楊志超 張麗莉 盧翠華* 邸 宏 姜麗麗 張正國 林忠平胡鳶雷
(1東北農業大學農學院,黑龍江哈爾濱 150030;2北京大學生命科學學院,北京 100871)
馬鈴薯(Solanum tuberosumL.)是茄科茄屬雙子葉植物,是世界四大糧食作物之一,由于它具有適應性強、產量高、營養成分全和加工產業鏈長等特點,受到了全世界的廣泛重視。我國是世界馬鈴薯生產第一大國,面積和總產量占全世界的1/4(盧翠華 等,2009)。
蟲害是造成馬鈴薯減產的主要原因,其中金龜子科害蟲金龜子(幼蟲俗稱蠐螬)是世界范圍內廣泛分布的地下害蟲之一。金龜子成蟲、幼蟲均可危害馬鈴薯,但幼蟲危害較大。傳統化學藥劑防治不僅危害人類健康,而且造成環境污染(姚慶學 等,2003)。自1996年轉基因作物商業化以來,全球種植的抗蟲轉基因作物面積已經達到2 625萬hm2(James,2008)。其中對金龜子科害蟲具有殺蟲作用的蘇云金芽胞桿菌cry類基因的相繼發現和克隆,為害蟲的防治提供了新的途徑。Yu等(2006)從Bt185中克隆了P2300-pa-8ea1基因。
本試驗將來源于Bt菌株Bt185的P2300-pa-8e基因導入馬鈴薯中,期望獲得抗蟲的馬鈴薯材料,為馬鈴薯抗性育種提供新資源。
試驗于2009年7月~2010年5月在東北農業大學馬鈴薯實驗室進行。
供試馬鈴薯品種為早大白和克新18號(東北農業大學提供)。
供試農桿菌菌種為LBA4404(北京大學生命科學學院提供),植物表達載體質粒P2300-Pa-8e(圖1),利用Patatin啟動子驅動P2300-pa-8e(500 bp)基因的表達,質粒由北京大學生命科學學院林中平教授提供。
1.2.1 工程菌液的制備 挑取含有質粒P2300-Pa-8e的農桿菌LBA4404單菌落接種于含有卡那霉素(Kan)、鏈霉素(Str)和利福平(Rif)的YEB培養基中,避光震蕩培養。從中取500 μL菌液接種于50 mL相同的YEB培養基中,以相同條件震蕩培養。到對數生長期,在4 000 r·min-1條件下離心5 min,棄上清液,重懸于MS液體培養基中,為工程菌液。
1.2.2 薯塊再生培養基的篩選 將馬鈴薯早大白和克新18號脫毒微型薯滅菌、去皮,切成薄片,放入工程菌液中進行定時侵染,轉入共培養培養基,28 ℃黑暗條件下培養 2~3 d。分別接種于9種再生培養基上(表1),誘導薯塊出芽。待芽長到2~3 cm時剪下,轉入生根培養基生根(叢培琳 等,2008;姜麗麗 等,2009)。
1.2.3 共培養時間對遺傳轉化的影響 在菌液OD600值為0.5、浸染時間為5 min的條件下,用農桿菌感染薯片,置于 28 ℃黑暗條件下分別培養1、2、3、4、5 d,在誘導培養基上培養20 d,統計抗性愈傷的誘導率。
1.2.4 PCR檢測 使用索來寶公司的植物總DNA提取試劑盒提取馬鈴薯植株的總DNA,以轉化植株的總DNA為模板,未轉化植株的總DNA作陰性對照,以P2300-pa-8e質粒為陽性對照,根據P2300-pa-8e基因序列,設計特異性引物(PrimerⅠ:5′-GGCGGCAGCATTCAAACTCAA-3′,PrimerⅡ:5′-ATCTCCACCAAGATAGTGTCC-3′),對目標基因進行擴增。PCR體系(25 μL):超純水16.5 μL,25 mg·mL-1MgCl21.5μL,10×Buffer 2.5 μL,10 mmol·L-1dNTP 2.0 μL,10 μmol·L-1PrimerⅠ 0.5 μL,10 μmol·L-1primerⅡ 0.5μL,50 ng·μL-1模板1.0 μL,5 U·μLTaq酶0.5 μL。PCR反應程序:94 ℃預變性8 min;94 ℃變性30 s,52.5 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,30個循環;72 ℃延伸8 min;4 ℃終止反應。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

圖1 P2300-Pa-8e植物表達質粒結構示意圖

表1 不同薯塊再生培養基的激素配比
1.2.5 Southern-blot雜交檢測 用SacⅠ酶切轉基因植株DNA,將酶切產物進行瓊脂糖凝膠電泳,經變性、中和,用高鹽轉移法(薩姆布魯克,2002)將膠上的樣品轉移到尼龍膜上,以目的基因P2300-pa-8e為探針,采用地高辛試劑盒進行雜交、洗膜、顯影。
1.2.6 轉基因植株的移栽 將通過Southern-blot雜交檢測的轉基因植株培養15~20 d,煉苗后移入小盆中,放入溫室培養,7 d左右轉入網室培養。
1.2.7 抗蟲試驗 用轉基因小薯與對照小薯分別喂養暗黑鰓金龜幼蟲(3~4日齡)、華北大黑鰓金龜幼蟲(3~4日齡)、黃粉蟲幼蟲和超級大麥蟲幼蟲。暗黑鰓金龜(3~4日齡)、華北大黑鰓金龜(3~4日齡)的幼蟲采用室內殺蟲活性測定(王容燕 等,2007),黃粉蟲、超級大麥蟲的幼蟲采用飼料混合法(張杰 等,2002)進行生物測定。每處理 24頭初孵幼蟲,3次重復,置于光照培養箱中培養,分別于48、72、96 h記錄死蟲數,并計算校正死亡率。

