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Bax在14-3-3γ對抗脂多糖誘導的心肌細胞損傷中的作用*

2012-11-28 01:33:12劉丹尹東孫惦許旻何明
天津醫藥 2012年12期
關鍵詞:檢測

劉丹尹東孫惦許旻何明

脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)能激發過度的炎癥反應,產生膿毒血癥[1]。心臟是膿毒血癥中最易受損的主要靶器官之一[2],因此,為降低膿毒血癥的病死率,減輕心臟功能損傷極為重要。本課題組前期在內毒素整體動物模型上觀察到,內毒素血癥時心肌14-3-3γ表達增加,提示14-3-3γ可能在內毒素所致的心肌損傷中發揮重要作用[3]。本研究擬構建pFLAG-14-3-3γ重組質粒,轉染至原代培養乳鼠心肌細胞,旨在從細胞水平探討其在心肌細胞損傷中的作用,并進一步檢測凋亡的重要調節因子Bax的表達與分布,深入探討14-3-3γ的保護機制。

1 材料與方法

1.1 受試藥品與主要試劑 pFLAG-CMVTM-4質粒(Sigma公司),限制性內切酶 Eco RⅠ和 KpnⅠ(NEB),逆轉錄試劑盒、T4 DNA連接酶、凝膠回收試劑盒及無內毒素質粒提取試劑盒 (Promega 公司),14-3-3γ 抗體、Bax抗體、β-actin 抗體及相應二抗 (Santa Cruz),線粒體分離試劑盒 (Biovision公司),LipofectamineTM2000 (Invitrogen),MEM 培養基(GIBCO BRL公司產品),胎牛血清(杭州四季青生物工程材料有限公司),增強化學發光印跡試劑和硝酸纖維素膜(Amersham公司),胰酶、MTT、HEPES、PMSF、亮肽素,丙烯酰胺、SDS,亞甲基雙丙烯酰胺、過硫酸銨、TEMED、EDTA和 DTT(Sigma公司產品),其他試劑均為分析純。

1.2 方法

1.2.1 心肌細胞的分離培養 參照文獻[4]方法略加改進,以下操作均在超凈臺內進行。取出生1~3 d的SD乳鼠,開胸取出心臟,分離心室組織,經0.1%胰酶消化分離,用含15%胎牛血清的MEM培養基混懸后置CO2培養箱(5%CO2,37℃)培養2 h去除成纖維細胞,臺盼藍鑒別細胞存活率在90%以上者用于實驗,然后按5×105/孔、1×104/孔分別接種于6孔培養板和96孔培養板內,CO2培養箱培養,隔天換培養液,前3 d加入終濃度為0.1 mmol/L 5-溴脫氧尿嘧啶核苷 (Brdu)抑制纖維細胞生長。培養4 d隨機分組進行實驗。

1.2.2 實驗分組(1)對照(Control)組:未轉染質粒及未經LPS處理組。(2)LPS組:加LPS至培養液中,終濃度為10 mg/L,孵育6 h。(3)pFLAG+LPS組:空載質粒pFLAG轉染至心肌細胞中,24 h 后處理同 LPS 組。(4)pFLAG-14-3-3γ+LPS 組:重組質粒pFLAG-14-3-3γ轉染至心肌細胞中,24 h后處理同LPS組。

1.2.3 14-3-3γ真核表達載體pFLAG-14-3-3γ的構建 取SD鼠心肌組織 50 mg,用 RT-PCR方法獲取 14-3-3γ(GenBank D17447.1)的全長編碼 cDNA,引物序列 上游:5′-AAGAATTCCCCCGCGAAGATG-3′, 下游:5′-TTAGGTACCTG GGGCCTTAGTTGTT-3′,分別在上、下游引物中引入 Eco RⅠ和KpnⅠ的酶切位點及保護性堿基。PCR擴增后的目的基因cDNA與質粒pFLAG-CMVTM-4用 Eco RⅠ和 KpnⅠ雙酶切、T4連接酶連接。連接反應產物轉化感受態細胞并用抗生素篩選。質粒提取后,行酶切鑒定和DNA測序。

