張建新,劉 娜,何桂梅,郭 倩
(西北農(nóng)林科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 楊凌 712100)
大麥蟲超氧化物歧化酶分離純化及性質(zhì)研究
張建新,劉 娜,何桂梅,郭 倩
(西北農(nóng)林科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 楊凌 712100)
目的:探討大麥蟲超氧化物歧化酶(SOD)分離純化條件及其性質(zhì),為大麥蟲利用提供科學(xué)依據(jù)。方法:以大麥蟲為原料,經(jīng)鹽析沉淀、DEAE-Sepharose FF陰離子交換柱層析和Sephadex G-75凝膠過濾層析等純化, 變性聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)方法對蛋白質(zhì)的組分進行分離并確定其分子質(zhì)量,原子吸收光譜儀鑒定酶的類型。結(jié)果:獲得了一種酶比活力較高的大麥蟲SOD,酶的純化倍數(shù)為68.54倍,分子質(zhì)量為37.30kD,屬于含銅鋅超氧化物歧化酶(Cu,Zn-SOD),且在278nm波長處有紫外吸收峰,穩(wěn)定性較好,最適溫度為40℃,最適pH值為6.0,對H2O2、β-巰基乙醇試劑十分敏感,受氯仿-乙醇混合液(3:5,V/V)的影響較小。結(jié)論:大麥蟲SOD具有較高的酶比活力,穩(wěn)定性好,具有較高的利用價值。
大麥蟲;超氧化物歧化酶;分離純化;性質(zhì)
超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)是一類專一的催化超氧陰離子自由基(O2-·)發(fā)生歧化反應(yīng)的金屬酶[1],按其結(jié)合的金屬離子不同,可分為Fe-SOD、Mn-SOD、Cu,Zn-SOD類型,具有抗癌、抗輻射、抗衰老等作用[2],在農(nóng)業(yè)、食品與化妝品工業(yè)上有廣泛的應(yīng)用價值。大麥蟲(Zophobas morio L.)俗稱超級面包蟲,屬于鞘翅目,擬步甲科昆蟲[3],與家蠅、黃粉蟲幼蟲、蟋蟀、蠶蛹、蠟蟲幼蟲等比較,大麥蟲的蛋白質(zhì)、氨基酸的含量均居首位,且大麥蟲幼蟲體內(nèi)的SOD比活力可達116.747U/mg[4],具有較高的抗氧化、抗衰老價值,是一種不可多得的優(yōu)質(zhì)蛋白源昆蟲[5-7]。目前對洋蟲[8]、黃粉蟲[9-11]、家蠶[12]、蜂蛹[13-14]、中華蚱蜢[15]等昆蟲SOD的研究較為成熟,國內(nèi)外還尚未見有關(guān)大麥蟲SOD性質(zhì)的研究報道。因此研究大麥蟲幼蟲中SOD的性質(zhì),有助于深入了解大麥蟲抗氧化和防衰老等作用,為大麥蟲的利用提供科學(xué)依據(jù)。
1.1 材料與試劑
大麥蟲幼蟲購自江蘇省南通市周氏生物科技有限公司;液氮冷凍備用。
SOD檢測試劑盒 南京建成生物工程技術(shù)研究所;蛋白質(zhì)標準(D530S) TaKaRa生物工程有限公司。
Sephadex G-75、DEAE-Sepharose FF、丙烯酰胺、N,N-甲叉雙丙烯酰胺、過硫酸銨、十二烷基硫酸鈉(SDS)、N,N,N',N'-四甲基乙二胺(TEMED)、Tris、甘氨酸 西安沃爾森生物科技公司;所有試劑均為分析純。
1.2 儀器與設(shè)備
PKl21R高速冷凍離心機 意大利ALC公司;UV-1240紫外-可見分光光度計 日本島津公司;iCE3000原子吸收光譜儀 美國熱電公司;760CRT型雙光束紫外-可見分光光度計 上海精密科學(xué)儀器有限公司;層析柱(50cm×20mm) 上海雅東玻璃制品有限公司。
1.3 方法
1.3.1 大麥蟲SOD的分離純化
稱取10g大麥蟲幼蟲,按固液比1:35(m/V)的比例加入pH7.43、0.26mol/L的磷酸鹽溶液勻漿后,靜置提取4h,然后在65℃條件下加熱處理20min,在8000×g、4℃條件下離心20min后,在上清液中加入固體(NH4)2SO4至40%飽和度后于4℃靜置過夜,4000×g離心100min,上清液繼續(xù)加入固體(NH4)2SO4至80%飽和度,于4℃靜置4h后4000×g離心10min,沉淀用少量0.05mol/L pH7.5的Tris-HCl緩沖液溶解。然后裝入透析袋中對雙蒸水透析72h,用聚乙二醇(PEG)濃縮至3mL,得到粗酶液。將粗酶液離心,采用DEAE-Sepharose FF陰離子交換柱0~1mol/L NaC1濃度梯度洗脫,分段收集并檢測各蛋白峰的SOD比活力。合并活力峰,透析除鹽,用PEG濃縮后的樣品經(jīng)Sephadex G-75凝膠過濾層析(平衡體積300mL,上樣量5mL,流速0.5mL/min),用5mmol/L(pH7.8)的磷酸鈉緩沖液洗脫,每管收集4mL,收集酶比活力峰。
1.3.2 大麥蟲SOD比活力的測定
參照南京建成生物工程技術(shù)研究所SOD試劑盒(A001-1)說明書進行測定。
1.3.3 大麥蟲SOD的酶學(xué)特性
1.3.3.1 大麥蟲SOD的熱穩(wěn)定性
將純化后的大麥蟲SOD酶液保持其他條件不變,分別置于10~90℃條件下保溫,測定SOD比活力,觀察溫度對大麥蟲SOD比活力的影響。之后,將純化后的大麥蟲SOD分別置于40、50、60、70℃條件下保溫10~180min,測定SOD剩余酶活力,觀察大麥蟲SOD的熱穩(wěn)定性。

