王 寧,姜海容,劉 潔,閻 英
(1.沈陽軍區總醫院 放療科,沈陽110015;2.長春市中心醫院 腫瘤科,長春130051;3.中國醫科大學實驗技術中心,沈陽110001)
垂體瘤轉化基因(pituitary tumor transforminggene,PTTG)與多種腫瘤的發生發展關系密切[1]。近來有研究證實人胰腺癌中PTTG也存在高表達[2],但PTTG對胰腺癌細胞增殖及調控機制的研究未見報道。本研究利用小干擾RNA下調PTTG基因表達,觀察其對細胞增殖的影響。
人胰腺癌PANC-1由中科院上海細胞生物研究所提供。siRNA-PTTG和陰性對照siRNA由Qiagen公司設計合成。
1.2.1 實驗分組及基因沉默效應檢查 將PANC-1細胞分為3組(①.未轉染PANC-1細胞、②.轉染陰性對照siRNA、③轉染siRNA-PTTG)。基因沉默效應檢查詳見另文[3]。
1.2.2 形態觀察及細胞增殖測定 倒置顯微鏡觀察不同轉染組細胞形態學變化。胰酶消化對數生長期細胞制備單細胞懸液,濃度為1×105個/ml,96孔板每孔接種100μl細胞懸液,5%CO2,37℃孵育24 h后,吸去培養上清,用無血清opti-MEM輕洗兩次后進行基因沉默,6h后換上新鮮細胞培養液100 μl/孔,分別收集轉染后24h、48h、72h和96h的細胞,距離時間點結束4h時小心吸去上清,加入80μl無血清培養液,再加入2 0μl MTT溶液(5mg/ml)繼續培養4h,然后吸掉上清,每孔加入150μl二甲基亞砜,搖床低速振蕩10min,充分溶解結晶物,混勻后于酶標儀于570nm處讀取各孔吸光度(A570值),每組設定5個復孔。
1.2.33H-TdR測定DNA合成 胰酶消化對數生長期細胞制備單細胞懸液,濃度為1×105個/ml,96孔板每孔接種100μl細胞懸液,5%CO2,37℃孵育24h后,吸去培養上清,用無血清opti-MEM輕洗兩次后進行基因沉默,48h后加入1.0μCi/孔3HTdR,繼續培養6h,然后收獲細胞于玻璃纖維濾膜上,抽洗至少2次,60℃-80℃烤干后,將濾膜放入裝有4ml閃爍液的閃爍瓶中,暗處放置15min,MicroBeta Trilux 1450液閃和化學發光檢測儀測定各管每分鐘脈沖計數(Count percent minute,cpm)計算抑制率。抑制率(%)=(對照組CPM值-實驗組CPM值)/對照組CPM值×100
1.2.4 細胞周期分析 轉染后48h,收集細胞,用70%乙醇4℃固定24h,加入RNA酶(終濃度50 μg/ml),37℃反應1h,加入碘化丙啶 (PI,100μg/ml)溶液染色20-30min后,在BD流式細胞儀上進行檢測分析。
實驗數據用均數±標準差(±s)表示,采用SPSS 11.5統計軟件對數據進行處理,多樣本均數比較采用單因素方差分析,多樣本均數間兩兩比較用q檢驗,取P<0.05認為差異有統計學意義。
倒置顯微鏡下可見未轉染和轉染陰性對照siRNA的PANC-1細胞生長旺盛,形態未見差別,皆為致密貼壁生長多角形,細胞輪廓清晰,伸展良好,折光性強胞漿內未見顆粒和空泡。經siRNA-PTTG處理的PANC-1細胞形態不規則,體積減小,貼壁細胞數量減少,脫落和懸浮細胞增多,細胞質回縮,折光率下降。
轉染siRNA-PTTG后各時間點細胞吸光度低于未轉染和轉染陰性對照siRNA組,差異具有統計學意義(P<0.05);未轉染和陰性對照組細胞吸光度值無統計學差異(P>0.05),結果見表1。

表1 MTT分析不同組PANC-1細胞的吸光度值
siRNA-PTTG組3H-TdR摻入率的放射性計數明顯低于未轉染PANC-1細胞和轉染陰性對照siRNA組,其DNA合成抑制率為37.87%,差異具有統計學意義(P<0.05)(見表2),表明PTTG基因下調能夠抑制細胞DNA合成。

