丙型肝炎病毒Core蛋白類病毒顆粒的表達及純化

李 祥 鄒立林 呂建新 高基民

(溫州醫學院浙江省醫學遺傳學重點實驗室 浙江省模式生物技術與應用重點實驗室，浙江 溫州 325035)

丙型肝炎病毒Core蛋白類病毒顆粒的表達及純化

李 祥 鄒立林 呂建新 高基民

(溫州醫學院浙江省醫學遺傳學重點實驗室 浙江省模式生物技術與應用重點實驗室，浙江 溫州 325035)

目的 通過PCR將丙肝病毒(HCV)Core與蜂毒素信號肽(Mel)進行融合，構建到pIZ/V5載體上獲得pIZ/V5-Core-Mel表達載體。方法 將pIZ/V5-Mel-core穩定轉染Sf9細胞，經Zeocin抗性篩選，獲得單克隆抗性細胞株。RT-PCR檢測結果表明獲得穩定表達Mel-core的細胞系Sf9-Core。對穩定細胞系Sf9-Core的上清進行離心純化并Western印跡檢測。結果 在上清離心純化的樣品中有HCV Core形成的類病毒顆粒(VLPs)。透射電鏡顯示Core蛋白能自組裝成直徑約30 nm的球形顆粒。結論 該研究成功構建了HCV Core與蜂毒素信號肽的融合蛋白并在Sf9細胞穩定表達，在細胞培養的上清中獲得了VLPs。

丙型肝炎病毒;Core蛋白;類病毒顆粒

納米顆粒作為基因轉運載體，將DNA和RNA等基因治療分子包裹在納米顆粒之中或吸附在其表面，同時也在顆粒表面耦聯特異性的靶向分子，如特異性配體、單克隆抗體等，通過靶向分子與細胞表面特異性受體結合，在細胞攝取作用下進入細胞內，實現安全有效的靶向性基因治療。已有研究表明以納米顆粒為基因轉運載體在基因治療中顯示了良好的運用前景。丙型肝炎病毒歸屬于黃病毒科丙型肝炎病毒屬〔1〕，為有包膜的單股正鏈RNA病毒，基因組全長9.4～9.6 kb，包括一個單一的9 030～9 099 nt的大開放閱讀框，其編碼一個3 010～3 033 aa的多聚蛋白前體〔2～5〕，從N端到C端，HCV蛋白的排列順序為:C-E1-E2-p7-NS2-NS3-NS4A-NS4B-NS5A-NS5B。 電 鏡 下HCV為直徑60～75 nm的顆粒，其表面有8～15 nm的刺突〔6〕，NP-40處理除去包膜后可得直徑為45～55 nm的二十面體的核衣殼〔7，8〕，而核衣殼蛋白就是Core蛋白。HCV Core蛋白是構成病毒粒子的重要成分，同時也扮演著重要的調控病毒本身以及病毒與宿主細胞相互作用的重要角色。本研究利用HCV Core蛋白這種自我組裝成類病毒顆粒的特性，構建了HCV Core與蜂毒素信號肽的融合蛋白并在Sf9細胞穩定表達，同時將形成的類病毒顆粒(VLPs)分泌到細胞外，為其用于藥物和基因轉運的納米顆粒載體研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 細胞系 實驗所使用的昆蟲細胞系為Sf9。Sf9來源于Spodoptera frugiperda(草地夜蛾)卵巢細胞，由中國科學院武漢病毒研究所中國典型培養物保藏中心(CCTCC，武漢)。Sf9傳代培養采用25 cm2的培養瓶以單層細胞的形式多次傳代，培養基為含10%胎牛血清的Grace培養基(Gibco-BRL公司)，培養溫度為27℃。

1.2 主要試劑和儀器 限制性核酸內切酶、核酸分子量Marker，T4 DNA連接酶等及其配套緩沖溶液均購自TaKaRa公司。PCR產物回收試劑盒和質粒純化試劑盒購自V-GENE公司。HCV Core抗體和堿性磷酸酶標記的羊抗小鼠IgG購自深圳晶美生物公司;NBT和BCIP溶液購自碧云天生物公司。

1.3 pIZV5-Mel-Core的構建 以pBRTM/HCV1-3011為模板進行PCR特異性擴增目的片段。上游引物P1:5'GGG GAA TTC ATG AAA TTC TTA GTC AAC GTT GCC CTT GTT TTT ATG GTC GTG TAC ATT TCT TAC ATC TAT GCG ATG AGC ACG AAT CCT AAA C3'，下游引物 P2:5'GGG GCG GCC TAG GCT GAA GCG GGC ACA 3'(斜黑字體為酶切位點，黑粗字體為Mel序列)。PCR條件為:94℃變性5 min，94℃ 45 s，55℃ 45 s，72℃ 50 s，72℃ 聚合延伸5 min，共循環30次。同條件做一管陰性對照。用PCR產物回收試劑盒對PCR產物回收純化，然后與pMD-18T進行連接。用CaCl2法轉化大腸桿菌DH5α，于LB培養基中培養擴增后，用質粒快速提取試劑盒提取質粒用于核酸測序。經測序正確后，用EcoRⅠ和NotⅠ酶切pMD-18TMel-Core質粒回收Mel-Core目的片段，克隆到pIZV5載體的EcoRⅠ和NotⅠ位點，構建成pIZV5-Mel-Core。

