張惠青,趙國樑
(北京服裝學院材料科學與工程學院,北京 100029)
聚酯(PET)因其結構穩定,機械性能好,在體內不易降解等優點,多年來被廣泛用于制造人造血管等醫用紡織材料[1]。但因PET 分子結構較規整,結晶度較高,結構中無強極性基團,親水性較差,目前其血液相容性尚不能滿足應用要求[2],限制了PET 纖維紡織品在與血液直接接觸的植入性醫用材料方面的應用。肝素作為一種天然的生物活性物質,具有很強的抗凝血性能[3]。為提高植入性PET 材料的血液相容性,可首先在PET 表面引入對肝素具有反應能力的間隔基團或空間臂[3-4],如氨基和丙烯酸(AA)中的羧基,再在催化劑作用下使間隔基團與肝素中的羧基或磺胺基反應,實現PET 的表面肝素化[3]。
雖然PET 表面化學結合的肝素鈉(Hep)可通過X 射線光電子能譜(XPS)[5-6]及Hep 改性前后材料表面性能的變化等方法[5]進行表征,但XPS 并不適用于所有基體材料,而測定改性后PET 接觸角的方法無法對Hep 接枝量進行準確定量。
近年來,一些研究者采用甲苯胺藍(TB)分光光度法對共混材料Hep 釋放量[7]、瓊脂4B 上Hep 的固定量[8]及絲素薄膜表面Hep 的接枝量[9]等進行表征,并對TB 聚集及其影響因素[10]、TB 由聚陰離子量子點引起的顏色變化[11]等問題進行了探究。然而,對于在引入Hep 時所引入的具有極性的間隔基團對陽離子染料TB 存在吸附的問題尚無很好的解決方法,影響了結構表征的精確度。因此,進一步完善TB 分光光度法,使之更準確、快捷地對PET 表面Hep 進行表征,對制備具有抗凝血功能的PET 纖維及其生物醫用紡織材料具有重要意義。
AA:分析純,汕頭市西隴化工廠有限公司產;氯化鈉、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、鹽酸、正己烷:均為分析純,北京化工廠產;過氧化二苯甲酰(化學純)、Hep,TB:國藥集團化學試劑有限公司產。
721W 可見分光光度計:上海光學儀器五廠制造;RPB10 筆式pH 計:上海羅素科技有限公司制造。
PET-AA 及PET-AA-Hep 薄膜的制備:將PET薄膜和AA 加入水中,通入氮氣,升至所需溫度后,加入引發劑過氧化二苯甲酰,反應一定時間,制備PET-AA 薄膜;在含有Hep 的水溶液中加入含有N,N-二環己基碳二亞胺的四氫呋喃溶液和PET-AA,室溫反應24 h,制備PET-AA-Hep 薄膜。
PET 及PET-AA 的吸附實驗:將PET-AA 置于pH 值為7.4 的TB 溶液中一段時間,取出PETAA,利用分光光度計在674 nm 波長下測得TB 殘液的吸光度,而后重復上述過程。
pH 值對PET-AA 吸附TB 的影響實驗:稱取相同質量的PET-AA 放入不同pH 值下體積濃度40 μg/mL TB 溶液中相同時間后,取出PET-AA測定TB 殘液的吸光度,并計算單位質量PET-AA在不同pH 值下所引起的殘液吸光度變化。
pH 值對離子鍵結合的影響實驗:將20 μg/mL Hep 與不同pH 值下40 μg/mL TB 溶液進行等量混合并振蕩一定時間后,測量混合溶液的pH 值和吸光度。
校正曲線的標定:在用HCl 調節為特定pH值且含有0.2% NaCl 的40 μg/mL TB 溶液中加入用pH 值為7.4 的Na2HPO4和NaH2PO4配置緩沖溶液(PBS)配置的不同濃度的Hep 溶液。而后加入正己烷,振蕩1 min 后,取下層溶液進行校正曲線的繪制。
PBS 洗滌PET-AA-Hep 的實驗:用固定浴比的PBS 緩沖溶液浸泡PET-AA-Hep 薄膜一段時間后,取出薄膜,按校正曲線測定過程測試,并重復以上過程。
PET-AA-Hep 表面含量的測定:PET-AA-Hep經過PBS 溶液(PET-AA-Hep∶PBS 質量比為1∶200,每6 h 換一次溶液)洗滌60 h 后晾干,置于pH 為1.0 的TB 溶液中振蕩一定時間后測定吸光度經校正曲線換算得表面Hep 含量。
由圖1 可知:對于未經AA 改性的PET 薄膜進行上述實驗時發現,PET 薄膜從TB 溶液中取出后,薄膜仍為無色,TB 殘液吸光度無明顯變化,說明PET 薄膜對TB 無明顯吸附作用;而對于PET-AA 薄膜,隨時間增加,TB 殘液吸光度逐漸下降,下降速率逐漸減小。這是因為PET-AA 從TB溶液中取出后,TB 吸附在薄膜上,顏色由藍色變為紫色,呈條紋狀分布,隨時間增加,顏色越來越深,PET-AA 薄膜上吸附的TB 逐漸增多,導致吸光度逐漸下降。TB 沉積在表面活性素上時,分布在活性素膠束狀溝槽中[12],這類似于本研究中TB 沉積在PET-AA 膠束狀的溝槽,從而呈現紫色條紋狀分布的現象。TB 在PET-AA 薄膜上由藍色變為紫色是由于TB 在陰離子表面排列構型有所變化所致[8]。

