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環介導等溫擴增檢測弓形蟲方法的建立

2011-08-20 10:39:54陳道楨葛海燕徐蘭蘭潘淑靜
中國實驗診斷學 2011年10期
關鍵詞:體系檢測

陳道楨,許 飛,葛海燕,徐蘭蘭,潘淑靜,朱 斌*

(1.南京醫科大學附屬無錫婦幼保健院中心實驗室,江蘇無錫214002;

2.蘇州大學基礎醫學與生物科學學院醫學遺傳研究室,江蘇蘇州 215123)

弓形蟲病(Toxoplasmosis)是由剛地弓形蟲(Toxoplasma gondii,TOX)引起的人獸共患寄生蟲病,孕婦感染弓形蟲常致胎兒畸形、流產、死胎。目前普遍采用ELISA檢測弓形蟲感染,但敏感性較低且特異性不足;以PCR為基礎的分子生物學技術檢測雖然快速、靈敏,但普通PCR假陽性太高。LAMP是Notomi等[1]發明的一種新型核酸擴增技術,具有靈敏度高,特異性強,操作簡單等優點,本研究在建立并優化LAMP定性檢測弓形蟲的基礎上,首次建立了應用SYBR Green I定量檢測及不需電泳的直接觀察方法。

1 材料與方法

1.1 標本來源剛地弓形蟲RH株(國際強毒代表株)由南京醫科大學寄生蟲教研室王勇教授提供;57例孕婦外周血標本由蘇州市立醫院和無錫婦幼保健院提供,抽取靜脈血,EDTA抗凝,-20℃保存。

1.2 主要試劑20×SYBRGreen I購自上海捷瑞公司,限制性內切酶SacI購自TaKaRa公司,Betaine和MgSO4購自Sigma公司,Bst DNA聚合酶購自New England Biolabs公司。

1.3 引物設計根據GenBank中弓形蟲B1基因序列(Accession No:AF179871),利用在線設計軟件(http://primerexplorer.jp/e/)設計 LAMP引物,同時設計用于克隆用PCR引物,LAMP擴增區包含于克隆片段中,引物由上海博彩生物公司合成。見表1。

1.4 基因組制備及弓形蟲B1基因重組質粒的構建抽取腹腔注射弓形蟲速殖子感染3天的小鼠腹腔液200μ l,PBS洗滌,沉淀加入細胞裂解液 ,混合后55℃水浴過夜,經典苯酚氯仿法抽提總DNA。PCR擴增弓形蟲B1基因片段大小為351bp,回收PCR產物后與pBS-T載體進行A-T連接、轉化,篩選出陽性重組質粒,送上海生物工程有限公司測序鑒定,測得OD260值,計算拷貝數。

表1 LAMP所用的引物及克隆用PCR的引物

1.5 LAMP法擴增體系的建立總反應體積25 μ l,引物濃度為FIP、BIP各1.6 mM;B3、F3各0.2 mM,其他反應成分為0.5 mM dNTPs,0.4M Betaine,20 mM Tris-HCl(pH8.8),10 mMKCl,10 mM(NH4)2SO4,4 mM MgSO4,0.1%的Triton X-100,以構建的弓形蟲B1基因片斷重組質粒為模板,調節模板含量 ,取 5 μ l,約 105拷貝,8U Bst DNA 聚合酶 ,混勻,63℃水浴1小時。2%瓊脂糖凝膠電泳觀察結果。

1.6 LAMP反應體系的特異性從兩個方面對該方法的特異性進行評估:用建立的LAMP方法分別對雙蒸水、弓形蟲基因組DNA、豬肉絳蟲基因組DNA、日本血吸蟲基因組DNA進行擴增,電泳觀察擴增結果;因在LAMP的擴增序列中含有一個Sac I的酶切位點(圖1),對剛地弓形蟲LAMP擴增產物進行特異性的酶切,酶切反應20?l體系,包括LAMP擴增產物 3 μ l,10 ×緩沖液 1 μ l,Sac I 1 μ l(5U),37 ℃消化過夜。

1.7 LAMP反應體系的靈敏性以重組質粒為模板,濃度調整到每反應管分別為103、102、101、100拷貝,進行LAMP反應,結束后2%瓊脂糖凝膠電泳。

1.8 LAMP擴增產物的肉眼觀察將步驟5中LAMP擴增的雙蒸水、弓形蟲基因組DNA、豬肉絳蟲基因組DNA、日本血吸蟲基因組DNA產物保留,向每管加入 20×SYBR Green I 2 μ l,室溫下靜置 5分鐘,然后將其置于紫外光下,觀察顏色變化。