1.4 Zeocin對Sf9細胞最小致死濃度確定 在35 mm的培養皿中接種1×106的Sf9細胞，28℃培養過夜;棄去上層培養基，加入2 ml新鮮的培養基，依次加入不同濃度的Zeocin:0、50、200、400和600 μg/ml，每個濃度進行3復孔觀察。28℃培養箱持續培養10～14 d，觀察細胞死亡情況，以高于殺死全部細胞最小Zeocin濃度的一個梯度為篩選濃度。以篩選濃度的一半為克隆細胞維持培養的濃度。

1.5 pIZV5-Mel-Core穩定轉染Sf9細胞 在35 mm的培養皿中接種1×106的Sf9細胞，28℃培養過夜;棄去上層培養基，加入1 ml不含血清的培養液洗滌細胞兩次，再加入1 ml不含血清的培養基于28℃培養0.5 h以上;在細胞室中將1 μg DNA與8 μl cellfectin分別用無血清 Grace稀釋至50 μl，5 min后將DNA加入稀釋后的cellfectin中，每隔5 min輕輕混勻一次，45 min后在聚丙烯管中輕輕加入900 μl不含血清的Grace培養基，混勻。棄去35 mm培養皿中的培養基，加入含有轉染混合物的Grace培養基，28℃溫箱培養;6 h后用含10%血清的Grace培養替換原有的培養基。2 d后將細胞傳代60 mm培養皿中，用10%FBS的 Grace培養基(含600 μg/ml Zeocin)培養細胞，每3天換液，篩選培養2～3 w。利用細胞克隆環獲取細胞克隆，轉入24孔細胞培養板培養。待24孔板內的克隆細胞密度達80%時，依次轉入6孔板、60 mm，100 mm平皿進行擴大培養。平皿內的克隆細胞密度達80%～90%時，改用10%FBS的Grace培養基(含300 μg/ml Zeocin)維持培養細胞。2 w后，凍存部分細胞于液氮中，剩余細胞繼續用用10%FBS的Grace培養基(含300 μg/ml Zeocin)維持培養。

1.6 穩定轉染細胞株Sf9-Core的鑒定 在35 mm的培養皿中接種1×106的穩定轉染細胞Sf9-Core，24 h后收取細胞。總RNA按照Trizol(Gibco-BRL)操作指南進行提取。反轉錄反應采用Promega公司M-MLV反轉錄酶，用oligo(dT)15引物引導第一鏈cDNA的合成。反轉錄的cDNA作為PCR模板，用HCV Core特異性引物P3:5'ATG AGC ACG AAT CCT AAA C 3'和P4:5'TGT CGT GGC GAT TGT AGC ACG 3'進行目的基因的擴增。反應程序為:94℃預變性5 min進入循環過程;94℃變性30 s，55℃ 退火 30 s，72℃ 延伸 1 min，30 個循環。最后以72℃延伸10 min。取3 μl在0.8%的瓊脂糖凝膠中電泳，SYNGENE凝膠成像系統觀察并分析結果。

1.7 穩定細胞株Sf9-Core類病毒顆粒的純化 用100 mm平皿進行大量培養 Sf9-Core細胞，當平皿內的細胞密度達80% ～90%時收細胞上清。5 000 r/min離心10 min以除去細胞碎片。收集上清，用0.45 μm濾器過濾。35 000 r/min離心4 h，去上清，將沉淀融于PBS。用30%，40%，50%蔗糖鋪好梯度，4℃放置過夜，將融于 PBS的沉淀緩慢加在最上層，35 000 r/min離心4 h。在30%與40%蔗糖之間有一條明顯的條帶。緩慢將此條帶吸出，與PBS混勻，35 000 r/min離心4 h，以去除蔗糖。沉淀融于PBS，置于4℃保存，備用。

1.8 純化產物透射電鏡鑒定 取少量純化的樣品滴于銅網，2%磷鎢酸負染2 min，室溫下干燥5 min，樣品置于透射電子顯微鏡(H-7000FA)下觀察顆粒形態。

1.9 純化產物Western印跡鑒定 用鼠抗HCV Core抗體按1∶1 000進行稀釋，與純化的類病毒顆粒進行Western雜交，以此來檢測純化的類病毒顆粒上Core蛋白的存在。

2 結果

2.1 pIZV5-Mel-Core載體的構建 以pBRTM/HCV1-3011為模版，以P1和P2為引物通過PCR擴增獲得Mel-Core片段(圖1)，然后克隆到pMD-18T載體上。測序正確后經EcoRⅠ和NotⅠ酶切克隆到pIZV5上獲得pIZV5-Mel-Core(圖2)。

