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高效免疫調節劑對S180肉瘤小鼠IL-6及IL-10表達的調節作用

2013-04-25 09:45:54常欣峰宋春花羅寶英羅亞楠黃志華韓立民
長春中醫藥大學學報 2013年6期
關鍵詞:小鼠模型

常欣峰,宋春花,羅寶英,羅亞楠,李 歡,黃志華,韓立民*

(1.湖南中醫藥大學,長沙 410007;2.贛南醫學院,江西 贛州 341000)

腫瘤的發生、發展和轉移與機體的免疫狀態密切相關。研究[1-2]表明,腫瘤患者都會出現不同程度的免疫功能下降現象,如NKC活性、CD4+/CD8+比值、IL-2含量等均呈下降趨勢,這是腫瘤得以無限增長的一個重要因素。而腫瘤的生長又通過分泌免疫抑制因子進一步抑制宿主免疫功能,從而形成惡性循環[3]。近年來,腫瘤的生物治療得到長足的發展,在改善患者生存質量,降低復發率方面的重要作用已得到越來越多的認可和重視。腫瘤的生物治療成為繼手術、放療、化療之后的第四大治療方法。目前國內外有關腫瘤生物治療包括:免疫調節劑治療、腫瘤細胞瘤苗治療、過繼性T細胞治療-CIK、樹突細胞疫苗治療和造血干細胞移植治療等五大方法。筆者通過對已上市疫苗進行的篩選研究,確定了多價疫苗應用的處方(HIS),并申請了中國發明專利(申請號:200810107096.6)。在前期工作中,已完成對HIS急性和3個月長期毒性實驗的觀察。本次實驗以S180肉瘤小鼠為模型,通過計算脾指數、抑瘤率及檢測IL-6、IL-10,初步探討HIS對免疫系統的影響及抑瘤機理。

1 材料

1.1 動物及瘤株 SPF級昆明小鼠40只,雄性,6~8周齡,體質量18~22 g,由湖南省斯萊克景達實驗動物有限公司提供,許可證號:SCXK(湘)2009-0004,合格證號,4300016645。S180瘤株,由中國醫學科學院醫藥研究所購進,贛南醫學院科研中心傳代培養。

1.2 藥品及試劑 高效免疫調節劑(HIS),由江中腫瘤治療研究組提供,批號:110325;環磷酰胺,白色粉狀針劑,0.2 g/支,江蘇恒瑞醫藥股份有限公司生產,批號:12041125;IL-6放免檢測試劑盒購自北京普爾偉業生物科技有限公司,批號:20120820;IL-10多克隆抗體購自博士德生物工程有限公司(貨號:BA1201);BCA蛋白定量試劑盒購自天根生化科技有限公司(貨號:A:Lot#J9122;B:Lot#J8830)。

1.3 儀器 SN-695型智能放免γ測量儀(上海核福光電儀器有限公司),賽多利斯BS224S型電子天平(北京賽多利斯儀器有限公司),MK3型酶標儀(美國Thermo公司)。垂直電泳儀(美國Bio-Rad公司),化學發光成像系統(美國Bio-Rad公司)。

2 方法

2.1 S180肉瘤小鼠模型的建立 于超凈工作臺,無菌條件下抽取接種S180瘤株7 d的小鼠腹水,呈淡奶白色,生理鹽水稀釋后,1 000 r/min,離心5 min,棄上清液,用生理鹽水將細胞重懸,苔盼藍染色,腫瘤活細胞比率>95%,調整細胞濃度為1×107個/mL,置于冰水中保存。75%乙醇消毒,0.2 mL/只接種于小鼠右腋部皮下,正常對照組接種同體積的生理鹽水。

2.2 分組及給藥 接種后次日,將40只小鼠隨機分為4組,即正常對照組、S180肉瘤模型組、S180肉瘤模型加環磷酰胺組(CTX組)、S180肉瘤模型加高效免疫調節劑組(HIS組),每組10只。CTX組于小鼠腹腔注射CTX,50 mg/kg;HIS治療組給予腹股溝皮下注射濃度為0.03 g/mL的HIS 0.1 mL/10 g體質量,終劑量為0.3 g/kg;正常對照組及S180肉瘤模型組腹腔注射等容積生理鹽水。以上各組均3 d給藥1次。連續10 d(即給予4次藥物治療)。

