CD24+CD44+胰腺癌細胞的獲取及其干細胞特性的初步鑒定

虞先濬 劉辰 徐近 龍江 倪泉興

復旦大學附屬腫瘤醫院胰腺肝膽外科，復旦大學上海醫學院腫瘤學系，上海 200032

CD24+CD44+胰腺癌細胞的獲取及其干細胞特性的初步鑒定

虞先濬 劉辰 徐近 龍江 倪泉興

復旦大學附屬腫瘤醫院胰腺肝膽外科，復旦大學上海醫學院腫瘤學系，上海 200032

背景與目的：近年研究發現，腫瘤內存在極小一部分細胞，決定腫瘤的惡性表型及生物學特性，被稱為“腫瘤干細胞”。本研究擬從人原發胰腺癌組織中找到具有干細胞特性的胰腺癌細胞，為今后靶向干預胰腺癌干細胞，解決胰腺癌治療的臨床難題提供研究基礎。方法：將人原發胰腺癌組織種植于NOD/SCID小鼠成瘤，對移植瘤細胞進行流式細胞分選；將流式細胞儀分選獲得的細胞用無血清、含有生長因子的DMEM/F12培養基培養，觀察細胞的生長、傳代及體外干細胞球形成能力；將細胞接種于非肥胖型糖尿病/重癥聯合免疫缺陷型 (Nonobese diabetic/severe combined immunodeficiency，NOD/SCID)小鼠，觀察、比較成瘤率，免疫組化法檢測干細胞移植瘤腫瘤分化相關抗原Ki67、CK7及甲基化調控因子MBD1的表達；免疫熒光檢測細胞Hedgehog、BMI-1的表達。結果：人原發胰腺癌組織種植于NOD/SCID小鼠可部分成瘤，對移植瘤細胞進行流式細胞分選，獲得CD24+CD44+細胞(獲得率0.6%～1.8%)；將CD24+CD44+細胞用無血清、含有生長因子的DMEM/F12培養基培養，細胞呈懸浮球狀生長，可連續傳代并能再次形成干細胞球；將102個CD24+CD44+細胞接種于NOD/SCID小鼠，成瘤率12.5%(1/8小鼠成瘤)，將103個CD24+CD44+細胞接種于NOD/SCID小鼠，4周后100%成瘤，而同樣數量的CD24-CD44-胰腺癌細胞則無法成瘤(P＜0.05)，免疫組化法檢測干細胞移植瘤中部分細胞表達Ki67、CK7及MBD1陽性；免疫熒光檢測證實CD24+CD44+細胞陽性表達Hedgehog、BMI-1，表達量分別高于CD24-CD44-細胞9.95倍和2.74倍(P＜0.05)。結論：所獲得的CD24+CD44+細胞具有胰腺癌干細胞特性，可作為今后胰腺癌干細胞研究的實驗基礎。

胰腺癌； 干細胞； Hedgehog； BMI-1

近年來，胰腺癌的發病率明顯上升。胰腺癌惡性程度高，生物學行為特異，容易發生早期轉移，且對放、化療不敏感，手術切除率低，發病率接近死亡率，預后很差［1］。因此，深入研究胰腺癌的特性，探求胰腺癌發生、發展的根源，具有重要的意義。研究表明，多數惡性腫瘤中存在極少部分的細胞群體，能夠無限生長、永久生存，并具備自我更新、多向分化的能力，是惡性腫瘤失控生長、轉移、耐藥和預后差的根源［2］。本研究擬從人原發胰腺癌組織中找到具有干細胞特性的胰腺癌細胞，為今后靶向干預胰腺癌干細胞，解決胰腺癌治療的臨床難題提供研究基礎。

1 資料和方法

1.1 人原發胰腺癌組織的異種種植

取手術切除的新鮮人原發胰腺癌組織10例，其中6例男性，4例女性，平均年齡(54.7±10.3)歲(41～70歲)，TNM分期(UICC，2010)均為Ⅲ/Ⅵ期，病理證實為導管腺癌，術前均未行化療。將腫瘤組織在無菌RPMI 1640培養基內制成2 mm×2 mm大小的腫瘤組織條，用無血清的PBS溶液沖洗，種植于8周齡的非肥胖型糖尿病/重癥聯合免疫缺陷型 (Nonobese diabetic/severe combined immunodeficiency，NOD/SCID) 雌性小鼠(8～10周齡，SPF級環境飼養)背部皮下，成瘤后取出移植瘤，分別用膠原酶消化后制成單細胞懸液。

1.2 流式細胞分選

取對數生長期的細胞(1×106/100 μL)，用胰酶消化2～3 min，加入HBSS/2%FBS溶液沖洗，重懸細胞，DAPI(濃度為1 μg/mL)染色。加入PE標記的抗人CD44，FITC標記的抗人CD24(美國PharMingen公司，濃度均為1∶40)，冰上溫育20 min。用流式細胞儀(美國BD公司)進行分選。細胞分選重復2次，分選后各亞群細胞純度＞95%。