1.2.4 pFLAG-14-3-3γ重組質粒轉染及表達效率的檢測 在轉染前,PBS洗2次,除去抗生素,將 LipofectamineTM2000(μL)與 DNA(μL)以 2.0∶0.8 比例混合,加入到每孔細胞中,置于培養箱(5%CO2,37℃)中孵育。24h后裂解細胞,提取蛋白,Western blot檢測心肌細胞14-3-3γ蛋白表達。以空載質粒載體pFLAG為對照。

1.2.5 細胞存活率檢測 采用MTT比色法檢測。胰酶消化后收集細胞,每組細胞以1×104/孔接種于96孔培養板中。細胞覆蓋率達70%~80%后吸出培養基。每孔加入MTT溶液(5 g/L溶于PBS)20μL,37℃孵育4 h。吸棄孔內培養上清液,再每孔加DMSO 150μL振蕩10 min,使藍色結晶充分溶解。酶聯免疫檢測儀在490 nm波長處測定其光密度(OD)值,以間接反映各組活細胞數。

1.2.6 生化檢測 各組分別取孵育液200μL,美國Beckman生化自動分析儀測定乳酸脫氫酶(LDH)、肌酸磷酸酶(CPK)活性。當心肌細胞受損時,LDH及CPK會釋放至孵育液中,使得LDH及CPK值升高,故LDH、CPK值與心肌細胞損傷成正比。

1.2.7 細胞凋亡檢測 收集各組細胞,在細胞懸液中加入10 μL Annexin V-FITC和5μL的PI,輕輕混勻,避光室溫反應15 min,再加入300μL Binding buffer,立即進行流式細胞儀檢測。

1.2.8 Western blotting檢測線粒體和胞漿中Bax蛋白水平 各組使用線粒體和胞漿蛋白制備試劑盒,按操作說明書制備線粒體和胞漿蛋白。同等量蛋白質完成SDS-PAGE后,進行電轉膜,再先后結合一抗和二抗,最后X線膠片曝光分析。

1.3 統計學方法 采用SPSS 11.5軟件進行分析,計量數據以±s表示,多組間比較用單因素方差分析,組間多重比較用LSD-t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 轉染 pFLAG-14-3-3γ對心肌細胞14-3-3γ蛋白表達的影響 pFLAG組的14-3-3γ蛋白表達與對照組相比無明顯升高,pFLAG-14-3-3γ組的14-3-3γ蛋白表達高于對照組和pFLAG組 (P<0.001)。說明重組14-3-3γ的真核表達載體在原代乳鼠心肌細胞中能有效表達,見圖1、表1。

Figure 1 The expression of 14-3-3γprotein in different groups圖1 14-3-3γ蛋白在各組中的表達

Table 1 The expression of 14-3-3γprotein in different groups表1 14-3-3γ蛋白在各組中的表達 (n=6,±s)

Table 1 The expression of 14-3-3γprotein in different groups表1 14-3-3γ蛋白在各組中的表達 (n=6,±s)

**P<0.01

?

2.2 14-3-3γ基因轉染對LPS損傷后細胞存活率的影響 LPS組與對照組比較細胞存活率明顯降低(P<0.001);而轉染了pFLAG-14-3-3γ的心肌細胞能明顯對抗隨后LPS所致損傷,使細胞存活率明顯升高(P<0.001),見表2。

Table 2 Comparison of cell viability,LDH,CPK and apoptotic rate between different groups表2 各組細胞存活率、LDH及CPK活性、細胞凋亡率比較 (n=6,±s)

Table 2 Comparison of cell viability,LDH,CPK and apoptotic rate between different groups表2 各組細胞存活率、LDH及CPK活性、細胞凋亡率比較 (n=6,±s)

**P<0.01;(1)∶(2)~(4),(2)∶(4),(3)∶(4), 均 P<0.001,(2)∶(3)P>0.05

?