1.3.3.2 大麥蟲SOD的酸堿穩(wěn)定性
將純化后的大麥蟲SOD酶液將其pH值分別調(diào)至4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0,置于室溫條件下10min,測定SOD比活力,觀察大麥蟲SOD的pH值穩(wěn)定性。
1.3.3.3 化學(xué)試劑對SOD比活力的影響
在酶液中分別加入終濃度為1mmol/L H2O2、5mmol/L H2O2、5mmol/L KCN、氯仿-乙醇(3:5,V/V)、0.5% SDS、1.0% SDS和0.01%β-巰基乙醇、0.05%β-巰基乙醇、5mol/L尿素以及含0.5%乙二胺四乙酸(EDTA)的5mol/L尿素,混合均勻,于室溫反應(yīng)30min后,測定溶液的酶比活力,按公式(2)計算化學(xué)試劑對SOD比活力的抑制率。

1.3.4 大麥蟲SOD分子質(zhì)量測定
采用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDSPA GE)方法對蛋白質(zhì)的組分進行分離,以蛋白標準(D530S)為分子質(zhì)量對照,計算大麥蟲SOD的分子質(zhì)量。其中4%濃縮膠、電壓60V、時間30min;15%分離膠、電壓30V、時間180min。電泳結(jié)束后用考馬斯亮藍R-250染色。
1.3.5 大麥蟲SOD的光譜性質(zhì)
用760CRT型雙光束紫外-可見分光光度計對純化后SOD酶液進行全波長吸收光譜掃描,測定其紫外區(qū)的最大吸收波長。
1.3.6 大麥蟲SOD的金屬原子含量鑒定
采用iCE3000型原子吸收光譜儀,測定純化后的大麥蟲SOD酶液中Cu、Zn、Mn、Fe元素的含量[16]。計算每個酶分子中含有的金屬原子的種類及數(shù)量,從而確定大麥蟲幼蟲SOD的類型。
1.3.7 蛋白質(zhì)含量的測定
采用Bradford法[17]測定蛋白質(zhì)含量。
2.1 大麥蟲SOD的分離純化
從大麥蟲中提取SOD,經(jīng)鹽析沉淀、DEAE-Sepharose FF陰離子交換柱層析和Sephadex G-75凝膠過濾層析等純化步驟,獲得了比活力及純度都比較高的SOD,其結(jié)果見表1。

表1 大麥蟲SOD的純化結(jié)果Table 1 Purification of SOD from Zophobas morio L. larvae
2.2 溫度對大麥蟲SOD比活力的影響

圖1 溫度對大麥蟲SOD比活力的影響Fig.1 Effect of temperature on the activity of SOD
圖1 表示將酶液在10~90℃條件下保溫10min時,溫度對大麥蟲SOD比活力的影響。在10~60℃,溫度對SOD比活力的影響不大,當溫度高于70℃時,SOD比活力急劇下降,達到80℃,SOD比活力只有原來的13%;大麥蟲幼蟲SOD的最適溫度為40℃,此時酶比活力為231.2U/mg。
2.3 保溫時間對大麥蟲SOD剩余酶活力的影響

