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川芎嗪對LPS致心肌細胞損傷的影響及機制研究

2012-07-28 09:57:36丹,尹東,曾姝,何
中國藥理學通報 2012年11期
關鍵詞:劑量實驗檢測

劉 丹,尹 東,曾 姝,何 明

(1.南昌大學醫學院藥理學教研室,2.江西省分子醫學重點實驗室,江西 南昌 330006)

四甲基吡嗪(TMPZ)又名川芎嗪,是從川芎的生物堿中分離得到的有效單體。川芎嗪有良好的心肌保護作用,主要與其具備抗鈣與抗自由基雙重作用有關[1-2]。脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)為革蘭陰性細菌胞壁的重要成分,是引起炎癥反應和休克的關鍵介質之一,常引起全身炎癥反應并可導致多器官功能衰竭,累及心臟。有研究報道[3],LPS可增加心肌細胞NADH氧化酶的表達及過氧化物增殖而導致心肌損傷。鑒于川芎嗪的抗氧自由基作用,我們假設川芎嗪可以保護LPS損傷的心肌細胞,目前尚未見報道。因此,本研究利用LPS誘導心肌細胞損傷,觀察川芎嗪對LPS誘導的心肌細胞損傷的影響,并檢測活性氧(reactive oxygen species,ROS)生成、細胞的氧化應激狀態及NF-κB p65的核移位情況,探討川芎嗪對抗LPS損傷的可能機制。

1 材料與方法

1.1 受試藥品與主要試劑 TMPZ:中國藥品生物制品檢定所,NF-κB p65、β-actin抗體及相應二抗:Santa Cruz;DCHF-DA:Molecular probes;胎牛血清:杭州四季青生物工程材料有限公司;MDA、SOD、GSH-Px檢測試劑盒:南京建成生物工程研究所;胞核-胞質蛋白制備試劑盒:北京普利萊基因技術有限公司;MEM培養基:Gibco BRL;LPS(傷寒菌內毒素脂多糖)、胰酶、HEPES、MTT、增強化學發光印跡試劑、硝酸纖維素膜(Amersham,UK)、丙烯酰胺、PMSF、亮肽素、SDS、亞甲基雙丙烯酰胺、過硫酸銨、TEMED、EDTA和DTT:Sigma公司;其它試劑均為分析純。

1.2 心肌細胞的分離培養 參照以前的實驗方法[4],以出生1~3 d的SD乳鼠心室肌組織為實驗對象,0.1%胰酶消化分離,MEM培養基(含15%胎牛血清)混懸后放CO2培養箱(5%CO2,37℃)孵育2 h去除成纖維細胞,然后分別按5×105cells·well-1、1 ×105cells·well-1接種于 6 孔、96 孔培養板,隔天換培養液,前3 d加入0.1 mmol·L-1Brdu抑制纖維細胞生長。培養4 d隨機分組進行實驗。

1.3 藥物處理 用不同劑量的TMPZ預處理3 h,棄原培養基,用PBS清洗3次,換新的MEM培養基,再加LPS(5mg·L-1)繼續培養6 h,收集細胞進行實驗。每次實驗均分溶劑對照組(正常對照)、LPS處理組及藥物干預組(TMPZ+LPS),每組至少重復6次,TMPZ用生理鹽水溶解。

1.4 細胞存活率 MTT比色法檢測細胞存活率。胰酶消化收集細胞,每組細胞以1×104cells·well-1濃度接種至96孔培養板中。細胞融合至80%左右開始檢測。吸棄原培養基,每孔加入20 μl MTT 溶液(5 g·L-1溶于PBS),37 ℃,4 h,然后每孔加DMSO 150 μl振蕩10 min,使藍色結晶充分溶解,在490 nm波長處測定其光吸收值(OD值)。

1.5 生化檢測 各組處理結束后取上清200 μl,生化自動分析儀檢測LDH活性。

1.6 流式細胞法檢測心肌細胞內ROS含量 實驗結束后,用4℃預冷的PBS洗滌細胞2~3次,加入0.25%胰蛋白酶 (含0.02%EDTA)消化細胞后收集,將配制好的 10 μmol·L-1DCFH-DA 溶液 500 μl重懸細胞,37℃孵育30 min,離心,800 ×g,5 min,棄上清,預冷的PBS洗滌細胞2~3次,制成1×108cells·L-1的懸液,立即進行流式細胞儀檢測,以488 nm為激發波長,530 nm為發射波長。以不加DCFH-DA的一管為陰性對照。

1.7 細胞內丙二醛(MDA)含量、SOD及GSH-Px活性測定 實驗結束后,消化收集心肌細胞,反復凍融破碎細胞,離心后取上清液,按試劑盒說明書進行操作。

1.8 Western blot檢測 實驗結束后,按試劑盒說明書提取心肌細胞核蛋白,同等量蛋白質行SDSPAGE后,電轉膜,分別結合一抗、二抗,最后X線膠片曝光分析。

1.9 數據處理 應用SPSS11.5統計軟件行組間方差分析,各實驗組數據以±s表示。

2 結果

2.1 TMPZ對LPS致心肌細胞損傷的影響 如Fig 1,2 所示,心肌細胞用不同劑量(40、80、120 μmol·L-1)TMPZ 預處理 3 h,加入 10 mg·L-1LPS,心肌細胞的存活率隨TMPZ劑量的增大而升高,LDH值則隨TMPZ劑量的增大而減少,具有明顯的劑量依賴性。