1.9 實時定量LAMP及標準曲線的建立在建立的LAMP擴增弓形蟲體系的基礎上,加入0.4×SYBR Green I,將陽性重組質粒進行10倍倍比稀釋,濃度梯度為107-100拷貝/μ l,分別取5 μ L,63℃反應1小時。以起始模板拷貝數的對數為x軸,以陽性反應時間(time-to-positive,TTP)值為y軸繪制標準曲線。

1.10 LAMP方法檢測孕婦血液標本提取孕婦外周血標本總DNA,用建立的LAMP體系定性檢測,63℃水浴1小時,2%瓊脂糖凝膠電泳。LAMP擴增陽性的外周血標本進行熒光定量LAMP,根據反應的TTP值,由標準曲線外推其弓形蟲DNA含量。

2 結果

2.1 弓形蟲B1基因陽性模板的制備將重組的弓形蟲B1基因陽性質粒送上海生物工程有限公司測序,測序結果與GenBank中弓形蟲B1基因序列進行blast比對(比對結果未顯示),鑒定結果表明為本實驗所需的弓形蟲B1基因630 bp-980 bp(AF 179871),長度為351個bp,以此為建立LAMP反應的陽性模板。

2.1 LAMP反應檢測弓形蟲DNA體系的建立通過對影響LAMP反應幾個主要因素的優化,我們建立了最適的反應體系,利用該體系,可擴增出LAMP產物特有的梯狀條帶。

2.3 LAMP反應體系的特異性用建立的LAMP方法分別擴增雙蒸水、弓形蟲基因組DNA、豬肉絳蟲基因組DNA、日本血吸蟲基因組DNA,僅弓形蟲DNA出現擴增條帶(圖1),進一步對擴增產物進行酶切,梯狀條帶消失,在預期位置出現2條特異條帶(圖2)。

圖1 特異性擴增圖

圖2 LAMP擴增產物酶切圖

2.4 LAMP反應的敏感性檢測調整每反應管質粒分別為103、102、101、100拷貝 ,進行 LAMP 反應,如圖3,1、2、3泳道均可見特異梯狀條帶,但亮度漸變暗,4泳道(即反應管中僅有100拷貝)未見特異梯狀條帶。

圖3 LAMP擴增敏感性圖

2.5 LAMP擴增產物顯色反應LAMP擴增后的反應管中加入20×SYBRGreen I 2 μ l,室溫靜止 5分鐘后紫外光下觀察顏色變化(圖略),只有弓形蟲基因組DNA的擴增產物線顯綠色,而2、3、4管的擴增產物未變成綠色。

2.6 實時定量LAMP及標準曲線的建立反應結束后制作標準曲線,如圖4所示,在模板濃度為105-101拷貝/μ l區間內,TTP值與相應起始模板拷貝數之間有良好的相關性,相關系數0.929,擴增效率0.961。

1.7 LAMP方法檢測孕婦外周血標本在57例孕婦外周血標本中,LAMP定性檢測發現2例陽性,進一步對這2例陽性標本進行定量檢測,發現其TTP值分別是24.3和24.6,參照標準曲線,推算其濃度均約為103拷貝/μ l。

3 討論

圖4 熒光定量LAMP擴增標準曲線圖

本實驗選用的B1基因,是弓形蟲基因組中一個串聯重復的2.2 kb大小的片段,拷貝數大約35個,高度保守,是目前最為理想的靶基因選擇之一。本實驗首先制備弓形蟲B1基因重組質粒,不但可提供建立體系的陽性模板,同時還利于體系靈敏度的確定,省去了弓形蟲速殖子計數的繁瑣[2],模板量的確定更簡單、準確。

溫度、Betaine濃度和Mg2+濃度是影響LAMP反應三個最重要的因素,本實驗亦從這三個方面進行優化,發現Mg2+濃度影響最大,4 mM時效果最好,而溫度和Betaine濃度影響較小,與現大部分文獻報道的溫度或Betaine濃度是影響LAMP最主要因素不同[1,3],我們卻發現Mg2+濃度對體系影響最大,En等[4]在建立偽狂犬病病毒檢測方法時亦發現類似的現象,可見在LAMP方法建立時按常規僅改變溫度或Betaine濃度并不一定能得到滿意結果。

LAMP的四條引物識別靶基因的六個特定區域,大大提高了擴增的特異性。如圖2所示,本體系僅弓形蟲DNA出現特有的梯狀條帶,而其他物種DNA擴增陰性,為保證LAMP擴增產物的特異性,需進一步采用酶切鑒定,如圖1所示在擴增區存在一個SacⅠ酶切位點,經SacⅠ酶切后,梯狀條帶消失(圖3),充分證明了我們建立的檢測體系具極高的特異性。