圖2 保溫時間對大麥蟲SOD剩余酶活力的影響Fig.2 Effect of time on the residual activity of SOD
圖2 表示40~70℃條件下,不同保溫時間對大麥蟲SOD剩余酶活力的影響,在40、50、60℃條件下保溫180min,其SOD剩余酶活力變化趨勢無差異,且保溫時間對SOD剩余酶活力的影響較小,在70℃條件下,SO D剩余酶活力隨時間的延長而急劇下降,在保溫60min時,剩余酶活力僅為原有的5.7%。
2.4 pH值對大麥蟲SOD比活力的影響
由圖3可知。大麥蟲SOD比活力在pH6~8之間比較穩(wěn)定,pH值小于6.0或大于8.0,其酶比活力會急劇下降,這與文獻報道的其他來源SOD相似。本實驗提取的SOD最適pH值為6.0。

圖3 pH值對大麥蟲SOD的影響Fig.3 Effect of pH on the activity of SOD
2.5 化學(xué)抑制劑對SOD比活力的影響

表 2 化學(xué)抑制劑對SOD比活力的影響Table 2 Effect of chemical reagents on the activity of SOD
由表2可知,大麥蟲SOD對H2O2試劑十分敏感,1mmol/L H2O2即可使其全部失活;5mmol/L KCN 可使酶比活力全部喪失;SDS可使降低SOD比活力,且隨SDS含量的增加而明顯降低;0.05% β-巰基乙醇可使大麥蟲SOD比活力嚴重喪失;5mol/L尿素對大麥蟲SOD比活力無明顯影響,說明低濃度的尿素對酶的分子結(jié)構(gòu)影響不大,但加入含0.5%EDTA的5mol/L尿素,可使酶比活力完全抑制,可見金屬輔基對SOD比活力穩(wěn)定起重要作用;大麥蟲SOD受氯仿-乙醇混合液的的影響較小,因此可以判斷出大麥蟲SOD為Cu,Zn-SOD。
2.6 大麥蟲SOD分子質(zhì)量

圖4 大麥蟲SOD的SDS-PAGE分析Fig.4 SDS-PAGE of purified SOD from Zophobas morio L. larvae
由圖4可知,大麥蟲中分離純化的SOD經(jīng)SDS-PAGE得到兩條電泳帶,其中一條帶子質(zhì)量為19.18kD,另一條帶分子質(zhì)量為37.30kD;樣品緩沖液中2% SDS可使SOD的亞基發(fā)生部分解聚而呈現(xiàn)出兩條帶,說明大麥蟲SOD由兩個相同的亞基構(gòu)成。
2.7 大麥蟲SOD的光譜性質(zhì)

