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基因芯片技術(shù)檢測結(jié)核分枝桿菌對(duì)利福平和異煙肼耐藥性的研究

2012-01-20 09:02:26康麗菲朱桂云李秀武許志明李曉霞安曉穎劉娜
河北醫(yī)藥 2012年16期
關(guān)鍵詞:耐藥檢測

康麗菲 朱桂云 李秀武 許志明 李曉霞 安曉穎 劉娜

目前,用于結(jié)核分枝桿菌耐藥性的檢測方法主要以培養(yǎng)為基礎(chǔ)的絕對(duì)濃度法或比例法,需要2~3個(gè)月才能得到結(jié)果,延誤了患者及時(shí)準(zhǔn)確用藥,因此不能完全滿足臨床需要。創(chuàng)建快速、簡便、準(zhǔn)確的檢測方法對(duì)臨床治療有積極意義。基因芯片技術(shù)正是為了滿足這種需求,用于結(jié)核分枝桿菌耐藥性檢測,對(duì)輔助用藥有重要意義。

1 材料與方法

1.1 材料 收集我院臨床診斷結(jié)核病標(biāo)本21例,包括痰13例,肺泡灌洗液6例,傷口分泌物2例。均經(jīng)過培養(yǎng)得到分離菌液。

1.2 儀器與試劑 ExtractorTM36核酸提取儀,Hybset基因微陣列芯片雜交盒BioMixerTMII,PCR擴(kuò)增儀TC-25/H,離心機(jī)和離心干燥芯片的容器SliderWasherTM8,微陣列芯片掃描儀Lux-Scan 10K-B,基因芯片(利福平檢測rpoB基因,異煙肼檢測katG和inhA基因)及洗液SSC和SDS,核酸提取液,PCR擴(kuò)增試劑1、2、3,雜交緩沖液,均購自北京博奧生物有限公司。

1.3 方法 痰及肺泡灌洗液樣本處理:向盛有痰樣的無菌盒中加入1~2倍4%NaOH,震蕩混勻,15~20 min后加入pH值6.8磷酸緩沖液混勻,離心后去上清,沉淀再加入0.5~1 ml磷酸緩沖液混勻,接種,培養(yǎng)。分泌物樣本處理:加入1~3倍體積4%H2SO4,混勻,靜置20~25 min,接種,培養(yǎng)。所有標(biāo)本進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)后,一部分繼續(xù)做藥敏試驗(yàn)檢測,一部分直接做基因芯片檢測。培養(yǎng)后基因芯片技術(shù)檢測的過程:培養(yǎng)后,吸取≥1個(gè)麥?zhǔn)蠞岫鹊木鷳乙?0~20 μl,于含核酸提取液的核酸提取管中,使用核酸提取儀快速震蕩5 min,95℃水浴5 min,5 000 r/min離心1 min,得到的核酸擴(kuò)增,每個(gè)樣品進(jìn)行3管PCR反應(yīng),將 PCR 擴(kuò)增試劑 1、2、3 分別按 18 μl/管分裝于200 μl離心管或八連管中,再加入模板DNA各2 μl于3管中,進(jìn)行擴(kuò)增(擴(kuò)增程序37℃ 10 min 1個(gè)循環(huán),94℃ 10 min 1個(gè)循環(huán),94℃ 15 s→ 60℃ 30 s →72℃ 40 s,45 個(gè)循環(huán),94℃30 s→72℃60 s,10個(gè)循環(huán),72℃ 7 min 1個(gè)循環(huán),4℃ 1個(gè)循環(huán)),(PCR產(chǎn)物1為對(duì)照產(chǎn)物,PCR產(chǎn)物2為rpoB基因的擴(kuò)增產(chǎn)物,與利福平微陣列相對(duì)應(yīng),PCR產(chǎn)物3為KatG基因及inhA基因啟動(dòng)子的擴(kuò)增產(chǎn)物,與異煙肼微陣列相對(duì)應(yīng))。