圖1 PET-AA 和PET 對TB 的吸附曲線Fig.1 Adsorption curves of TB on PET-AA and PET
由圖2 可知,相同TB 濃度與相同質量PETAA 下,隨pH 值下降,殘液吸光度減小。因隨時間的增加,PET-AA 上吸附的TB 逐漸增加,導致殘液吸光度逐漸下降,在TB 溶液中停留時間相同的PET-AA 薄膜,在其質量和密度均一致時,殘液吸光度的變化只與pH 值有關,故殘液吸光度變化可表明吸附作用的大小。殘液吸光度與原TB 溶液吸光度相差越小,吸附作用越小,即PETAA 引起TB 溶液吸光度改變越小,吸附作用越小。

圖2 pH 值對PET-AA 吸附TB 的影響Fig.2 Effect of pH value on TB adsorption on PET-AA
由圖2 還可知,pH 值對PET-AA 吸附TB 的影響不成正比例,在pH 值下降過程中,起初影響較大,隨著pH 值的降低,其對吸附的影響力逐漸減小。實驗中發現,在pH 值為1.2 時,PET-AA對TB 幾乎無吸附作用,且在pH 值小于2.5 時,吸附在PET-AA 表面的TB 由紫色變為藍色,這可能是由于在pH 值逐漸減小時使TB 的構型發生了轉變所致[13]。
由圖3 可見,隨pH 值下降,含有Hep 的TB溶液的吸光度逐漸上升。實驗中發現,不含Hep的TB 溶液的吸光度與pH 值無關;Hep 加入TB溶液后可導致TB 顏色改變從而使最大吸收波長向低波長方向移動60~70 nm,通過加入輕汽油移除TB-Hep 復合物的方法可提高分光光度法的準確性,但不移除TB-Hep 復合物對分光光度法的準確性影響也不大[8],故本研究中采用不加正己烷的方法可表明pH 值對TB-Hep 鍵合的影響。本實驗中HCl 體積分數高達6.25%時,含有Hep的TB 溶液pH 值為-0.3,其吸光度為0.690,與不含有Hep 的20 μg/mL TB 溶液的吸光度0.903有一定差距;若Hep-TB 離子鍵結合完全被破壞,則在pH 值為-0.3,含Hep 的TB 溶液吸光度應為0.903,故可認為pH 值的改變對Hep 與TB 離子鍵的結合有略微影響,不會導致離子鍵結合的完全破壞。

圖3 pH 值對Hep 與TB 之間離子鍵結合的影響Fig.3 Effect of pH value on ionic bond between Hep and TB
pH 值下降不能完全破壞Hep 與TB 之間的離子鍵結合,只對其鍵合略有影響;pH 值小于等于1.2 時,PET-AA 對TB 幾乎無吸附,故可采用pH 值小于等于1.2 的TB 溶液來標定薄膜表面Hep 的校準曲線。
由圖4 可知,隨著Hep 濃度的增加,TB 殘液吸光度起初迅速下降,而后下降平緩。這是因為Hep 濃度低時,TB-Hep 的鍵合迅速增加,殘液吸光度迅速下降,當Hep 濃度達到一定濃度后,其TB-Hep 的鍵合緩慢,殘液吸光度也下降緩慢。由圖4b 可知,Hep 濃度為0~10 μg/mL 時的TB 殘液吸光度的變化與Hep 濃度呈線性擬合,其擬合方程為:

擬合曲線線性相關性很高,相關系數(R2)為0.998 72。因此,pH 值為1.0,濃度為40 μg/mL 的TB 溶液可作為標定Hep 濃度的標準溶液,擬合曲線可作為校正曲線。

圖4 pH 值為1.0 時Hep 的校正曲線及其擬合曲線Fig.4 Calibration and fitting curves of Hep at pH value of 1.0
由圖5 可看出,隨著洗滌時間增加,殘液的吸光度逐漸增加,在54 h 后其吸光度基本趨于平衡,與不含Hep 時TB 溶液的吸光度一致。

圖5 PBS 洗滌PET-AA-Hep 的殘液吸光度與時間的關系Fig.5 Plots of absorbance versus time for PET-AA-Hep residual liquid after washing with PBS solution
因人體血液環境pH 值為7.35~7.45,如其用于體內環境,經過pH 值為7.4 的PBS 緩沖溶液充分洗滌PET-AA-Hep 后,可完全洗除吸附在PET 表面的Hep,剩余的Hep 與PET-AA 的結合為化學結合。確定出PBS 洗滌條件為:PET-AAHep 與PBS 溶液的比例為1∶200,6 h 換一次PBS 溶液共洗滌60 h。
當PET-AA-Hep 從TB 溶液取出后,選擇TB濃度為40 μg/mL,pH 值為1.0 對Hep 進行校準曲線標定,測得吸光度為0.818,經此校準曲線計算得Hep 接枝量為54.364 μg/g。
a.降低TB 溶液pH 值可延緩PET-AA 對TB的吸附,pH 值小于等于1.2 時PET-AA 對TB 幾乎無吸附,對TB-Hep 離子鍵合略有影響,并不影響Hep 校正曲線的標定。
b.用PBS 洗滌方法證明了PET-AA 結合的Hep 不是以吸附的形式,而是以化學鍵結合,確定洗滌條件為:浴比1∶200,6 h 換一次PBS 溶液共洗滌60 h。選擇TB 濃度為40 μg/mL,pH 值為1.0 對Hep 進行校準曲線標定,并計算出PET-AA接枝Hep 的接枝量為54.364 μg/g。
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