圖5 大麥蟲SOD的紫外吸收光譜Fig.5 Ultraviolet absorption spectrum of SOD from Zophobas morio L. larvae
本實驗使用紫外-可見分光光度計對經(jīng)Sephadex G-75純化的大麥蟲SOD在200~400nm范圍內(nèi)掃描,結(jié)果如圖5所示,該酶的紫外吸收峰在278nm。
2.8 大麥蟲SOD的金屬原子含量鑒定
經(jīng)測定,大麥蟲SOD中Cu、Zn、Fe以及Mn的含量分別為Cu 3569.84mg/kg、Zn 3606.86mg/kg、Fe 190.3mg/kg、Mn 3.664mg/kg,計算得出每個大麥蟲幼蟲SOD分子包含2.08個Cu原子,2.06個Zn原子;而Fe、Mn原子的含量極微。因此可以根據(jù)大麥蟲SOD分子中含有的金屬原子的種類及數(shù)量確定大麥蟲SOD的類型為Cu,Zn-SOD。
本研究采用DEAE-Sepharose FF陰離子交換柱層析和Sephadex G-75凝膠過濾層析等純化方法獲得了酶比活力較高的大麥蟲SOD,其比活力為7044.61U/mg,純化倍數(shù)為68.54倍;經(jīng)鑒定該酶為Cu,Zn-SOD,其分子質(zhì)量為37.30kD,與文獻[18]報道的Cu, Zn-SOD的分子質(zhì)量(30~39kD)相當。該酶在278nm波長處有紫外吸收峰,這與文獻報道的Cu, Zn-SOD的紫外吸收峰在250~270nm之間稍有差異,可能是大麥蟲幼蟲SOD含有一定量的酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸所致,因此對大麥蟲幼蟲SOD的氨基酸種類及含量有待進一步研究。
[1]袁勤生. 超氧化物歧化酶[M]. 上海: 華東理工大學(xué)出版社, 2009: 3-6.
[2]方允中, 李文杰. 自由基與酶[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 1989: 163-164.
[3]王仲禮. 從動物血提取SOD[J]. 肉類研究, 2003, 17(1): 42-43.
[4]劉娜, 張建新, 何桂梅, 等. 響應(yīng)面法優(yōu)化大麥蟲SOD提取條件的研究[J]. 西北農(nóng)業(yè)學(xué)報, 2011, 20(3): 120-124.
[5]梁迪思, 王飛, 鄭家概, 等. 北蟲草不同部位超氧化物歧化酶(SOD)酶活力的比較[J]. 遼寧中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報, 2012, 14(2): 183-184.
[6]李東旭, 吳蕾, 陳慶森, 等. 雙水相體系提取SOD的研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2009, 30(7): 190-192.
[7]采克俊, 張麗倩, 劉莉. 大麥蟲養(yǎng)殖技術(shù)[J]. 現(xiàn)代農(nóng)業(yè)科學(xué), 2008, 15 (5): 38-39.
[8]董龍. 洋蟲超氧化物歧化酶的最佳提取條件[J]. 東北林業(yè)大學(xué)學(xué)報, 2009, 37(4): 69-70.
[9]吳蕾, 陳慶森, 劉晉生. 黃粉蟲中提取純化超氧化歧化酶的工藝研究[J]. 食品科學(xué), 2007, 28(9): 281-283.
[10]杜開書, 呂文彥, 柴立英. 黃粉蟲蛹超氧化物歧化酶的提取及性質(zhì)研究初報[J]. 湖北農(nóng)業(yè)科學(xué), 2008, 47(7): 828-830.
[11]吉志新, 王長青, 史鳳玉, 等. 兩種色型黃粉蟲雜交后代過氧化物酶同工酶及超氧化物歧化酶比活力的比較[J]. 河北科技師范學(xué)院學(xué)報, 2008, 22(2): 18-22.
[12]唐云明. 家蠶超氧化物歧化酶分離提純及其基因克隆[D]. 重慶: 西南農(nóng)業(yè)大學(xué), 2001.
[13]杜開書, 柴立英, 郎劍鋒. 意大利蜜蜂蛹超氧化物歧化酶提取技術(shù)研究[J]. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2006, 34(23): 6132-6133.
[14張海生, 陳錦屏, 武巧莉, 等. 蜂蛹超氧化物歧化酶(SOD)的提取及理化性質(zhì)研究[J]. 食品科學(xué), 2007, 28(10): 192-195.
[15]周艷利, 李建科, 羅生明. 中華蚱蜢超氧化物歧化酶的提取純化研究[J]. 陜西農(nóng)業(yè)科學(xué), 2007, 54(2): 39-41.
[16]李琛. 漢中綠茶中銅、鐵、錳、鋅、氟含量的測定[J]. 化工技術(shù)與開發(fā), 2012, 41(2): 40-42.
[17]BRADFORD M W. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding[J]. Ana Biochem, 1976, 72(1/2): 248-254.
[18]張?zhí)m杰, 候冬巖, 辛廣, 等. 雞紅細胞Cu,Zn-SOD的純化及部分性質(zhì)研究[J]. 食品科學(xué), 2008, 29(2): 266-270.
Purification and Characterization of Superoxide Dismutase from Zophobas morio L. Larvae
ZHANG Jian-xin,LIU Na,HE Gui-mei,GUO Qian
(College of Food Science and Engineering, Northwest A & F University, Yangling 712100, China)
Objective: To explore the purification and properties of superoxidae dismutase (SOD) from Zophobas morio L. larvae. Methods: SOD were obtained from Zophobas morio L. larvae by salting-out, DEAE-Sepharose FF column chromatography and Sephadex G-75 column chromatography. SDS-PAGE was used to determine its molecular weight and atomic absorption spectrometer was used to identify it types. Results: SOD with highly specific activity was obtained. The purification factor was 68.54. The purified SOD was identified as Cu, Zn-SOD with molecular weight of 37.30 kD. It had an absorption peak at 278 nm and good stability. Its optimal temperature and pH were 40 ℃ and 6.0, respectively. Its high sensitivity to H2O2 and βmercaptoethanol was found , while a mixture of CHCl3and CH3CH2OH (3:5, V/V) had little effect on its activity. Conclusion: The SOD extracted from Zophobas morio L.larvae has high enzymatic activity, stability and application potential.
Zophobas morio L.;SOD;purification;characterization
Q969.481.1
A
1002-6630(2012)11-0215-04
2011-06-03
張建新(1959—),男,教授,碩士,研究方向為食品營養(yǎng)安全與標準化。E-mail:zhangjx59@foxmail.com