1.3 CD24+CD44+細胞的體外培養

收集對數生長期的細胞，用無血清、含生長因子EGF、FGF10的DMEM-F12培養基重懸、培養，收集細胞制成單細胞懸液，接種于無血清DMEM-F12培養基傳代。

1.4 CD24+CD44+細胞體內成瘤實驗

取8周齡NOD/SCID雌性小鼠24只，飼養于SPF級環境。分為3組，每組8只，分別接種102、103、104數量級的細胞。將CD24+CD44+細胞接種于小鼠右側背部， CD24-CD44-細胞接種于小鼠左側背部，每周觀察成瘤情況及腫瘤大小，12周后處死小鼠。移植瘤取出后切片，進行HE及免疫組化染色。

1.5 免疫組化

采用二步法免疫組化染色(EnVision System)，Ki67(購自美國DAKO公司)、CK7、MBD1(均購自美國Santa Cruz公司)一抗的工作濃度均為1∶100。常規脫蠟、水化、抗原修復，一抗和二抗分別溫育、DAB顯色、蘇木精復染，中性樹脂封片觀察。用PBS代替一抗作為陰性對照。

1.6 免疫熒光

將細胞分為CD24+CD44+和CD24-CD44-2組。取對數生長細胞，制備細胞涂片，固定、通透、封閉后加入一抗(抗人Hedgehog、抗人BMI-1，均購自美國Santa Cruz公司，濃度為1∶100)溫育1 h，PBS沖洗，加入熒光標記的二抗(濃度為1∶50)，沖洗、封片，熒光顯微鏡觀察。MoticFluo1.0圖像分析系統進行圖像分析，根據熒光顯示的亮度，測定其灰度值，代表蛋白的相對表達量。

1.7 統計學處理

采用SPSS 19.0統計軟件進行分析，計數資料用χ2檢驗或Fisher’s確切概率檢驗，計量資料的比較用t檢驗。P＜0.05為有統計學意義。

2 結 果

2.1 CD24+CD44+胰腺癌細胞的獲取

10例人原發胰腺癌組織異種種植2周后開始成瘤，4周后共有3例成瘤，瘤體大小(995.8±46.8) mm3，未見明顯轉移灶，移植瘤經HE染色證實為導管腺癌。將3例移植瘤分別進行流式細胞分選，CD24+細胞的比例為2.5%～26.8%，CD44+細胞的比例為2.8%～9.5%，CD24+CD44+細胞的比例為0.6%～1.8%(圖1)。

2.2 CD24+CD44+細胞的體外成球能力

將CD24+CD44+細胞用無血清的含生長因子的DMEM/F12培養基培養，4～5 d后細胞呈懸浮球狀生長(圖2)，12 d左右將細胞傳代，傳代細胞仍能懸浮球狀生長。

2.3 CD24+CD44+細胞的體內成瘤能力

將CD24+CD44+細胞接種于NOD/SCID小鼠右側背部，CD24-CD44-細胞接種于小鼠左側背部，觀察小鼠成瘤率。102組：CD24-CD44-細胞均未成瘤(0/8)，CD24+CD44+細胞有1例成瘤(1/8)；103組：CD24-CD44-細胞均未成瘤(0/8)，CD24+CD44+細胞均成瘤(8/8)(P＜0.05)；104組：CD24-CD44-細胞有2例成瘤(2/8)，CD24+CD44+細胞均成瘤(8/8)。移植瘤取出后切片，進行HE染色及Ki67、CK7、MBD1免疫組化染色(圖3)。

2.4 腫瘤干細胞“自我更新”相關信號通路因子的表達

免疫熒光檢測CD24+CD44+和CD24-CD44-2組細胞Hedgehog、BMI-1的表達，發現CD24+CD44+細胞Hedgehog、BMI-1的表達較CD24-CD44-細胞分別上調了9.95倍和2.74倍(P＜0.05，圖4)。

3 討 論

胰腺癌作為一個日趨多見的消化道惡性腫瘤，有其特有的生物學特性：容易發生早期轉移；對化、放療耐藥；進展迅速、預后極差。因此，深入研究胰腺癌的特性，探求胰腺癌發生、發展的根源，具有重要的意義。

2007年，Simeone等首次報道發現了胰腺癌干細胞，這些細胞僅占癌細胞總數的0.2%～0.8%，具有自我更新及多向分化潛能，并能不斷適應各種惡劣環境的變化而永久生存，被認為是胰腺癌無限增殖、早期轉移和化、放療耐藥的根源。100個具有干細胞特性的腫瘤細胞就可使半數以上的小鼠成瘤，其致癌性是普通腫瘤細胞的100倍［3］。有理由相信，如果能夠靶向干預胰腺癌的干細胞特性，就有可能在這惡性頑疾的治療上獲得重大的突破。

