金旭鵬 郭蓮怡 (遼寧醫學院基礎學院,遼寧 錦州 121000)
腫瘤壞死因子-α(TNF-α)是單核-巨噬細胞產生的具有多種生物活性的細胞因子,參與抗感染、發熱、休克等多種病理生理過程〔1〕。TNF-α也是引起重癥肝病發生發展的重要因子〔2〕。肝腎綜合征(HRS)是繼發于重癥肝病的腎衰竭,多種因素參與其發病〔3〕。腎血管收縮引起的腎血流量銳減是HRS的主要發病因素。腎血流量受腎小球入球小動脈收縮和舒張的控制,而腎入球動脈平滑肌細胞(RASMCs)內Ca2+水平高低與腎入球動脈的舒縮功能直接相關。本研究觀察TNF-α對RASMCs內鈣離子濃度(〔Ca2+〕i)的影響及機制。
1.1 實驗動物 200~250 g普通級雄性SD大鼠(由遼寧醫學院實驗動物中心提供),許可證號:SCXK(遼2003-0007),開放系統飼養,實驗前禁食12 h。進行原代RASMCs的分離與培養。
1.2 主要試劑 Fluo-3/AM乙酰甲酯、TNF-α、2-氨基乙基二苯硼酸鹽(2-APB)、內皮素(美國 Sigma公司)、PSS緩沖液(PSS:0.1 mmol CaCl2,125.0 mmol NaCl2,5.0 mmol KCl,1.0 mmol MgCl2,10.0 mmol Glucose,20.0 mmol HEPES)。
1.3 主要實驗器材 CK30-12PHP相差顯微鏡,日本OLYMPUS;JEM-1200EX電鏡,日本;激光共聚焦顯微鏡(Uitma212型),Meridina公司;MetaFlour4.5軟件,德國Carl Zeiss公司。
1.4 方法
1.4.1 參照文獻〔4〕行大鼠RASMCs的分離與培養 戊巴比妥鈉(30 mg/kg)腹腔注射麻醉大鼠,摘除腎臟,留取皮質,應用篩網和酶消化法分離RASMCs,最后加入完全營養液,并以1×104細胞數接種于25 cm2培養瓶內,于CO2孵箱中培養,前3 d每天換液,以后隔天換液,1 w后可行細胞傳代。相差顯微鏡觀察細胞生長情況,取3~10代細胞用于實驗。
1.4.2 RASMCs電鏡標本制備 培養瓶中細胞生長至單層融合后,加1 ml胰酶消化、吹打,將細胞收于1 ml EP管中,1 500 r/min 4℃ 離心 4 min,棄上清,小心加入 1 ml PBS,1 500 r/min 4℃離心4 min,棄上清,小心加入1 ml 2.5%戊二醛固定2 h,1%鋨酸后固定1 h,常規丙酮脫水,經浸透、樹脂包埋、超薄切片,醋酸鈾染色,JEM-1200EX電鏡觀察。
1.4.3 實驗分組 TNF-α處理(0 h,24 h)分2組:ET刺激組(A1):實驗中加入 ET(100 nmol/L)刺激,不加 TNF-α;TNF-α +ET 刺激組(A2):實驗前24 h 加入 TNF-α(100 μg/L),實驗中加入 ET(100 nmol/L)刺激。2-APB阻斷分2組:2-APB+ET刺激組(B1):加 ET前10 min加入2-APB,實驗中加入ET(100 nmol/L)刺激;TNF-α+2-APB+ET刺激組(B2):實驗前24 h加入 TNF-α(100 μg/L),加 ET前 10 min加入 2-APB(30 μmol/L),實驗中加入 ET(100 nmol/L)刺激。
1.4.4 細胞內鈣離子濃度的測定〔5〕各組細胞均加入鈣離子熒光探針Fluo-3/AM(5 μmol/L),Fluo-3/AM可以和鈣離子結合,產生較強的熒光,采用confocal顯微鏡測定單個活細胞內Ca2+熒光強度(發射波長505 nm,激發波長488 nm)。動態觀察各組細胞胞內鈣熒光強度(FI)的變化。采用LSM510軟件對數據、圖形進行實時動態測量與分析,根據給藥前后單個細胞的FI值計算出細胞內〔Ca2+〕i。每組設2個平皿,并用不同代細胞重復3次。依據Grynkiewicz公式,計算〔Ca2+〕i。