表2 siRNA-PTTG 對3 H-TdR摻入PANC-1細胞DNA合成的影響
與未轉染PANC-1細胞和轉染陰性對照siRNA組細胞相比,轉染siRNA-PTTG后G0/Gl期細胞百分率升高為58.96±12.14,顯著高于陰性對照組的39.42±9.45和未轉染 PANC-1細胞組的36.75±10.28,差異具有統計學意義(P<0.05);轉染siRNA-PTTG后S期比例下降為28.41±6.78,顯著低于陰性對照組的43.39±12.05和未轉染PANC-1細胞組的42.21±11.74,差異具有統計學意義(P<0.05),具體結果詳見表2。未轉染PANC-1細胞和轉染陰性對照siRNA相比,G0/G1期及S期比率無統計學差異(P>0.05)。結果提示,siRNA-PTTG顯著抑制PANC-1細胞增殖,細胞周期阻抑在G0/G1期,DNA合成顯著降低。
胰腺癌是惡性度較高的胃腸道腫瘤,發病率逐年上升,常規治療方法效果有限,探尋新的治療方法具有重要意義。隨著RNA干擾(RNA interference,RNAi)技術的發展,通過該方法沉默癌基因表達在胰腺癌治療上顯示出巨大的優勢[4]。PTTG基因是近年來發現的在多種腫瘤組織中異常表達的一種癌基因[1],其在胰腺癌中的表達高于癌旁組織、胰腺良性腫瘤和正常胰腺組織,并和胰腺癌侵襲,分化相關[5],但尚沒有研究證明其和胰腺癌增殖的關系。

表3 siRNA-PTTG對不同實驗組細胞周期影響
PTTG與腫瘤細胞增殖關系密切,現有的研究表明其在不同的腫瘤,不同的生理病理條件下,可能發揮不同的作用,結果間存在很大差異。由于PTTG編碼的securin具有抑制姐妹染色單體分離的功能,其過表達可能會通過延遲有絲分裂、抑制姐妹染色單體分離從而抑制細胞增殖[6]。還有研究報道其還可通過誘導細胞凋亡實現其抑制細胞增殖的作用[7]。一些動物模型和細胞轉染實驗均證實如此。研究發現小鼠成纖維細胞系3T3高表達PTTG蛋白可抑制細胞增殖并引起細胞轉化,成瘤性降低[8];將hPTTG轉染至HeLa和A549細胞,發現細胞增殖受到明顯抑制[9]。與此相反,另一些實驗卻發現PTTG作為一種細胞轉化癌基因,具有激活增殖的功能。在垂體腺瘤和平滑肌瘤,PTTG表達與細胞增殖相關標志-增殖細胞核抗原(PCNA)或Ki-67表達高度相關[10,11]。在鼠垂體成瘤模型[12]和甲狀腺濾泡癌[13],PTTG缺失可導致垂體和甲狀腺細胞增殖減低。垂體細胞、肝細胞、神經膠質瘤細胞系U87和培養的子宮肌瘤細胞中PTTG表達水平與增殖活力成正相關[14,15]。使用基因敲除技術使PTTG缺失的研究也證實在骨髓干細胞、膠質瘤、肉瘤、肝癌和促皮質激素細胞中PTTG具有刺激增殖的作用[16,17]。盡管 Kim 等[13]研究發現 PTTG 可以誘導甲狀腺濾泡癌細胞系FTC133增殖,但Saez[18]和Boelaert等[19]的研究則認為PTTG與甲狀腺癌細胞增殖之間無相關性。
本研究利用化學合成的siRNA沉默PANC-1細胞內PTTG表達,經RT-PCR和Western blot證實其沉默效應[3]。倒置顯微鏡下觀察發現經siRNA-PTTG處理的PANC-1細胞形態不規則,體積減小,貼壁細胞數量減少,脫落和懸浮細胞增多,細胞質回縮,折光率下降。這些細胞形態學的變化提示經siRNA-PTTG處理后的PANC-1細胞生長受到抑制。MTT比色法結果顯示,siRNA-PTTG組各時間點的吸光度值均下降,細胞增殖速度明顯降低,而未轉染和陰性對照siRNA組增殖速率相近,吸光度無統計學差異。3H-TdR摻入實驗表明未轉染PANC-1細胞和轉染陰性對照組放射性計數明顯高于siRNA-PTTG組,表明PTTG基因沉默能夠抑制PANC-1細胞DNA合成。細胞周期分析發現,轉染siRNA-PTTG后G0/Gl期細胞百分率顯著增加,S期顯著降低。由此可見,PTTG具有促進體外培養胰腺癌細胞增殖的作用,其表達下調可通過抑制DNA合成導致細胞增殖下降。因此,PTTG有望成為胰腺癌早期診斷和基因治療的新靶點,但其調控細胞增殖的確切機制和路徑仍有待于進一步研究。
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