2.3 14-3-3γ基因轉染對LPS損傷后LDH、CPK的影響 LPS處理使LDH及CPK較對照組明顯升高(P<0.001),而轉染了pFLAG-14-3-3γ的細胞再受到LPS損傷處理,LDH及 CPK較LPS組及pFLAG+LPS 組明顯降低(P<0.001),見表2。

2.4 14-3-3γ基因轉染對LPS損傷后細胞凋亡的影響 LPS處理使心肌細胞凋亡率較對照組明顯增加(P<0.001),轉染 pFLAG-14-3-3γ 的細胞能明顯對抗LPS所致的損傷,與LPS損傷組相比細胞凋亡率明顯減少(P<0.001),見表2、圖2。

Figure 2 The cell apoptosis detected by flow cytometry in different groups圖2 流式細胞儀檢測各組細胞凋亡

2.5 14-3-3γ基因轉染對LPS損傷后Bax表達與分布的影響 對照組Bax主要分布在胞漿,當心肌細胞遭受LPS損傷時,Bax移位至線粒體,胞漿/線粒體(cyto-Bax/mito-Bax)比值較對照組明顯減少(P<0.001)。轉染 pFLAG-14-3-3γ 能明顯對抗Bax向線粒體的移位,使cyto-Bax/mito-Bax比值較LPS組和 pFLAG+LPS組明顯升高(P<0.001),見表3、圖3。

Table 3 Levels of Bax protein in cytoplasm and mitochondria in different groups表3 各組中胞漿、線粒體Bax蛋白水平 (n=6,±s)

Table 3 Levels of Bax protein in cytoplasm and mitochondria in different groups表3 各組中胞漿、線粒體Bax蛋白水平 (n=6,±s)

**P<0.01

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Figure 3 Levels of Bax protein in cytoplasm and mitochondria in different groups圖3 各組中胞漿、線粒體Bax蛋白水平

3 討論

3.1 14-3-3蛋白的基本生理作用 14-3-3蛋白是存在于幾乎所有生物體細胞中的一類重要蛋白質家族,共有 β、ε、γ、η、σ、τ、ζ7 個亞型。14-3-3 蛋白主要通過與配體蛋白的相互作用,參與細胞周期、細胞凋亡、緊張反應和信號轉導調控[5]。其中14-3-3蛋白最常見的作用方式就是將其配體蛋白限制在某一特定部位,通常是在胞漿,使其無法到達功能部位發揮作用[6]。

3.2 pFLAG-14-3-3γ質粒對心肌LPS損傷的對抗作用 本課題組前期實驗中發現,14-3-3γ在大鼠燒傷及內毒素損傷模型中心肌表達明顯升高[3],高度懷疑此蛋白可能在內毒素致心肌損傷過程中發揮重要作用。為驗證此假說,并排除整體動物實驗多因素干擾,筆者構建了pFLAG-14-3-3γ重組質粒,建立原代SD乳鼠心肌細胞LPS損傷模型,結果發現轉染pFLAG-14-3-3γ后,心肌細胞能明顯對抗隨后發生的LPS損傷,使細胞存活率升高,細胞損傷減輕,表現為LDH、CPK活性下降,心肌細胞凋亡減少。

3.3 pFLAG-14-3-3γ抗心肌LPS損傷作用與抑制Bax線粒體移位有關 有文獻報道,在神經細胞胞漿中14-3-3蛋白與Bcl-2家族中的Bax結合[7]。Bcl-2家族是在細胞凋亡過程中發揮關鍵性作用的一類蛋白質,主要是通過調節線粒體膜的通透性,影響線粒體的功能來完成對細胞凋亡的調控。Bax是Bcl-2家族中的促細胞凋亡蛋白成員,通常情況下,Bax蛋白一般存在于胞漿內,受到相關的凋亡信號刺激時,移位至線粒體,直接或間接地與線粒體通道蛋白相互作用,引起促凋亡因子細胞色素C等的釋放[8]。為此,本實驗檢測了Bax蛋白在細胞漿與線粒體中的表達情況,結果發現當心肌細胞遭受LPS損傷時,Bax蛋白由胞漿向線粒體轉移,而當轉染pFLAG-14-3-3γ后,Bax蛋白的這種向線粒體遷移則明顯抑制,說明在心肌細胞胞漿中14-3-3γ能抑制LPS誘導Bax向線粒體的轉移,進而維持線粒體膜的穩定性,起到對抗LPS損傷的作用。

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