對于胰腺癌干細胞的表面標志物，目前尚無一致的定論。2007年Li等［4］用流式細胞儀分離出CD44、CD24、ESA三陽性的胰腺癌干細胞。同年，Hermann等［5］報道CD133+的胰腺癌細胞具有強大的致瘤、耐藥和轉移等干細胞特性。

甲基化結合域蛋白1 (methyl-CpG binding domain protein 1，MBD1)是一個重要的轉錄調控因子，它通過特異地結合DNA上甲基化的CpG位點而發揮活躍的轉錄抑制作用。我們前期的研究發現，MBD1在胰腺癌中存在高表達，并與胰腺癌的生長增殖、淋巴轉移以及上皮-間質轉化過程密切相關［6-9］。本研究在胰腺癌干細胞移植瘤中檢測發現MBD1表達陽性，提示胰腺癌干細胞特性可能與甲基化調控相關，為今后深入研究甲基化調控與胰腺癌干細胞特性之間的聯系及相關機制提供啟示。

胰腺癌干細胞的核心本質為自我更新及無限生長能力，多種信號傳導通路的異常激活參與了胰腺癌干細胞的自我更新特性，如Hedgehog、Notch、BMI-1、PTEN等［10-13］。研究發現，Hedgehog與BMI-1的活化可使腫瘤干細胞球數量增多、體積增大，增強干細胞的多向分化及傳代后再次形成干細胞球的能力，在體內，下調Hedgehog與BMI-1表達可抑制NOD/SCID小鼠成瘤［14］。Li等［4］發現，胰腺癌干細胞中Hedgehog的表達高于普通胰腺癌細胞近10倍。異常表達的Hedgehog信號可促使正常胰腺導管發生癌前病變，并向胰腺癌逐漸發展，活化的Hedgehog還可維持胰腺癌的惡性表型，而阻斷Hedgehog表達則會減緩胰腺癌增殖、促進細胞凋亡，進而抑制腫瘤轉移、改善腫瘤耐藥［15-16］。BMI-1同樣與胰腺癌的增殖、轉移、預后有關［17］，本研究中，具有腫瘤干細胞特性的CD24+CD44+細胞表達Hedgehog、BMI-1均明顯高于普通胰腺癌細胞，證實Hedgehog和BMI-1的表達與胰腺癌干細胞特性相關。

本研究將人原發胰腺癌組織種植于NOD/SCID小鼠成瘤，對移植瘤細胞進行流式細胞分選，獲得CD24+CD44+細胞(獲得率0.6%～1.8%)； 將CD24+CD44+細胞用無血清、含有生長因子的DMEM/F12培養基培養，細胞呈懸浮球狀生長，可連續傳代并能再次形成干細胞球；將103個CD24+CD44+細胞接種NOD/SCID小鼠，4周后100%成瘤，而同樣數量CD24-CD44-胰腺癌細胞則無法成瘤；免疫熒光檢測證實CD24+CD44+細胞陽性表達Hedgehog、BMI-1，表達量顯著高于CD24-CD44-細胞。證明我們所獲得的CD24+CD44+細胞具有胰腺癌干細胞特性，為今后靶向干預胰腺癌干細胞，解決胰腺癌治療的臨床難題提供研究基礎。

［1］Li DH, Xie KP, Wolff R, et al. Pancreatic cancer ［J］.Lancet, 2004, 363(9414):1049-1057.

［2］Reya T, Morrison SJ, Clarke MF, et al. Stem cells, cancer, and cancer stem cells［J］. Nature, 2001, 414(6859): 105-111.

［3］Lee CJ, Dosch J, Simeone DM. Pancreatic cancer stem cells［J］. J Clin Oncol, 2008, 26(17): 2806-2812.

［4］Li C, Heidt DG, Dalerba P, et al. Identification of pancreatic cancer stem cells ［J］. Cancer Res, 2007, 67(3): 1030-1037.

［5］Hermann PC, Huber SL, Herrler T, et al. Distinct populations of cancer stem cells determine tumor growth and metastatic activity in human pancreatic cancer ［J］. Cell Stem Cell,2007, 1(3): 313-323.

［6］Yu XJ, Long J, Fu DL, et al. Analysis of gene expression profiles in pancreatic carcinoma by using cDNA microarray［J］. Hepatobiliary Pancreat Dis Int, 2003, 2(3): 467-470.

［7］Liu C, Chen Y, Yu X, et al. Proteomic analysis of differential proteins in pancreatic carcinomas:Effects of MBD1 knockdown by stable RNA interference ［J］. BMC Cancer, 2008,8: 121.