2.3 瘤重、抑瘤率及脾指數測定 于末次給藥24 h后,稱體質量,取血,取脾臟、腫瘤,電子天平稱脾臟及腫瘤質量。

2.4 放射免疫學方法檢測血清IL-6水平 摘眼球取血置于促凝管中,4 ℃、3 000 r/min,離心10 min,制備血清,-80 ℃保存。送往北京普爾偉業生物科技有限公司代檢。

2.5 Western blot法檢測腫瘤組織細胞因子IL-10表達 于-80 ℃冰箱中稱取腫瘤組織20~30 mg,以預冷的PBS清洗并用眼科剪將組織剪碎于1.5 mL EP管中,再加入適量的蛋白裂解液研磨,4 ℃顛倒混勻1 h,12 000 r/min,離心5 min,抽取上清液,即為組織總蛋白,用BCA蛋白檢測法進行蛋白定量。取50 μg蛋白,調整體積為24 μL,樣品煮沸5 min,6 000 r/min,離心5 min,經SDS-PAGE凝膠電泳,濕轉法將蛋白轉移至NC膜,5%脫脂牛奶封閉1 h,1∶200稀釋的IL-10一抗,4 ℃孵育過夜;TBST洗3次,每次5 min;1∶1 000稀釋的二抗,室溫孵育l h,TBST洗3次,每次10 min;用ECL發光劑室溫孵育l min,化學發光成像系統照相,體積法測定各條帶的光密度值。同樣方法測定β-actin的光密度值,各條帶IL-10與相應β-actin的光密度值比值為該條帶的相對光密度值。各組取3只小鼠的樣本,重復試驗3次,每次以模型組條帶相對光密度值為1進行數據標準化,所得9次數據進行統計學分析。

3 結果

3.1 HIS對S180肉瘤小鼠瘤重、抑瘤率及脾指數的影響 見表1。

表1 HIS對S180肉瘤小鼠瘤重、抑瘤率及脾指數的影響(±s,n=10)

3.2 HIS對S180肉瘤小鼠血清IL-6水平的影響 見圖1。

注:與正常對照組比較,##P<0.01;與腫瘤模型組比較,△△P<0.01;與CTX組比較,▲▲P<0.01。

3.3 HIS對S180肉瘤小鼠腫瘤組織細胞因子IL-10表達的影響 見圖2。

注:與腫瘤模型組比較,##P<0.01;與CTX組比較,△△P<0.01。

4 討論

本實驗結果表明,HIS可明顯抑制S180肉瘤的生長,同時小鼠的脾指數升高,提示HIS可通過提高機體的免疫功能起到抗腫瘤作用。

免疫機制的失能是腫瘤形成的重要因素。其中Th1/Th2細胞的平衡向Th2細胞漂移是腫瘤免疫機制失能的主要表現之一。Thl類細胞分泌IL-2、INF-γ和TNF-β等細胞因子,是機體抗癌、抗病毒的主要參與者;Th2類細胞分泌IL-4、IL-6和IL-l0等細胞因子,在體內可抑制免疫應答[4]。而腫瘤宿主處于Th2細胞因子優勢狀態是腫瘤免疫逃逸的機理之一。IL-6是一種多效應的細胞因子,也是重要的免疫抑制因子[5],主要由淋巴細胞、激活的巨噬細胞和血管內皮細胞產生。IL-6與多種腫瘤發生、發展關系密切,它通過干預細胞的黏附性、血栓形成、腫瘤特異性抗原的表達及腫瘤細胞的增值從而影響腫瘤的進展[6]。IL-10作為重要的免疫抗炎因子,也被稱為人類細胞因子合成抑制因子。它能抑制T細胞的增殖分化,抑制單核細胞和自然殺傷細胞的生物活性,抑制Th1細胞產生IL-2、INF-γ等,從而下調機體的抗腫瘤反應[7-9]。實驗結果表明,HIS可明顯降低小鼠外周血IL-6水平,降低腫瘤組織中IL-10表達。提示HIS可抑制腫瘤形成過程中Th1/Th2細胞的平衡向Th2細胞漂移,減輕腫瘤機體的免疫機制的失能,從而有效抑制腫瘤的生長。

綜上所述,HIS可提高機體免疫功能并有抑瘤效果。作用機理可能與HIS降低了免疫抑制因子IL-6、IL-10表達水平,抑制Th1/Th2細胞平衡向Th2細胞漂移有關。從而為進一步在臨床推廣和使用HIS提供了理論依據。

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