Fig 1 Effects of TMPZ on viability of cardiac cells subjected to LPS-induced injury(±s,n=6)

Fig 2 Effects of TMPZ on LDH activity of cardiac cells subjected to LPS-induced injury(±s,n=6)

2.2 TMPZ劑量依賴性地減少ROS生成 流式細胞儀檢測結果顯示(Fig 3),用10 mg·L-1LPS處理培養的心肌細胞,ROS生成明顯增加(與對照組比,P <0.01),用40 ~120 μmol·L-1TMPZ 預處理心肌細胞3 h,從 40 μmol·L-1TMPZ 開始,ROS 生成明顯降低(與LPS處理組相比,P<0.01)。說明隨著藥物濃度的增加,ROS的生成逐漸減少。

2.3 TMPZ劑量依賴性地抑制NF-κB p65核移位

Western blot結果顯示(Fig 4),用10 mg·L-1LPS處理培養的心肌細胞,核蛋白中NF-κB p65蛋白含量明顯增加(與對照組比,P<0.01),用40~120 μmol·L-1TMPZ 預處理心肌細胞3 h,從40 μmol·L-1TMPZ開始,核蛋白中NF-κB p65蛋白含量明顯降低(與LPS處理組相比,P<0.01)。說明隨著藥物濃度的增加,抑制NF-κB p65蛋白向細胞核的轉移。

2.4 TMPZ劑量依賴性地抑制脂質過氧化,提高抗氧化酶活性 如Fig 5所示,用10 mg·L-1LPS處理培養的心肌細胞,MDA含量明顯增加,SOD及GSH-Px活性下降(與對照組比,P<0.01),用40~120 μmol·L-1TMPZ 預處理心肌細胞 3 h,從 40 μmol·L-1TMPZ開始,MDA 含量開始下降,SOD 及GSH-Px活性增加(與LPS處理組相比,P<0.01)。說明隨著藥物濃度的增加,脂質過氧化被抑制,抗氧化酶活性增加。

3 討論

LPS是革蘭陰性細菌致病的主要因素,它可引起機體的一系列炎癥反應,是一種重要的致炎因子[5]。根據文獻報告[3,6],LPS可增加心肌細胞NADH氧化酶的表達及過氧化物增殖,造成ROS生成增加。ROS具有較高的反應活性,正常情況下,細胞存在抗氧化酶類,包括SOD、GSH-Px等,能夠清除細胞代謝過程中不斷產生的ROS,使得細胞內ROS的生成與清除處于一個相對穩定的水平。但當其生成較多,超過細胞抗氧化酶類的清除水平時,會造成細胞的廣泛損傷,如膜脂質過氧化、蛋白質及核酸損傷等。因此,刺激心肌細胞產生過多的ROS可能是LPS誘導心肌細胞損傷的機制之一。我們的研究證實,LPS處理心肌細胞后,會使得MDA含量升高,SOD、GSH-Px活性下降,ROS含量增加,心肌細胞存活率減少。

Fig 3Effects of TMPZ on ROS production of cardiac cells subjected to LPS-induced injury(±s,n=6).

Fig 4 Effects of TMPZ on nuclear NF-κB p65 protein of cardiac cells subjected to LPS-induced injury by Western blot(±s,n=6)

TMPZ是中藥川芎的主要有效成份之一,許多研究[7-8]均報道川芎嗪有心血管保護作用,并且這種保護作用與其抗氧化作用有關。我們在LPS損傷心肌細胞之前給予不同劑量的TMPZ預處理,發現有明顯的保護作用,且這種保護作用呈劑量依賴性;進一步對TMPZ抗LPS損傷的機制進行研究,發現與抑制 NF-κB 激活有關。眾所周知[9],NF-κB 信號傳導通路被認為是LPS所介導的信號傳導通路中最重要的下游通路。一般情況下,NF-κB為p50/p65異源二聚體,與抑制物IκBα結合成無活性的三聚體存在于細胞質中;一旦受到外界因素刺激時,如大量產生的 ROS,IκBα 磷酸化而迅速降解,NF-κB即被激活,p65由細胞質移位至細胞核,從而調控一系列基因表達[10]。在LPS誘導的心肌細胞損傷中,NF-κB的激活很有可能引起大量炎癥因子如TNF-α、IL-1等的過度表達,從而造成細胞損傷。我們的實驗結果表明,LPS能促進p65的核移位,使p65在核中的表達明顯升高,而TMPZ則呈劑量依賴性抑制p65的核移位,從而起到對抗LPS致心肌細胞損傷的作用。因此,可以推斷川芎嗪對LPS所致的心肌損傷有保護作用,其機制主要是通過減少ROS生成,從而抑制NF-κB的活化,阻止p65的核移位,減少炎癥因子的表達,發揮心肌保護作用。

Fig 5 Effects of TMPZ on content of MDA,SOD and GSH-Px activities of cardiac cells subjected to LPS-induced injury(±s,n=6)

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