通過建立弓形蟲B1基因重組質粒,可以簡單準確快速地了解LAMP擴增體系的檢測下限,如圖4所示當每反應管模板低至10拷貝時仍可見擴增產物,但100拷貝(即1個拷貝)檢測不到擴增產物,表明我們建立的體系檢測下限為每反應管10拷貝,與李啟明等[5]報道的相一致,表明LAMP檢測靈敏度比常規PCR要高2-3個數量級。

LAMP擴增產物進行瓊脂糖凝膠電泳不僅費時間,且所用的EB是致癌誘變劑,對操作人員有害。為了使 LAMP產物易于觀察,本實驗加入SYBR Green I,然后在紫外燈下直接觀察結果。如圖5所示陽性標本顯綠色,反之無色。該方法簡單易行,特別適合基層單位快速檢測。

LAMP反應使dNTPs轉化為焦磷酸根,而后者又可與Mg2結合生成焦磷酸鎂沉淀,Mori等[6]發現該沉淀的形成與DNA的生成量呈線性關系,且焦磷酸鎂沉淀在400 nm處有吸收峰,依據此原理可使用濁度儀進行LAMP的定量檢測。但是,濁度儀價格昂貴,難以普及。與PCR相似,LAMP產物亦為雙鏈DNA,SYBRGreen I可摻入其中,其信號強度代表了雙鏈DNA分子的數量,而且LAMP在60℃以上反應,與PCR相比,不易產生非特異性產物和二聚體,定量結果更準確。基于以上原理,Cai等[7,8]報道了利用SYBR Green I—LAMP定量檢測血清中的乙型肝炎病毒方法。但與PCR經多個循環擴增不同,LAMP在同一溫度進行,此時采用Ct值反映檢測信號顯然是不適合的,因此引入陽性反應時間(Timeto-positive,TTP)的概念,即擴增產物達到檢測閾值的時間點,類似于實時PCR的Ct值[9]。本實驗也建立了LAMP熒光定量檢測弓形蟲DNA的方法,由圖6可知標準曲線相關系數R2=0.929,擴增效率0.960,表明我們建立的定量方法是可靠的,且具有較高的擴增效率。

為驗證該方法應用價值,我們利用建立的LAMP方法對57例孕婦外周血標本進行檢測,在定性檢測到2例標本有特異擴增,進一步對這2例標本進行定量檢測。結果發現陽性率達3.5%(2/57),與潘衛慶等[10]報道的孕產婦弓形蟲感染率3.44%相近。作為方法的初步應用,雖然檢測的標本數不多,但表明我們建立的方法具有有效、快速、靈敏等優點,適合于基層醫院使用。

總之,本研究建立的定性及定量檢測弓形蟲基因組DNA的LAMP方法,特異性強、敏感性高、簡便快速且低成本,有望在臨床應用發揮一定的作用。對于防止孕婦流產、早產、死胎、胎兒畸形等,以及提高人口素質有著重要的價值和現實意義。

[1]Notomi T,Okayama H,Masubuchi H,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acids Res,2000,28:E63.

[2]楊秋林,張如勝,伍和平等.應用環介導等溫擴增技術檢測弓形蟲[J].中國寄生蟲學與寄生蟲病雜志,2008,26(4):304.

[3]陳宇明,程天印,王曉君.環媒恒溫基因擴增法檢測藤黃微球菌的研究[J].中國病原生物學雜志,2006,1(6):407.

[4]En FX,Wei X,Jian L,et al.Loop-mediated isothermal amplification establishment for detection of pseudorabies virus[J].Virol Methods,2008,151(1):35.

[5]李啟明,馬學軍,周 蕊,等.環介導逆轉錄等溫擴增技術(RTLAMP)在丙型肝炎病毒基因檢測中的應用[J].病毒學報,2006,22(5):334-338.

[6]Mori Y,Nagamine K,Tomita N,et al.Detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by turbidity derived from magnesium pyrophosphate formation[J].Biochem Biophys Res Commun,2001,289(1):150.

[7]楊 勁,蔡 挺,徐 岱,等.乙型肝炎病毒DNA等溫擴增體系的建立[J].中華檢驗醫學雜志,2006,29(110):1021.

[8]Cai T,Lou G,Yang J,et al.Development and evaluation of real-time loopmediated isothermal amplification for hepatitis B virus DNA quantification:a new tool forHBV management[J].J Clin Virol,2008,41(4):270.

[9]Higuchi R,Fockler C,Dollinger G,et al.Kinetic PCR analysis:real-time monitoring of DNA amplification reactions[J].Biotechnology,1993(11):1026.

[10]潘衛慶,湯林華.分子寄生蟲學[M].上海:上海科學技術出版社,2004.150.

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