將雜交緩沖液9 μl/管,分裝于2管中,將PCR產(chǎn)物1和2各3 μl放于雜交緩沖液的管中(雜交反應(yīng)混合物R檢測利福平),PCR產(chǎn)物1和PCR產(chǎn)物3各3 μl放于雜交緩沖液的另一管中(雜交反應(yīng)混合物H檢測異煙肼),將雜交反應(yīng)混合物加熱至95℃,再變性5 min后立即放于冰水混合物中3 min。提前向雜交盒中加入200 μl的蒸餾水,放好芯片及蓋片預(yù)熱50℃。將雜交反應(yīng)混合物從冰浴中取出,經(jīng)雜交盒蓋片的加樣孔加入13.5 μl雜交反應(yīng)物,微陣列1和3加入雜交反應(yīng)混合物R,微陣列2和4加入雜交反應(yīng)混合物H,立即把密封好的雜交盒放入雜交儀中50℃,120 min,再進(jìn)行芯片洗滌(洗液Ⅰ:依次將20*SSC、蒸餾水、10%SDS,按照 10∶88∶2的比例混合,洗液Ⅱ:將20*SSC、蒸餾水按1∶99的比例混合,洗液Ⅰ清洗1次,30℃,120 s,洗液Ⅱ清洗2次,30℃,60 s)與甩干,最后上機(jī)掃描。

2 結(jié)果

2.1 利福平耐藥檢測 21例中,利福平rpoB基因10例突變型(圖1),10例野生型(圖 2),1例無法判讀??偼蛔兟?7.6%,其中9例為531位點(diǎn)的(C-T)突變,1例526位點(diǎn)的(CG)突變。與藥敏實(shí)驗(yàn)的符合率為81.0%。利福平的11例耐藥株中,基因芯片檢測8例為突變型,突變率72.7%,在利福平的10例敏感株中,基因芯片檢測2例為突變型,突變率20.0%。

2.2 異煙肼耐藥檢測 21例中,異煙肼基因有6例突變型,15例野生型(圖3),總突變率28.6%,其中4例為KatG 315(G-C)突變(圖4),占 66.7%,2例為 inhA-15(C-T)突變(圖 5),占33.3%。與藥敏實(shí)驗(yàn)的符合率為90.5%。在異煙肼的6例耐藥株中,基因芯片檢測5例為突變型,突變率83.3%,在異煙肼的15例敏感株中,基因芯片檢測1例為突變型,突變率6.7%。

圖1 利福平ropB突變

圖2 利福平野生型

圖3 異煙肼野生型

圖4 異煙肼katG突變

圖5 異煙肼inhA突變

3 討論

結(jié)核病的臨床診療中,利福平和異煙肼是抗結(jié)核的一線藥物,但近幾年隨著結(jié)核病的發(fā)展,結(jié)核分支桿菌對(duì)藥物的抗藥性逐漸增強(qiáng)。結(jié)核分支桿菌的耐藥性是由相關(guān)基因突變引起的。因此一線藥物的耐藥性檢測對(duì)于臨床治療結(jié)核病有積極意義。傳統(tǒng)藥敏實(shí)驗(yàn)檢測結(jié)核耐藥有一定的缺陷,如耐藥性的界限不統(tǒng)一,時(shí)間較長,結(jié)核菌培養(yǎng)期間可能發(fā)生基因突變等。難以滿足真正快速檢測的需要。基因芯片技術(shù)能快速準(zhǔn)確的檢測結(jié)核桿菌耐藥性,將檢測時(shí)間2~3個(gè)月縮短到2 d。

基因芯片是指將大量不同的生物信息分子(如寡核苷酸、DNA或cDNA探針等)以高度密集的方式,有序地固定在固相支持物(玻璃片)上形成微陣列。當(dāng)熒光標(biāo)記的靶分子與芯片上的探針分子結(jié)合后,用激光共聚焦熒光掃描對(duì)熒光信號(hào)的強(qiáng)度進(jìn)行檢測,從而對(duì)雜交結(jié)果進(jìn)行量化分析。