圖1 Mel-HCV Core PCR結果

圖2 pIZV5-Mel-Core酶切結果電泳鑒定

2.2 Zeocin篩選濃度的確定 培養2 w后，400 μg/ml以上組的CHO細胞已全部死亡，確定600 μg/ml為理想篩選濃度，300、200、50 μg/ml時細胞死亡率分為 95%、80%、60%，其中300 μg/ml為克隆細胞維持培養的濃度。

2.3 pIZV5-Mel-Core穩定轉染Sf9細胞及穩定轉染細胞株Sf9-Core的篩選鑒定 質粒pIZV5-Mel-Core轉染Sf9細胞2 d后，在培養基中加入400 μg/ml的Zeocin。未轉染的細胞逐漸死亡，轉染外源基因的細胞具有Zeocin抗性存活下來，不斷增殖成為細胞克隆。當獲得穩定轉染細胞Sf9-Core細胞后，用Trizol收集1.5×106的細胞，提取細胞總RNA，用OligodT引物進行反轉錄，反轉錄完畢后取部分產物用P3和P4作為引物進行PCR，同時以轉染空載體pIZV5的細胞作為陰性對照。RTPCR結果表明，僅在轉染組擴增獲得636 bp的片段，而對照組無此條帶(圖3)，說明Mel-Core基因片段已經穩定整合到Sf9細胞基因組中。

圖3 pIZV5-Mel-Core穩定轉染Sf9細胞RT-PCR鑒定結果

2.4 HCV Core類病毒顆粒的純化及鑒定 收集穩定轉染細胞Sf9-Core的上清，通過超速離心和梯度離心可得到純化的類病毒顆粒。TEM電鏡觀察結果顯示離心純化的產物主要由一種大小均勻、直徑約30 nm的球形顆粒構成 (圖4)。為確定Core蛋白是否組裝入類病毒顆粒，我們用鼠抗HCV Core抗體按1∶1 000稀釋，與純化的類病毒顆粒進行Western雜交。結果顯示有一條約23 kD的雜交帶存在(圖5)，表明HCV Core蛋白在類病毒顆粒中的存在。

圖4 電鏡觀察純化類病毒顆粒

圖5 Western印跡檢測純化類病毒顆粒中的HCV Core蛋白

3 討論

HCV是輸血后及散在性的非甲非乙型肝炎(NANBH)的主要病因。全世界目前約有1.7億人被HCV感染，急性感染者中有80%轉為慢性，其中20%在10～20年后將發展為肝硬化，1% ～5%可能發展為肝細胞癌(HCC)〔10〕。到目前為止，尚沒有有效的治療HCV慢性感染的藥物和防止HCV感染的疫苗。VLPs和類核衣殼顆粒(CLPs)是不含病毒基組，不具有感染能力的結構，但在某些情況下能有效地產生保護的免疫性來抵抗親代病毒的感染。如已經在使用的抗HBV的疫苗是用HBV的類病毒顆粒生產的，還有最近使用的人乳突淋瘤病毒(HPV)疫苗也是用它的類病毒顆粒產生的〔10，11〕。同時，VLPs和CLPs也成了藥物和基因治療的載體〔12，13〕。1998年，Baumert等〔14〕人首次利用重組桿狀病毒表達系統在昆蟲細胞中產生了由HCV結構蛋白表達后自組裝形成的類病毒顆粒，其直徑40～60 nm，存在于細胞質的內質網來源的空泡里，浮力密度等物化性質與病人血清中的病毒顆粒很相似。Falcon等〔15〕人則在畢赤酵母中表達了23 kD和21 kD兩種形式的Core蛋白，并發現其可包裝成直徑20～30 nm的類核衣殼顆粒;后來又有人將HCV結構蛋白在昆蟲細胞和哺乳動物細胞中表達，得到了HCV的VLPs〔16〕。但這些病毒顆粒都存在于細胞質中，隨后病毒顆粒的純化費時又浪費金錢，更重要的是純化過程會改變VLPs的形態和活性給后續的研究帶來非常不便。

本研究利用HCV Core蛋白這種自我組裝成VLPs的特性，構建了HCV Core與蜂毒素信號肽的融合蛋白并在Sf9細胞穩定表達，并在細胞培養的上清中獲得了類病毒顆粒VLPs，為后續的外源蛋白影響VLPs形成的機制及其納米顆粒的應用提供理論和實驗依據。單獨利用HCV的Core蛋白獲得HCV的類病毒顆粒，這為HCV形態發生、病毒與宿主細胞的相互作用以及尋找病毒組裝的抑制子提供了思路;同時這也為納米藥物的設計提供了新的途徑和平臺。

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〔2011-12-13收稿 2012-03-12修回〕

(編輯 曹夢園)

Q7

A

1005-9202(2012)21-4700-04;

10.3969/j.issn.1005-9202.2012.21.042

浙江省自然科學基金(No.Y208676)

呂建新(1963-)，男，博士，教授，主要從事臨床檢驗診斷和分子診斷技術研究。

李 祥(1978-)，男，博士，副教授，主要從事分子病毒學研究。