1.5 統計學分析 采用SPSS17.0統計軟件分析,計量數據以s表示,組間比較采用方差分析。
2.1 RASMCs的鑒定 原代培養的RASMCs大小不等,形狀多樣,呈梭形或者三角形等形狀;傳代培養的RASMCs形態多呈梭形或者長梭形。透射電鏡見細胞胞質內大量縱行束樣分布的肌絲,上述結果表明所獲細胞為RASMCs。見圖1。

圖1 RASMCs的生長情況
2.2 RASMCs內〔Ca2+〕i的測定 各組細胞加ET刺激前,即靜息狀態下〔Ca2+〕i無顯著差異(P>0.05),亦未發生自主性上升,只是因指示劑的衰減,熒光強度略有遞減的趨勢。加ET刺激后,A1組RASMCs在短時間內(約1 min)鈣離子濃度迅速、顯著增加(即峰值升高相),與加 ET前比較有顯著差異(P<0.01);A2組RASMCs內〔Ca2+〕i上升明顯增強,與 A1組比較差異顯著(P<0.01)。B1及B2組RASMCs內〔Ca2+〕i無明顯變化,與加ET前比較無顯著差異(P>0.05);與A1組加ET后比較差異顯著(P<0.01)。見表1。
表1 各組RASMCs內〔Ca2+〕i的變化( s,nmol/L)

表1 各組RASMCs內〔Ca2+〕i的變化( s,nmol/L)
與加ET前比較:1)P<0.01;與A1組加ET后比較:2)P<0.01
組別 加ET前(靜息狀態)加ET后A1 109.51±52.63 240.36±56.781)A2 128.07±78.56 375.45±60.392)B1 112.69±57.76 101.66±48.032)B2 126.61±83.92 116.35±53.482)
HRS是重型肝炎和嚴重肝病最常見的并發癥〔6〕。腎入球動脈平滑肌的舒縮對于腎皮質血流量的調節具有直接作用。本研究探討TNF-α對RASMCs收縮及胞內Ca2+的影響。應用酶消化及篩網技術提取RASMCs,并進行原代培養,通過透射電鏡觀察胞質內的肌絲證實已成功分離培養RASMCs。
當HRS發生時,患者血清中內皮素等多種縮血管活性物質水平明顯增高,并可直接或通過間接途徑引起腎血管收縮,是導致腎血流灌注和腎功能紊亂的重要介質。血管平滑肌的舒縮直接受細胞內Ca2+水平的影響〔7〕,高濃度Ca2+可引起細胞收縮,低濃度Ca2+可引起細胞舒張,因此監測細胞內〔Ca2+〕i變化能反映細胞的舒縮狀態。最近的實驗研究發現,許多細胞因子可以使細胞內Ca2+水平增高,使效應細胞發生生物反應〔8〕。本實驗結果說明 TNF-α可使內皮素刺激后的胞內〔Ca2+〕i增高。
1,4,5-三磷酸肌醇受體(IP3R)是平滑肌細胞內主要的Ca2+釋放通道,當某些縮血管活性物質作用于細胞膜上的相應受體后,細胞內出現高水平的IP3,增高的IP3與IP3R結合,導致細胞內儲備Ca2+釋放,結果使效應細胞發生生物反應〔9〕。當HRS發生時,許多縮血管活性物質(如內皮素、血管緊張素Ⅱ、血管加壓素、血栓素A2、白三烯等)明顯增高〔10〕,作用于平滑肌細胞,引起胞內IP3水平增高,而致腎血管收縮。本研究結果顯示,TNF-α增強內皮素刺激引起胞內Ca2+釋放的作用可被2-APB阻斷。故認為TNF-α間接影響胞內〔Ca2+〕i,是通過IP3R來起作用的。綜上所述,內皮素刺激可使RASMCs在短時間內胞內〔Ca2+〕i迅速、顯著增加。TNF-α作用后上述效應明顯增強,且此效應可被2-APB阻斷,證明了TNF-α可增強內皮素刺激引起的胞內鈣離子釋放進而增強細胞收縮,引起腎小球入球小動脈收縮,腎血流量減少,腎小球濾過率降低,參與HRS發生。上述研究不僅證明內皮素是通過激動IP3R而產生效應的;也證明了TNF-α可增強內皮素刺激引起的胞內Ca2+釋放,且這一作用也是通過IP3R來調節的。
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