結(jié)核分枝桿菌利福平耐藥主要是由于其作用靶分子RNA多聚酶β亞單位的編碼基因rpoB突變所致,且突變一般發(fā)生在507位至533位27個(gè)氨基酸密碼子組成的區(qū)域內(nèi)[1]。其作用機(jī)制是通過與結(jié)核分枝桿菌RNA聚合酶的β亞單位結(jié)合,干擾轉(zhuǎn)錄的開始和RNA的延伸。其中最常見的突變位點(diǎn)是531位絲氨酸和526位組氨酸[2],并且531位點(diǎn)突變>526位點(diǎn)位點(diǎn)[3]。本實(shí)驗(yàn)中利福平的檢測基因?yàn)閞poB,21例樣本中有10例突變,總突變率為47.6%,與藥敏實(shí)驗(yàn)的符合率為81.0%,低于何敏等[4]的研究結(jié)果,其符合率為94.29%。其中531位點(diǎn)突變占90.0%,526位點(diǎn)突變占10%,531位點(diǎn)突變明顯高于526位點(diǎn)。11例利福平耐藥株中突變率為72.7%,10例利福平敏感株中突變率為20.0%,而崔振鈴等[5]研究發(fā)現(xiàn)94株利福平耐藥株中突變率為81.9%,46株利福平敏感株中突變率為13.0%。1例無法判讀,可能存在利福平新的突變位點(diǎn)。

結(jié)核分枝桿菌異煙肼耐藥與過氧化氫酶-過氧化物酶的編碼基因katG及烯?;€原酶編碼基因 inhA和 ahpC(羥基過氧化氫還原酶)基因的啟動(dòng)子的缺失或突變有關(guān),其中 katG完全缺失或點(diǎn)突變是最主要的耐藥機(jī)制,最常見的突變位點(diǎn)是315 位 Ser[6]。

本實(shí)驗(yàn)中檢測異煙肼基因突變位點(diǎn)KatG 315和inhA-15,21例樣本中總突變率為28.6%,而低于謝士達(dá)等[7]的研究結(jié)果,其異煙肼耐藥總突變率為35.5%。本實(shí)驗(yàn)中KatG 315突變占66.7%,稍高于與謝士達(dá)的結(jié)果(62.5%)。大致驗(yàn)證了異煙肼耐藥主要是KatG突變。本實(shí)驗(yàn)中基因芯片與藥敏實(shí)驗(yàn)的異煙肼符合率為90.5%。

總之,用基因芯片檢測結(jié)核分枝桿菌耐利福平和異煙肼的基因突變,快速,準(zhǔn)確,敏感性高,特異性強(qiáng)。對(duì)臨床及時(shí)準(zhǔn)確進(jìn)行抗結(jié)核治療具有重要的臨床意義。

1 Garcia de Viedma D,del Sol Diaz Infantes M,Lasala F,et al.New realtime PCR able to detect in a single tube multiple rifampin resistance mutations and highlevel isoniazid resistance mutations in Mycobacterium tuberculosis.J Clin Microbiol,2002,40:988-995.

2 黃海榮,金奇,陳曦,等.中國結(jié)核分枝桿菌rpoB基因突變特點(diǎn).中華結(jié)核和呼吸雜志,2001,24:231-235.

3 丁金風(fēng),楊渝珍,張先恩主編.基因分析核生物芯片技術(shù).第1版.武漢:湖北科學(xué)技術(shù)出版社,2004.294.

4 何敏,曾爾良,鄭艷燕,等.利用基因芯片檢測結(jié)核分枝桿菌及其利福平耐藥性的研究.中華流行病學(xué)雜志,2003,24:385-388.

5 崔振鈴,景奉香,胡忠義,等.基因芯片檢測結(jié)核分枝桿菌利福平和異煙肼耐藥性研究.中華結(jié)核和呼吸雜志,2004,27:439-441.

6 李桂蓮,王擷秀,趙德福.結(jié)核分枝桿菌耐藥基因的研究進(jìn)展.中國慢性病預(yù)防與控制,2006,14:377-379.

7 謝士達(dá),劉永成,張鳳池,等.基因芯片技術(shù)快速檢測結(jié)核分支桿菌異煙肼、利福平耐藥性.臨床肺科雜志,2008,13:147-149.

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