［8］Xu J, Liu C, Yu XJ, et al. Activation of multiple tumor suppressor genes by MBD1 siRNA in pancreatic cancer cell line BxPC-3［J］. Zhonghua Yi Xue Za Zhi, 2008, 88(28):1948-1951.

［9］Luo G, Jin C, Long J, et al. RNA interference of MBD1 in BxPC-3 human pancreatic cancer cells delivered by PLGA-poloxamer nanoparticles［J］. Cancer Biol Ther, 2009, 8(7):594-598.

［10］Simeone DM. Pancreatic cancer stem cells: implications for the treatment of pancreatic cancer ［J］. Clin Cancer Res,2008, 14(18): 5646-5648.

［11］Park IK, Morrison SJ, Clarke MF. Bmi1, stem cells, and senescence regulation ［J］. J Clin Invest, 2004, 113(2):175-179.

［12］Androutsellis-Theotokis A, Leker RR, Soldner F, et al. Notch signaling regulates stem cell numbers in vitro and in vivo［J］. Nature, 2006, 442 (7104): 823-826.

［13］Lindgren AG, Natsuhara K, Tian E, et al. Loss of PTEN causes tumor initiation following differentiation of murine pluripotent stem cells due to failed repression of nanog［J］. PLoS One,2011, 6(1): e16478.

［14］Liu S, Dontu G, Mantle ID, et al. Hedgehog signaling and Bmi-1 regulate self-renewal of normal and malignant human mammary stem cells ［J］. Cancer Res, 2006, 66(12): 6063-6071.

［15］Thayer SP, di Magliano MP, Heiser PW, et al. Hedgehog is an early and late mediator of pancreatic cancer tumorigenesis［J］. Nature, 2003, 425(6960): 851-856.

［16］Olive KP, Jacobetz MA, Davidson CJ, et al. Inhibition of Hedgehog signaling enhances delivery of chemotherapy in a mouse model of pancreatic cancer［J］. Science, 2009,324(5933): 1457-1461.

［17］Song W, Tao K, Li H, et al. Bmi-1 is related to proliferation,survival and poor prognosis in pancreatic cancer［J］. Cancer Sci, 2010, 101(7): 1754-1760.

The isolation and functional verification of the cells with CD24CD44 double positive expression from primary human pancreatic adenocarcinomas

YU Xian-jun,LIU Chen,XU Jin,LONG Jiang,NI Quan-xing(Department of Pancreatic & Hepatobiliary Surgery, Fudan University Shanghai Cancer Center; and Department of Oncology, Shanghai Medical College, Fudan University,Shanghai 200032, China)

NI Quan-xing E-mail：blurlc@hotmail.com

Background and purpose：Emerging evidence has shown that cancer stem cells, which is a few subset of cells in tumor, could determine the malignant phenotype and biological behavior of the tumor, This study aimed to isolate a highly tumorigenic subpopulation of cells from primary human pancreatic adenocarcinomas and verify the biological function of the cells.Methods：Primary human pancreatic adenocarcinomas was planted in immunocompromised (NOD-SCID) mice, and then fl ow cytometry was used to sort the cells into several subpopulation.The sorted cells were cultured in a serum-free DMEM/F12 medium with EGF and FGF to observe the proliferation,passage and spheroid forming capacity of the cells, the cells with those unique features were injected s.c. into NOD/SCID mice to determine the tumorigenicity. The expression of differentiation markers like Ki67, CK7 and DNA methylation regulating factor MBD1 in xenograft tumors was examined by immunohistochemistry, and the expression of Hedgehog and BMI-1 was observed by immunof l uorescence method.Results：Through the processes, a highly tumorigenic subpopulation of pancreatic cancer cells were isolated and had been shown positive expression of CD44 and CD24 of cell surface markers. CD24+CD44+cells could form tumor spheroids in nonadherent culture conditions,and the spheroids also had CD24+CD44+features and could be passaged multiple times without loss of tumor spheroids forming capability. In vivo study, the tumorigenesis was dependent on the number of the cells that implanted into mice.Some of CD24+CD44+tumor cells had been observed to also express the differentiation markers Ki67, CK7 and DNA methylation regulating factor MBD1, and the expression of Hedgehog and BMI-1 were significantly up-regulated about 9.95 fold and 2.74 fold, respectively, in CD24+CD44+cells compared with CD24-CD44-cells.Conclusion：The CD24+CD44+cells are highly tumorigenic subpopulation of pancreatic cancer cells and might be the stem cells of pancreatic adenocarcinomas.

Pancreatic carcinoma; Stem cell; Hedgehog; BMI-1

10.3969/j.issn.1007-3969.2011.02.002

R735.9；R73-35

A

1007-3639(2011)02-0086-05

國家自然科學基金資助項目(No:81001058)。

倪泉興 E-mail:blurlc@hotmail.com

2010-08-25

2010-10-23）