共培養時間的長短對遺傳轉化效率有影響,而且不同物種及外植體材料與農桿菌的最佳共培養時間也不同。從圖2可以看出,早大白和克新18號薯片的共培養時間均在第3天時抗性愈傷組織誘導率最高,分別為92.16%和97.77%。

圖2 共培養時間對遺傳轉化的影響
以MS為基本培養基,以早大白為試材,研究添加IAA和ZT兩種激素對誘導馬鈴薯再生率的影響。試驗結果表明(表2),使用M8培養基時,獲得的出芽率最高,高達 93.55%;而使用M1培養基培養的薯塊出芽率最低,僅有33.33%。因此,本試驗條件下最優薯塊再生培養基為M8(MS+4.0 mg·L-1ZT +1.0 mg·L-1IAA)。

表2 不同激素濃度配比對早大白薯塊生長的影響
馬鈴薯薯塊經培養20~30 d后分化出芽。早大白接種薯塊 36塊,誘導產生再生植株 42株,有19株通過生根階段篩選,抗性植株再生頻率為52.78%;克新18號接種薯塊32塊,誘導產生再生植株54株,有21株通過生根階段篩選,抗性植株再生頻率為65.63%。將抗性植株移入網室,9月收獲薯塊(圖3)。

圖3 農桿菌介導克新18號薯塊遺傳轉化再生植株與小薯的獲得
對早大白和克新 18號所獲得的抗性植株進行PCR鑒定,得到了約500 bp的特異性條帶(圖4),與陽性對照質粒的擴增結果一致,陰性對照沒有特異性擴增條帶。PCR檢測結果初步表明,P2300-pa-8e基因已整合到受體基因組中。

圖4 抗性植株PCR檢測
將PCR檢測呈陽性的植株進行Southern-blot雜交,使用SacⅠ對轉基因植株DNA進行酶切,在5株早大白、10株克新18號PCR陽性植株中,4株早大白、6株克新18號有雜交信號(圖5),其中4株為雙拷貝,6株為單拷貝。不同植株外源基因插入位點不同,說明不同植株之間是相對獨立的轉基因植株。

圖5 轉化植株Southern-blot雜交檢測
以非轉基因馬鈴薯為對照,測定P2300-pa-8e基因表達產物對暗黑鰓金龜、華北大黑鰓金龜、黃粉蟲、超級大麥蟲幼蟲的毒力。結果表明,對暗黑鰓金龜、華北大黑鰓金龜齡幼蟲7 d的校正死亡率分別為26.38%、34.72%;14 d的校正死亡率分別為47.22%、55.56%;而對黃粉蟲、超級大麥蟲幼蟲均未表現活性。
選擇馬鈴薯微型薯作為外植體,遺傳轉化過程中具有再生速度快、出芽率高、易于操作等優點。
培養基中激素的組成和濃度是影響植株再生的關鍵,生長素和分裂素比例合適可以提高胚狀體發生頻率。從諸多馬鈴薯再生培養的報道中可以看出,所使用的外源激素大相徑庭(張寧等,2004),用一種或幾種培養基并不適合所有的品種。因此,需針對不同基因型選擇誘導再生的激素種類和濃度。本試驗使用MS+4.0 mg·L-1ZT+1.0 mg·L-1IAA為薯塊再生培養基時獲得的出芽率最高,高達93.55%。
適當的共培養時間能提高轉化效率,本試驗結果表明,共培養時間以外植體周圍剛出現白色菌落時為最佳(一般共培養2~3 d),早大白和克新18號最佳共培養時間均為3 d。這樣既可提高轉化頻率,又易于去除農桿菌。達到最佳生長狀態的共培養時間則由農桿菌菌液的生長狀態、菌液濃度、外植體類型及培養條件等決定。
對誘導生根的40株馬鈴薯抗性植株進行PCR檢測,有14株呈PCR陽性反應,但都出現了非特異性擴增條帶,其原因可能是:① 引物與靶序列不完全互補或引物聚合形成二聚體。② Mg2+離子濃度過高、退火溫度過低,及PCR循環次數過多。③ 酶的質和量,有些來源的酶易出現非特異條帶,而另一來源的酶則不出現;酶量過多有時也會出現非特異性擴增。
經Southern-blot檢測,有10株為轉基因植株,表明在本試驗中存在假轉化體。分析原因可能有:① 外植體的表層細胞穩定表達外源選擇抗性基因,為其他一些非轉化細胞提供了一道屏障,逃避了選擇壓力的影響而繼續分裂和分化。② T-DNA進入細胞后并沒有整合到受體基因組中,而是以游離狀態存在,導致PCR呈陽性反應。因此只有進行植物基因組的Southern-blot分析,才可以準確地了解外源基因在轉化植株基因組中的整合情況。
本試驗通過對薯塊的抗蟲試驗,結果表明轉基因馬鈴薯對鱗翅目害蟲黃粉蟲、超級大麥蟲無活性,對鞘翅目害蟲暗黑鰓金龜和華北大黑鰓金龜表現出抗性,為馬鈴薯抗性品種的培育提供了新的材料和方法。
叢培琳,盧翠華,邸宏,石瑛,張麗莉,姜麗麗,李文濱.2008.Bt-CryV基因對馬鈴薯的遺傳轉化.東北農業大學學報,39(9):16-20.
姜麗麗,邸宏,林忠平,胡鳶雷,吳韓英,崔少彬,姜麗靜,盧翠華.2009.藍銅蛋白類似基因BcBCP1轉化馬鈴薯及其抗旱性的改良.中國蔬菜,(2):7-11.
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