitter almond by rat

4.1 某些種子類中藥由于富含大量脂肪油而具有毒性強、滑腸致瀉劇烈等缺點，中醫臨床上常通過炮制去油成霜，以達降低毒性、用藥安全的目的［8］。通常將藥材碾碎如泥狀，經微熱后，壓去部分油脂，制成符合一定要求的松散粉未［9］。但苦杏仁苷易被苦杏仁酶水解，故在制霜時，需將生品打成較大碎粒，蒸制滅酶后，才可做脫脂處理，否則，苦杏仁霜中有效成分損失較大。

圖3 大鼠注射苦杏仁苷、灌服苦杏仁生品和霜制品后馬尿酸的累積排泄曲線Fig.3 The cumulative excretion curve of hippuric acid after amygdalin given by mainline，bitter almond and its cream product given by oral in rat

圖4 苦杏仁苷在大鼠體內的代謝過程Fig.4 The metabolic process of amygdalin in rat

4.2 注射給藥苦杏仁苷，在尿液中主要以原型藥的形式排出，灌胃給藥苦杏仁生品和霜制品后主要是以代謝產物野櫻苷的形式排出，野櫻苷是苦杏仁苷的次級苷，推測是由苦杏仁苷在腸道內代謝形成的［10］。其體內作用過程為苦杏仁苷首先經脫糖轉化為野櫻苷，再經脫糖轉化為苯乙腈，苯乙腈分解生成HCN和苯甲醛，HCN發揮止咳平喘的功效，苯甲醛經氧化生成苯甲酸，苯甲酸被輸送到肝臟后，在ATP、Mg2+、CoA的作用下，與肽鍵和甘氨酸結合生成馬尿酸排出體外，因此灌胃給藥后馬尿酸的質量分數顯著升高。

4.3 苦杏仁生品灌胃時野櫻苷在0～2 h排出量最大，而霜制后最大排出量集中在2～4 h。即經霜制以后，野櫻苷的排泄時間與生品有明顯不同，霜制后可使其排泄時間延遲，即藥物在體內的作用時間延長，這種影響可能與霜制可改變苦杏仁的作用趨向，增強其止咳平喘的功效有關，苦杏仁苷的代謝產物野櫻苷是否與苦杏仁止咳平喘的藥理作用相關還有待進一步研究。

［1］楊書斌，劉 青，孫立立，等.HPLC測定苦杏仁飲片中苦杏仁苷的含量［J］.中成藥，2006，28（10）：1452-1454.

［2］張振凌.臨床中藥炮制學［M］.北京：中國中醫藥出版社，2007：206-207.

［3］房敏峰，付志玲，王啟林，等.炮制對苦杏仁中苦杏仁苷在大鼠體內代謝的影響［J］.中國中藥雜志，2010，35（20）：2684-2688.

［4］葉定江.中藥炮制學［M］.上海：上海科學技術出版社，2002：252-253.

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［9］國家藥典委員會.中華人民共和國藥典：2010年版一部［S］.北京：中國醫藥科技出版社，2010：附錄20.

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Effect of defatted method on metabolism and excretion of bitter almond in rat

urine
FU Zhi-ling， ZHENG Xiao-hui*， FANG Min-feng*
（Key Laboratory of Resource Biology and Biotechnology in Western China，Ministry of Education，The College of Life Sciences，Northwest University，Xi’an 710069，China）

AIMTo explore the processing influence of removal of oil on metabolism and excretion of bitter almond in rat urine.METHODSSix SD rats were given the injection of amygdalin，other six SD rats took the perfusion of the extract of bitter almond，the third group of six SD rats took the extract of defatted bitter almond.Sample of these rats’urine was collected at various time intervals and contents of amygdalin，hippuric acid and prunasin analyzed on HPLC.LC-MS was applied to the structure analysis.RESULTSAfter drug administration，amygdain in prototype was found out in rat urine receiving injection of amygdain，hippuric acid content in rat urine continued without change.SD rats receiving perfusion excreted prunasin-metabolite of amygdain，and increased the excretion of hippuric acid。Experiment showed that the defatted bitter almond caused the excretion time interval of prunasin to be delayed.CONCLUSIONThe defatted processing may have an important effect on the excretion of amygdalin.

bitter almond；processing；metabolism；LC-MSn

R285.5

A

1001-1528（2011）07-1202-04

2010-01-20

陜西省中醫管理局基金資助項目（陜中醫發20072507）

付志玲（1982—），女，碩士生，從事中藥炮制研究。E-mail：fuzhiling007@163.com

*通信作者：鄭曉暉（1968—），男，教授，從事復方代謝研究。E-mail：zhengxh@nwu.edu.com

房敏峰（1967—），女，副教授，從事中藥資源與炮制研究。E-mail：fff885@126.com