常靈竹,苗麗娟
(吉林農業科技學院,吉林 吉林 132101)
豬血凝性腦脊髓炎是由豬血凝性腦脊髓炎病毒(HEV)引起仔豬的一種急性、高度接觸性傳染病。臨床上以仔豬嘔吐、衰竭或明顯的神經癥狀為主要特征[1]。主要侵害3周齡以下的乳豬,病程約10日,被感染仔豬的發病率和致死率都可達100%,成年豬呈隱性感染。該病目前尚無特效療法和有效疫苗,多數流行地區處于呼吸道亞臨床感染狀態。母源抗體可保護仔豬不受該HEV的侵害。未獲得母源抗體的仔豬,可在初生后注射高免血清建立被動免疫[2-7]。診斷和治療用血清所含的抗體主要為IgG,而IgG在疾病診斷治療方面的應用越來越廣泛,制備高純度的抗體顯得尤為重要。本試驗擬利用家兔制備抗豬血凝性腦脊髓炎的高免血清,并利用高免血清制備和提純IgG。
家兔購自吉林大學實驗動物中心。
HEV和豬腎細胞(PK-15細胞)由吉林大學病理實驗室提供。
采用單層吸附接毒法繁殖HEV,用10%的MEM培養PK-15傳代,待細胞長成單層后,傾棄營養液,加入HEV,37℃吸附1 h,然后加入2%維持液,置于37℃5%CO2的細胞培養箱中培養,待細胞出現>80%的病變時,將細胞培養瓶放入冰箱中,經反復凍融2~3次后,將細胞液集合在同一個固定的容器中,置于-20℃保存備用[8]。最后將大量收取的病毒液溶化,將病毒液放入到無菌的離心管中,6000 rpm、4℃離心30 min,取上清,再用20000 rpm、4℃離心3 h,收集病毒沉淀,用TNE溶解,用0.22 μm濾膜過濾,保存于-80℃備用。測定純化后HEV感染力的滴度,根據Reed-Muench方法計算HEV的TCID50[9]。
豬血凝性腦脊髓炎病毒細胞培養物經純化后,56℃滅活30 min,滅活后的病毒對家兔進行3次免疫,首次加入弗氏完全佐劑,以后兩次加入弗氏不完全佐劑,佐劑與病毒的比例為1∶1。免疫2只家兔,每只500 μL·次-1(103.4TCID50·100 μL-1),每次間隔14 d,用ELISA方法鑒定血清是否為陽性[10]。
在血清中先加入等體積的PBS,攪拌混合均勻,再緩慢滴加相同體積的飽和硫酸銨,邊滴加邊攪拌,完全混勻后,室溫靜置1 h(或4℃過夜),10000 rpm離心10 min,收集沉淀,用少量的PBS溶解沉淀,然后裝入透析袋內,置于20倍體積的PBS(pH 8.0)中,4 ℃ 透析2 d,每天換液2次[11]。收集脫鹽后的抗體溶液,用0.22 μm濾膜過濾,備用。
首先將蠕動泵、收集器、核酸蛋白測定儀與層析柱相連;用0.1M pH 8.0的磷酸緩沖液平衡柱床;然后加入經飽和硫酸銨粗提的IgG,室溫作用15 min,用0.1M pH 8.0磷酸緩沖液充分淋洗至淋洗液OD值<0.02。用醋酸-醋酸鈉洗脫緩沖液洗脫所結合的IgG,收集3 mL于離心管中,應用LM17型記錄儀記錄檢測。先用0.1M pH 8.0磷酸緩沖液平衡柱床,再用20%的乙醇平衡柱床。將收集的液體裝入透析袋內,置于PBS溶液中,4℃透析過夜。次日將透析袋取出,10000 rpm離心15 min,收集上清,用ELISA方法檢測血清抗體效價,保存備用。
分別取血清和純化后的IgG 0.01 mL作為樣品,分別加入2倍SDS上樣緩沖液與樣本1∶1混合,煮沸10 min,進行SDS-PAGE電泳,凝膠染色-脫色后,根據血清和純化后的IgG的蛋白含量,判斷其純化效果[12]。
根據Reed-Muench方法計算HEV的TCID50,結果純化后HEV的滴度為103.4TCID50100 μL-1。
在第3次免疫后第7 d采血,用ELISA方法測定兔抗HEV血清效價,效價測定結果為1∶12800,符合試驗要求,采血并分離血清。
經過親和層析純化得到的兔抗HEV IgG,根據電泳結果可明顯看到兩條帶,一條為IgG的重鏈,另一條為IgG的輕鏈,見附圖。用ELISA方法測定兔抗HEV IgG的效價為1∶50000。

試驗用ELISA方法測定兔抗HEV血清效價,測定結果表明,所制備的血清效價較高,可達1∶12800;根據SDS-PAGE電泳結果可明顯看到兩條帶,一條為IgG的重鏈,另一條為IgG的輕鏈,沒有其他雜帶,說明使用親和層析得到較高純度的IgG,經ELISA方法測定兔抗HEV IgG的效價高達1∶50000,比未純化前的血清效價提高390%。IgG主要是由漿細胞產生的,是哺乳動物血清中主要的免疫球蛋白,約占血清免疫球蛋白總量的75%。IgG在血液中含量高,維持時間長,對構成機體的免疫力起著重要作用;當體內缺乏IgG時,常易患化膿性感染,導致病原微生物經血流擴散。診斷和治療用血清所含的抗體也主要為IgG,因此制備高純度的抗體顯得尤為重要。要提純IgG必須利用化學方法從血清中除去血清白蛋白,沉淀出血清γ球蛋白,進而用透析和過濾的方法去除血清γ球蛋白中的鹽類物質,得到免疫球蛋白,然后利用這些蛋白質的分子量和理化性質的差異對IgG進行純化。目前,純化抗體的方法很多,有辛酸-硫酸銨法、鹽析法、凝膠色譜法、離子交換法、親和層析等。但由于純化方法不同抗體的效率不同,甚至同一種方法對于不同抗體的效果也存在差異[13-15]。蛋白A親和層析純化的抗體純度高,且蛋白A具有良好的再生性,耐受低pH,可反復利用,長期不用時用含適量疊氮鈉的中性緩沖液平衡后,置于4℃保存即可[16]。本研究選取硫酸銨-蛋白A親和層析法對IgG進行了純化,得到了高純度和高效價的IgG。
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